УСПЕХИ СОВРЕМЕННОЙ БИОЛОГИИ, 2003, том 123, №2, с. 147–160
УДК 577.352.38 + 616.155.392
ПЕРОКСИГЕНАЗНЫЕ ПРОЦЕССЫ И ЛЕЙКОЗОГЕНЕЗ
© 2003 г. Б. Н.Лю
Казахский национальный технический университет им. К. Сатпаева, Алма-Ата, Казахстан
Высокая чувствительность гемопоэтических клеток к радиационным, прооксидантным и другим лейкозогенным воздействиям связана с некоторыми их морфологическими и энергетическими особенностями. В основе этой чувствительности - малое, минимально необходимое количество действующих митохондрий и соответственно повышенные внутриклеточные уровни рО2 и активных форм О2 (АФК), требуемые в норме для устойчивого окислительного митогенеза клеток. При ослаблении или нарушении митохондриального дыхания такое состояние усугубляется и относительно легко наступает окислительный стресс - необходимое условие для индукции и поддержания лейкозогенеза. Способность лейкозных клеток продолжить прерванную в них дифференцировку объяснена возможностью дифференцировочных агентов прямо или косвенно влиять на уровень АФК и изменять АФК-зависимую транскрипцию генов дифференцировки. Антиоксидантная терапия в целом подтверждает кислородно-перекисную концепцию лейкозогенеза.
НЕКОТОРЫЕ ИСХОДНЫЕ ФАКТЫ
И ПОЛОЖЕНИЯ
Развитие лейкозов при лучевых и других лейкозогенных воздействиях, как известно, связано со злокачественным системным заболеванием кроветворной ткани, нарушением кроветворения, выражающемся в разрастании незрелых патологических клеточных элементов. В зависимости от того, какие из этих элементов преобладают, различают разные виды этой патологии. Общепризнанным считается представление, согласно которому наиболее реальными клетками-мишенями для лейкозной трансформации являются полипотентные стволовые кроветворные клетки (ПСКК) и клетки-предшественники отдельных ростков кроветворения. Причины высокой чувствительности этой категории клеток к различным лейкозогенным факторам достоверно еще не выявлены, и единого мнения на этот счет у исследователей пока нет.
В связи с развиваемой нами общей кислородно-перекисной концепцией развития, старения, канцерогенеза и апоптоза [27, 28, 30, 33] было выдвинуто представление о существовании "специализированных" диапазонов дисбалансов D (ПО - АО) между их прооксидантной (ПО) и антиоксидантной (АО) составляющими в клетках живого организма. В частности, выделены следующие условные диапазоны значений D (ПО - АО), которым соответствуют и/или от которых зависит конкретное состояние клетки. В пределах дисбалансов DИ (ПО - АО), DП (ПО - АО) и DК (ПО - АО) реализуются соответственно состояние покоя (интерфаза), пролиферация (окислительный митогенез) и канцерогенез; при дисбалансе DЦ (ПО - АО) происходит окислительный цитолиз, а в диапазоне дисбалансов DА1 (ПО - АО) и DА2 (ПО - АО) – апоптозы соответственно типа А1 и А2 [27]. В сокращенном обозначении указанные дисбалансы располагаются в последовательности
DИ < DП < DА1 < DК < DА2 < DЦ.
Постулируется, что лейкозогенез как один из видов проявления канцерогенеза развивается при наличии в клетке дисбаланса DЛ (ПО - АО), аналогичного по сути (по значениям и вызываемым им последствиям) DК (ПО - АО). Почему и как возникает такое состояние в гемопоэтических клетках, это - принципиальные вопросы, на которые желательно найти ответы, чтобы обосновать кислородно-перекисньй механизм лейкозогенеза. В данной работе мы попытались высказать на этот счет некоторые соображения, представляющиеся достаточно логичными и разумными.
Согласно общей кислородно-перекисной концепции канцерогенеза [33] для индукции и развития лейкозогенеза в ПСКК и стволовых клетках в начальных стадиях коммитирования их в определенном направлении дифференцировки должны быть относительно гипероксические условия. Последние могут быть созданы, прежде всего, за счет малого числа действующих митохондрий. Такие принципиально важные данные в обобщенном виде нам пока не встретились, но отдельные факты известны. На низкое содержание митохондрий в стволовых и эмбриональных клетках указывается, например, в работе [114]. Сходная кислородно-перекисная ситуация может возникнуть и в случае сосредоточения митохондрий (даже при достаточном их количестве) преимущественно в околоядерной зоне, где эти органеллы относительно примитивны в структурно-функциональном отношении, не являются полноценными "устройствами" для активного потребления О2 и генерации АТФ [44,52].
Прежде чем продолжить лейкозную тему, представляется важным остановиться на вопросе о состоянии и специфике энергетического обмена в зрелых форменных элементах крови, в частности, в моно - и полинуклеарных фагоцитах, предполагая, что для их недифференцированных предшественников характерна та же специфика энергетики. Функции фагоцитов и такой их феномен как "кислородный (дыхательный) взрыв" определяются структурно-морфологическими и некоторыми другими их особенностями. Так, у данных видов лейкоцитов отсутствуют митохондрии или их очень мало [35,42], а они, как известно, являются основными потребителями О2 в клетке. В этой ситуации почти автоматически должны обеспечиваться низкий уровень утилизации О2 и соответственно относительная внутрифагоцитарная гипероксия.
Подобная информация приводилась в литературе и раньше. Например, отмечалось, что, по сравнению с большинством других типов клеток животного организма, вообще всем лейкоцитам присущи не интенсивное дыхание, а интенсивный гликолиз. Об этом свидетельствуют величины отношений коэффициентов Варбурга
и
: для большинства клеток взрослой ткани их отношение <1, для лейкоцитов же, как и для клеток эмбриональной и раковой тканей, эта величина всегда >1, что согласуется со сравнительно малым числом митохондрий в белых клетках крови, особенно в лимфоцитах [23,26].
Указанные приспособительные изменения имели определенный биологический смысл, и сейчас кажется очевидным, что они понадобились в ходе эволюции для выполнения эффекторными клетками защитных функций путем выработки концентрированного "окислительного удара" против инородных тел в организме. Стимуляция этих клеток вызывает всплеск независимого от митохондриального дыхания потребления О2, приводящий к образованию и секреции повышенного количества высокоактивных прооксидантов
, Н2О2,
.
По современным представлениям, функцию синтеза активных форм кислорода (АФК) выполняет активируемая протеинкиназой С (ПКС) и арахидоновой кислотой НАДФ.Н-оксидаза - специализированный ферментативный комплекс, локализованный на внутренней поверхности плазматической мембраны [14, 104]. НАДФ-Н-оксидаза катализирует реакцию окисления НАДФ. Н до НАДФ+ и одновременно одноэлектронного восстановления О2 до
путем переноса электронов от НАДФ. Н с внутренней стороны мембраны к О2 на наружной ее стороне [18, 61]:
2НАДФ. Н + 4О2 ® 2НАДФ+ + 4
+ 2Н+.
В данном варианте механизма речь идет об использовании внеклеточных молекул О2 для синтеза АФК на внешней поверхности плазматической мембраны фагоцитов, т. е. фактически вне этих клеток. Однако образование повышенного количества АФК будет, очевидно, недостаточно эффективным, если приток О2 к клеткам по той или иной причине станет неустойчивым и ненадежным. Мы полагаем поэтому, что должен существовать дополнительный механизм, поддерживающий образование и секрецию АФК за счет создания необходимых для этого условий внутри самих эффекторных клеток. Одним из основных таких условий должна быть указанная выше вну-трифагоцитарная гипероксия, которая, естественно, невозможна в присутствии множества конкурирующих за кислород митохондрий. Генерируемые
и его производные, в частности Н2О2, могут свободно проникать из клетки через мембрану во внеклеточное пространство и в кровяное русло [87], причем скорость их диффузии через плазматическую мембрану зависит от типа клеток и находится в пределах 0.02-0.4 см/мин [51]. Часть же продуцируемых внутри эффекторов АФК используется для собственно фагоцитоза [1 13].
Ввиду ограниченности митохондриального дыхания все необходимые энергетические затраты в фагоцитах обеспечиваются в основном за счет гликолиза. Так, трансформация моноцитов в макрофаги сопряжена с возрастанием утилизации глюкозы и продукции молочной кислоты. Даже в аэробных условиях 90% энергии для фагоцитоза полиморфноядерные лейкоциты получают не от дыхания, а в результате гликолиза, поэтому ингибиторы гликолиза (йодацетат, фторид) легко и полностью блокируют в них фагоцитоз и другие клеточные процессы. Ими блокируется также цитолиз клеток-мишеней лимфоцитами-киллерами [41]. Кстати, глюкоза необходима и для функционирования НАДФ. Н-оксидазы: при активации последней падает концентрация НАДФ-Н в клетке, что стимулирует окисление глюкозы через гексозо-монофосфатный шунт, поставляющий НАДФ. Н в фагоцитах [см. 38].
Уменьшение общей мощности митохондрий в микро - и макрофагах и, вероятно, в их предшественниках, создавая в принципе условия для накопления О2 и использования его в целях поддержки "кислородного взрыва" изнутри фагоцитов, одновременно придает указанным клеткам такие качества, как повышенная радиочувствительность, приближенность к состоянию развития избыточного ПОЛ. Следовательно, в данном случае новая полезная для организма функция приобретена эффекторными клетками в какой-то мере в ущерб их собственной безопасности - ведь с точки зрения кислородно-перекисной концепции онкогенеза они уже "подготовлены" к восприятию канцерогенных воздействий и злокачественной трансформации, если находятся в состоянии активной пролиферации.
Изложенным представлениям, казалось бы, противоречат сведения о том, что альвеолярные макрофаги в отличие от других их типов имеют хорошо развитый аппарат митохондрий [36]. Но это исключение естественно объяснить опять-таки адаптацией легочных макрофагов к функционированию их при высоком рО2: утилизация О2 увеличенным количеством митохондрий несколько снижает слишком опасный уровень внутриклеточной гипероксии и тем самым защищает макрофаги от их неминуемого окислительного разрушения. Поскольку по своему смыслу данная адаптация противоположна другой - созданию достаточной внутрифагоцитарной гипероксии для реализации "кислородного взрыва", то при установлении количества и размеров митохондрий достигается, по-видимому, определенный компромисс, позволяющий достичь обе указанные цели.
Представленная выше ситуация в моно - и полинуклеарных фагоцитах преднамеренно рассматривается нами в упрощенном варианте, чтобы оттенить в них постулируемые принципиальные структурно-функциональные перестройки и связанные с ней последствия. В действительности же взаимосвязь многих внутриклеточных процессов, естественно, намного сложнее. Так, в неактивированном макрофаге большинство поглощенных им молекул О2, по-видимому, связывается специальными депонирующими соединениями (предположительно, ретиноидами), и в этом состоянии эффекторная клетка должна быть радиорезистентной. Однако после активации в момент быстрого высвобождения депонированного О2, используемого для образования АФК и окислительного повреждения чужеродных веществ, макрофаг становится гипероксичным и, следовательно, радиочувствительным.
Не известно, начинаются ли указанные выше перестроения уже на уровне предшественников дифференцированных лейкоцитов, в частности, на стадии бластных клеток, или же они присущи им изначально. Не исключено, что приспособительный характер утраты ими всех или части митохондрий для выполнения новых функций, в данном случае эффекторных, в принципе сходен с адаптивным процессом самоликвидации митохондрий при созревании эритробластов в эритроциты с целью свободной, бесконкурентной реализации в них "гемоглобинового" механизма депонирования и транспорта О2. Однако высокая радиочувствительность стволовых клеток костного мозга и пролиферируюших бластных клеток как будто бы указывает на то, что некоторые структурно-функциональные особенности, придающие им это О2-зависимое свойство, уже присутствуют в них.
По-видимому, по названным причинам ПСКК присуща хорошо известная исследователям повышенная чувствительность к различным лейкозогенным воздействиям [9] и, в частности, высокая радиочувствительность [40, 57]. Косвенным признаком повышенного рО2 и перекисного окисления липидов (ПОЛ) в нормальной кроветворной клетке костного мозга, обладающей практически неограниченной способностью к пролиферации, служат и данные об очень высоком уровне в ней циклического гуанозинмонофосфата [55]. Действительно, оксиданты различной природы (О2 воздуха,
, гидроперекиси липидов, продукты метаболизма арахидоновой кислоты и др.) активируют гуанилатциклазу и, следовательно, повышают концентрацию гуанозинмонофосфата.
При лейкозной трансформации митохондрии в ПСКК и костно-мозговых клетках-предшественниках гемо - и лимфопоэза, как правило, подвергаются значительным негативным изменениям, что, в частности, выражается в набухании митохондриального матрикса, дезорганизации крист, разрыве оболочки митохондрий [101]. По данному признаку лейкозные клетки не отличаются от неопластических клеток другого вида. Гетерогенность популяции ПСКК и, следовательно, различие в них постулируемых пероксигеназных условий не могут привести к одновременному тотальному поражению всей популяции. Каждая из ее клеток будет изменяться по "индивидуальному" плану, а какая-то часть популяции вообще остается неповрежденной. При этом пролиферация трансформированных клеток становится относительно независимой от их микроокружения.
Лейкозогенез, таким образом, предлагается рассматривать как частный случай общего кислородно-перекисного механизма канцерогенеза [29, 33]. И при этой форме патогенеза основным первичным объектом воздействия лейкозогенных факторов представляются митохондрии. Постулируемая нами количественная и/или функциональная недостаточность этих органелл в ПСКК и их потомках предопределяет высокую чувствительность названных клеток к негативным сдвигам в дыхательном аппарате, с которыми связывается увеличение в них дисбаланса D (ПО - АО) с просто пролиферативного уровня DП (ПО - АО) до лейкозогенного DЛ (ПО - АО).
С позиций теории устойчивости кибернетических систем указанные выше особенности биоэнергетики ПСКК и клеток на ранних стадиях гемопоэза должны означать, что они находятся как бы в состоянии неустойчивого динамического равновесия. Поэтому даже при малых возмущающих воздействиях определенные клетки из гетерогенного их состава могут сравнительно легко сходить с пути нормального кроветворения на развитие апоптоза, лейкозогенеза и других заболеваний их по кислородно-перекисному механизму. Как представляется нам, именно по этой, в основном, причине увеличивается частота возникновения, например, спонтанных лейкозов и ускоряется их развитие у мышей линии АКR под влиянием облучения 137СS в малой (1.2-2.4 сГр) низкоинтенсивной дозе [7].
С учетом сказанного выше об особенностях биоэнергетики в ПСКК, клетках-предшественниках отдельных ростков кроветворения и в фагоцитах вполне реальным представляется и путь индукции лейкозогенеза, связанный с воздействием на кроветворные клетки микроокружения. Речь идет о ретикулярных клетках, образующих сетчатую соединительную ткань, которая составляет основу кроветворных органов. Эти клетки относятся к ретикуло-эндотелиальной системе и обладают высокой фагоцитарной способностью. При наличии раздражающих факторов ретикулярные клетки могут превращаться в активные макрофаги. В этом качестве они, продуцируя АФК, способны, очевидно, сравнительно легко увеличить в прилежащих к ним относительно гипероксичных уже кроветворных клетках значение дисбаланса DП (ПО - АО) до лейкозогенного DЛ (ПО - АО). Иными словами, здесь достаточно вероятна реализация кислородно-перекисного механизма лейкозогенеза, индуцированного макрофагами самого кроветворного органа. Такое представление не удивительно в свете того, что нами в свое время [31-33] был обоснован "макрофаговый" механизм канцерогенеза, индуцируемого инородными телами.
В качестве активаторов клеток ретикулярной соединительной ткани стромы выступают, вероятно, различные колониестимулирующие факторы (КСФ), в частности гранулоцитов (КСФ-Г) и гранулоцитов-макрофагов (КСФ-ГМ). Влияя на О2-активирующие системы плазматической мембраны этих клеток, КСФ могут усиливать генерацию ими АФК. Во всяком случае так происходит in vitro при воздействии КСФ-Г на нейтрофилы, на поверхности которых имеются рецепторы к КСФ-Г. Показано и другое: "Восстановление функциональной активности нейтрофилов у детей с онкогематологическими заболеваниями в процессе терапии с использованием КСФ-Г происходит не в результате прямого воздействия на нейтрофилы, а на уровне вмешательства в процессы кроветворения в костном мозге" [21]. По данным другой работы [96], реактивные производные О2, генерируемые ксантином и ксантиноксидазой, опосредуют синергизм КСФ-ГМ и фактора стволовых клеток, который усиливает митогенный эффект многих кроветворных факторов роста в отношении ранних кроветворных родоначальных клеток мыши. Предварительная обработка этих клеток АФК дозозависимо усиливала образование колоний под влиянием КСФ-ГМ, но не КСФ-Г. Как представляется нам, прямое или косвенное воздействие КСФ на ПСКК и их потомки призвано в норме стимулировать их окислительный митогенез. Однако иногда проявляются негативные процессы, вызванные, главным образом, избыточной продукцией АФК при указанной стимуляции, следствием чего и может быть излагаемый механизм лейкозогенеза.
Следует отметить, что гипотеза о причастности митохондрий в лейкозогенезу выдвигалась и раньше [109], однако, в кислородно-перекисном аспекте роль этих органелл в механизме лейкозогенеза обсуждается, по-видимому, нами впервые. Приводимые ниже материалы призваны дополнить эту концепцию, повысив в ее пользу уровень аргументации.
ИЗБЫТОЧНАЯ ПЕРОКСИГЕНАЦИЯ
В ГЕМОПОЭТИЧЕСКИХ КЛЕТКАХ:
ВОЗМОЖНЫЕ СЛЕДСТВИЯ
И ЛЕЙКОЗОГЕННАЯ НАПРАВЛЕННОСТЬ
Повышенный уровень ПОЛ при лейкозогенезе в значительной мере связан с прямым свободнорадикальным окислением липидов, естественным при слабой митохондриальной базе, и возникающей соответственно внутриклеточной гипероксии. К тому же, в костном мозге больных острыми миело - и лимфолейкозом и хроническим миелолейкозом выявляется повышенная плотность сосудов [66], и неоваскуляризация здесь является, по существу, составной частью кислородно-перекисного механизма лейкозогенеза. Однако, судя по данным литературы, существенная доля избыточного ПОЛ в лейкозных клетках определяется и ферментативными процессами липидной пероксидации, происходящими в норме в составе митогенного каскада, что отчетливо выявляется при подавлении этих процессов и зависимых от них эффектов.
В этом отношении демонстративны факты о мощном антипролиферативном действии ингибиторов 5-липооксигеназы (5-ЛО) на злокачественные гемопоэтические клеточные линии человека. Так, если специфические липооксигеназные метаболиты арахидоновой кислоты лейкотриены В4 и D4 стимулируют пролиферацию злокачественных линий К-562, ЕМ-2, НL-60 и U-937, то пирипрост - специфический ингибитор 5-ЛО - обратимо подавляет пролиферацию этих лейкозных клеток на 95%. Ингибитор же циклооксигеназы индометацин не оказывал супрессорного действия [106]. Активаторы 5-ЛО, в частности, пероксиды жирных кислот, выступающие в данном случае в роли положительной обратной связи, должны, очевидно, способствовать пребыванию указанных лейкозных клеток в состоянии трансформации ввиду устойчивого поддержания в них повышенного, "лейкозогенного" уровня дисбаланса DЛ (ПО-АО).
Избыточные пероксигеназные процессы токсичны также для внутриядерных структур и функций лейкозных клеток. Объектами воздействия АФК и продуктов ПОЛ являются ДНК и ядерные белки, в частности негистоновые. Так, у детей, больных острым лимфобластным лейкозом, в ДНК лимфоцитов идентифицированы типичные изменения азотистых оснований гидроксил-радикалами [102]. Особенно привлекательными представляются факты о том, что частота мутации антионкогена р53 в гематологических новообразованиях статистически достоверно преобладает над таковой в негематологических опухолях. По одной из версий, указанное различие может быть связано с отсутствием гипоксии в большинстве гематологических неоплазм [63]. Не отрицая такое объяснение, мы предлагаем несколько уточнить его, приняв "за основу" АФК-зависимость мутации р53. Как сообщалось в ряде работ [76, 103, 107], мутация гена р53 в клетках некоторых негематологических опухолей действительно вызывалась окислительным стрессом. Однако в гематологических злокачественных клетках, в частности лейкозных, с учетом изложенных выше митохондриально-энергетических их особенностей, такой стресс может быть более выраженным. В этих условиях мутации гена р53 при DЛ (ПО - АО) и должны быть более частыми, чем при DК (ПО - АО).
Окислительной модификации подвергаются, очевидно, и различные ферменты в ядре, теряя или, наоборот, повышая при этом свою активность. Не обойтись, например, без упоминания такой особенности неопластических клеток, в том числе лейкозных, как часто отмечаемая в них повышенная активность теломеразы. Более того, имеются данные, что в гемопоэтических стволовых клетках, способных в норме экспрессировать теломеразу, в случае их злокачественной трансформации происходит дополнительная экспрессия данного фермента в клетках-предшественниках [95]. В этой связи нами высказано предположение о зависимости транскрипции гена теломеразы, как и ряда других генов, от АФК - одного из возможных механизмов реактивации теломеразного гена в условиях умеренно повышенного уровня в опухолевых, нормальных гемопоэтических и, тем более, лейкозных клетках. Косвенно об этом свидетельствуют, на наш взгляд, некоторые факты (см., например, [93]).
Здесь, однако, обнаружены и парадоксальные случаи: несмотря на высокую активность теломеразы, длина теломерных повторов в неопластических клетках уменьшается и теломеры в них короткие. В частности, обратная корреляция между активностью теломеразы и длиной теломер показана у больных с В-клеточным хроническим лимфоцитарным лейкозом. Короткие теломеры и высокая теломеразная активность связывались с более низкой средней выживаемостью этих больных [62]. Одно из вероятных объяснений подобных фактов видится в сказанном выше о месте и роли повышенной концентрации АФК в теломерной концепции. С одной стороны, АФК, похоже, причастны к усилению в злокачественных клетках экспрессии гена теломеразы, но с другой - способствуют укорочению теломер [13, 46, 94]. В зависимости от соотношения этих противоположно направленных действий АФК результаты их могут оказаться неоднозначными, "противоречивыми", что иногда и фиксируется в ряде исследований.
Не исключено, что среди модифицируемых в ядре ферментов при определенных ситуациях оказываются и эндонуклеазы. У детей 4-14 лет при остром лимфобластном лейкозе был установлен факт значительного снижения эндонуклеолиза ядерной ДНК. Это показано при исследовании проб периферической крови и костного мозга больных [15]. Снижение эндонуклеазной активности и нарушение фрагментации ДНК, по мнению авторов этой работы, указывает на повреждение механизма клеточной гибели в данном случае лейкозных клеток. Ремиссия же острого лимфоб-ластного лейкоза сопровождалась нормализацией эндонуклеазной активности как в клетках крови, так и в клетках костного мозга.
В числе интересных материалов в пользу кислородно-перекисного механизма лейкозогенеза отметим также "бензольный" лейкоз, который, в конечном счете, оказывается АФК-индуциру-емым. По данным [105], возникающие в печени фенольные метаболиты бензола попадают в костный мозг и превращаются в семихиноновые радикалы и хиноны. Затем из них образуются АФК, поражающие тубулины, гистоновые белки, теломеразу II, другие связанные с ДНК белки и саму ДНК. Поскольку канцерогенные метаболиты бензола фенольной природы (фенол, гидрохинон, катехол и др.) широко распространены в окружающей среде, то они и могут быть причиной возникновения "спонтанного" лейкоза у человека по указанному механизму. Однако и в этом варианте "химического" лейкоза реально создание в клетках костного мозга пероксидазно-канцерогенезного состояния путем инактивации метаболитами бензола, прежде всего, дыхательных ферментов и ДНК митохондрий, весьма чувствительных, как известно, к химическим канцерогенам [см. 33].
О ФЕНОМЕНЕ ДИФФЕРЕНЦИРОВКИ
ЛЕЙКОЗНЫХ КЛЕТОК
Сложной для понимания остается другая часть обсуждаемой темы - взаимосвязь процессов, ведущих к лейкогенезу, с дифференцировкой находящихся на ранней стадии развития кроветворных клеток. О сущестовании такой связи свидетельствует тот факт, что в ряде случаев во время лейкозной трансформации клеток усиливается их дифференцировка [см. обзор 75]. Казалось бы, по мере нормальной дифференцировки гемопоэтических клеток в них, как и в случае негемопоэтических, энергетическая ситуация должна складываться в сторону возрастания содержания хорошо дифференцированных митохондрий [25, 114], усиления интенсивности митохондриального дыхания и соответственно снижения уровней внутриклеточного дисбаланса DП и ПОЛ, которые в норме необходимы для окислительного митоге-неза незрелых клеточных элементов кроветворной системы. Однако развития событий только в таком направлении при дифференцировке гемо-поэтических и лейкозных клеток может и не быть, хотя бы из-за следующего принципиального различия: утрата контроля над собственным делением в случае большинства неоплазм либо "блокада", "арест" или просто остановка в своей дифференцировке на стадии клетки-предшественницы в случае лейкозов [16,71]. Как отмечает Абелев [1], "сохранение гемобластозом состояния выраженной дифференцировки представляется загадочным и нелогичным".
Исходя из указанного существенного различия можно попытаться понять некоторые "странности" в поведении недодифференцированной лейкозной клетки под влиянием различных агентов и факторов, особенно тех, которые стимулируют рост нормальных негемопоэтических клеток. Речь, прежде всего, идет о том, что лейкозные клетки сохраняют в определенной степени чувствительность к контролирующим механизмам, характерным для нормальных клеток. На этом основывается возможность индукции дифференцировки лейкозной клетки: остановленная в своей дифференцировке клетка может под действием многих веществ и соединений [1, 2, 68, 99], в том числе цитокинов, некоторых глюкокортикоидов, гидрокортизона, дексаметазона, эстрогенов, инсулина, цитостатиков, ретиноевой кислоты, кальциферола, ростовых факторов, диметилсульфоксида, липо - и полисахаридов, низких доз радиации, продолжить дифференцировку вплоть до терминальных форм.
Больше всего удивляет, судя по многочисленным литературным данным [72, 79, 90, 92], способность лейкозных клеток дифференцироваться при воздействии на них форболовых эфиров (12-О-тетрадеканоилфорбол-13-ацетата - ТФА, форболмиристатацетата - ФМА), которые для большинства нормальных негемопоэтических клеток являются стимуляторами роста, опухолевыми промоторами. Последние, как известно, через определенные изоформы ПКС запускают цикл фосфатидилинозита, липо - и циклооксигеназный сигнальные пути как составные компоненты процесса активации пролиферации с повышенным образованием АФК и окисленных метаболитов арахидоновой кислоты, т. е. приводят к возрастанию дисбаланса D (ПО - АО) - условия, необходимого для пролиферации, а не дифференцировки клетки. Почему же тогда в лейкозных клетках НL-60, К-562, U-937 и других при воздействии на них указанными промоторами наблюдается обратная картина, т. е. индуцируется дифференцировочный фенотип? Точного ответа на этот вопрос пока нет. В этой ситуации, к тому же описываемой противоречивыми фактами, важно отнестись с пониманием к самым различным мнениям, даже и кажущимся маловероятными. С этих позиций наши представления тоже заслуживают внимания.
Начнем с того, что в отличие от негемопоэтических клеток, в которых переход к "канцерогенезному" дисбалансу DК происходит, скорее всего, со стадии пролиферации, т. е. из состояния, необходимого для опухолевой трансформации, в гемопоэтических клетках возрастание дисбаланса D (ПО - АО) до лейкозогенного уровня DЛ (при возникновении соответствующих лейкозогенных условий) идет, вероятно, непосредственно с одного из ранних этапов их дифференцировки. Этот момент представляется нам принципиальным. Как известно, дифференцировочный процесс является многоэтапным и перемежающимся с делением клетки. На каждом этапе происходят изменения в транскрипции и трансляции, реализующие определенную часть программы дифференцировки и создающие необходимые предпосылки для перехода к следующему этапу. Этот принцип полностью относится и к гемопоэтическим клеткам. Дифференцировку последних можно считать "окислительной дифференцировкой" (по аналогии с окислительным митогенезом), поскольку она происходит при повышенных кислородно-перекисных условиях (см. выше). Далее, мы предлагаем обсудить следующие два возможных варианта АФК-зависимого развития событий.
1-й вариант. В результате лейкозогенных воздействий в гемопоэтической клетке устанавливается "лейкозогенный" дисбаланс DЛ, причастный к трансформации ее в направлении неконтролируемой пролиферации. Последняя, будучи связанной с дифференцировкой по неантагонистическому, триггерному принципу, останавливает ее на стадии дифференцировки клетки-предшественницы. В описываемой ситуации воздействие на лейкозные клетки агентами и факторами, так или иначе снижающими дисбаланс DЛ, может приводить к апоптозу А1. Примером здесь могут служить работы по индукции апоптоза клеток НеLа [110]. При более же сильном снижении дисбаланса DЛ блокада дифференцировки должна устраняться и дифференцировочный процесс может быть продолжен. Напротив, воздействие на лейкозные клетки агентами и факторами, усиливающими в них окислительный стресс, приводит, с нашей точки зрения, к апоптозу А2 или окислительному цитолизу. К числу таких фактов мы относим, например, данные по апоптозу клеток НеLа [73,81] и U-937 [91].
Возвращаясь в связи первым вариантом механизма к дифференцировочным потенциям форболовых эфиров, выскажем следующее предположение. В лейкозных клетках и их предшественниках семейство изоферментов ПКС, характеризующихся тканевой спцифичностью, представлено преимущественно теми, которые под влиянием эфиров форбола способствуют активации дифференцировочных процессов, а не пролиферативных, как в большинстве других типов клеток. Таким изоферментом, возможно, является, ПКС-b. Некоторые субтипы ПКС-b имеют ядерную локализацию и с ее экспрессией под влиянием форболовых эфиров связывают антипролиферативное действие последних на лейкозные клетки [82]. Весьма любопытны и следующие данные, хотя и не имеющие конкретного отношения к проблеме лейкоза. Как оказалось, ТФА в ультранизких концентрациях 10-18–10-7 М ингибирует ПОЛ в биологических мембранах мозга, активируя ПКС. Последняя в тех же сверхнизких дозах наряду с киназными свойствами обладает свойствами "антиоксидантного" фермента [48]. Не исключено, что в процессе эволюции и гемопоэтические клетки, в том числе ведущие к созреванию фагоцитирующих клеток, тоже приобрели способность к ПКС-зависимому ограничению окислительного митогенеза, но индукции дифференцировки и не обязательно при сверхнизких дозах. Такая дифференцировка, прерванная в связи с избыточным окислительным стрессом и лейкозогенезом, могла бы при действии ТФА продолжиться вследствие устранения им, в частности, АФК-зависимых ограничений.
Данные о прямом или косвенном участии других названных выше "дифференцирующих" агентов и факторов в снижении дисбаланса D (ПО—АО) в лейкозных клетках нам не известны. Однако поводы, хотя и слабые, для возможного действия некоторых из них в таком направлении имеются. Действительно, ретиноиды, включая ретиноевую кислоту, известны как антиоксиданты. У эстрогенов чаще отмечают прооксидантные свойства, но в случае эстрадиола, эстриола и метоксиэстрогена наблюдается только антиоксидантный эффект [84]. Рецепторы глюкокортикоидов могут локализоваться в митохондриях клеток. Эти гормоны способны наряду с действием на транскрипцию ядерных генов влиять и на транскрипцию митохондриальных генов, обеспечивая координированную гормональную регуляцию биосинтеза дыхательных ферментов. Косвенно это должно отражаться на интенсивности дыхания и значении внутриклеточного D (ПО - АО). Такие данные получены, правда, в отношении митохондрий клеток головного мозга крысы [89]. Диметилсульфоксид проявляет себя как антиоксидант, перехватывая радикалы
, что хорошо коррелирует со способностью его подавлять превращение нормальных клеток в опухолевые [78].
Инсулин оказывает стимулирующее действие на аденилатциклазу путем передачи гормонального сигнала, предположительно, в последовательности: рецептор – тирозинкиназа – Gi(bg) - фосфатидилинозитол-3-киназа – ПКС (форболнечувствительная изоформа x) – Gs-белок – аденилатциклаза - циклический аденозинмонофосфат (цАМФ) [58]. Здесь важно отметить, что в лейкозных клетках низки активность аденилатциклазы и содержание цАМФ [55] соответственно и низок уровень цАМФ в плазме крови больных гемобластозами [47]. Способность же инсулина повышать содержание цАМФ приводит, вероятно, в действие через механизм фосфорилирования стимуляцию со стороны цАМФ активности дыхательных ферментов митохондрий [37,97], что должно усилить потребление О2 этими, хотя и немногими, органеллами и снизить тем самым внутриклеточный уровень рО2 и дисбаланс D (ПО - АО). Между прочим, в отличие от соматостатина, его аналог SMS 201995 блокирует пролиферацию клеток линии Jurkat (Т-клеточного лейкоза), активируя в них аденилатциклазу и повышая уровень цАМФ [70]. В этом качестве указанное соединение, возможно, обладает и дифференцирующим действием на лейкозные клетки.
2-й вариант. Необходимость в нем возникла в связи с данными, не укладывающимися в положения предыдущего варианта. Например, при воздействии диметилсульфоксидом или ТФА на клетки НL-60 и U-937 в них усиливается образование
, что коррелирует с индукцией дифференцировки этих клеток [90]. Обработка клеток U -937 дибутирил-цАМФ (500 мкМ) в течение 48 ч приводила их к дифференцировке в зрелые гранулоциты, при этом активировалось образование
и Н2О2 [80]. В указанных случаях в лейкозных клетках устанавливается "дифференцировочный" дисбаланс DД который несколько превышает DЛ но он все же меньше, чем DА2 и тем более DЦ, т. е. DЛ < DД < DА2 < DЦ. Далее вступает в действие соответствующий диапазону дисбаланса DД АФК-зависимый механизм регуляции транскрипционными процессами.
Не исключено, что благодаря именно указанной регуляции происходит экспрессия специфических ингибиторов циклинзависимых киназ в фазе G1, репрограммирующих клетки зритролейкоза мыши МЕL к терминальной дифференцировке [85]. Возможно, тот же регуляторный механизм способствует выработке и эндогенных биорегуляторных миелопептидов, индуцирующих терминальную дифференцировку клеток НL-60 и К-562, а также стимулирующих дифференцировку in vitro клеток костного мозга больных острым миелобластным лейкозом [39]. Современных фактов участия различных АФК как сигнальных молекул в регуляции экспрессии генов, в том числе онкогенов, в настоящее время более чем достаточно [8, 10, 50, 53, 59, 83 и др.]. В целом же многое по данной проблеме продолжает оставаться загадочным и требует дальнейшего изучения.
МАЛЫЕ ЛИМФОЦИТЫ И ЛИМФОЛЕЙКОЗ
Среди различных форм лейкозной трансформации наше повышенное внимание привлек лимфолейкоз, в частности хронический, характеризующийся патологическим разрастанием лимфоидной ткани в лимфоузлах, иногда в селезенке, печени и других органах. В костном мозге наблюдается замещение нормального миелоидного костного мозга лимфоидным. Кровь наводняется лимфоцитами с преобладанием зрелых форм [45]. При обострениях появляются бласты. Со временем развивается малокровие вследствие подавления лимфоидными инфильтратами нормальной кроветворной функции костного мозга.
Хронический лимфолейкоз (ХЛЛ) отличается злокачественной трансформацией преимущественно так называемых нулевых клеток, т. е. малых лимфоцитов, причем в периферической крови больных этой формой лейкоза выделено четыре типа лимфоцитов: большие, малые светлые, малые темные и лимфоплазмоциты; обнаружно также увеличение группы малых светлых лимфоцитов до 74-94% [см. 9]. Кстати, при остром лимфобластном лейкозе (ОЛЛ) также преобладают малые лимфоидные клетки, и эта форма выявляется у 85% детей и у 5-10% взрослых больных ОЛЛ [19].
Преобладание малых лимфоцитов в лимфолейкозе свидетельствует о том, что в пораженной лимфоидной ветви кроветворения дифференцировка клеток почему-то сдвинута в направлении малых лимфоцитов. Это, по-видимому, и объясняет преимущественное их присутствие в крови больных лимфолейкозом. С другой стороны, нами постулируется существование каких-то структурно-функциональных особенностей, придающих им высокую чувствительность к лучевым и иным лейкозогенным воздействиям. Прежде всего, отметим, что малые лимфоциты составляют 95% общего числа лимфоцитов и большинство их - долгоживущие (срок жизни их 100-200 сут и более), многократно циркулирующие между лимфой и кровью. В отличие от средних и больших они не способны к митозу, однако, при воздействии различными митогенами малые лимфоциты превращаются в средние и большие, вступают в митотический цикл и делятся (см. [б]). Формально эти данные как будто объясняют, почему большой процент лимфоидного лейкоза связан именно с малыми лимфоцитами и их предшественниками - ведь высокий количественный показатель и относительное долгожительство существенно увеличивают вероятность воздействия на них значительных суммарных доз лейкозогенных факторов и соответственно вероятность подвергнуться малигнизации.
Однако более важным для злокачественного перерождения малых лимфоцитов и, вероятно, их предшественников нам представляется тот факт, что у них слабо развита цитоплазма и они относятся к наиболее радиочувствительным клеткам [49]. Эти характерные их особенности могут, по-видимому, означать, что имеющиеся митохондрии локализованы преимущественно в околоядерной зоне. Такие центральные органеллы часто дифференцированы слабо и функционируют в основном в режиме воспроизводства себе подобных. Не исключен и вариант с очень ограниченным числом митохондрий в указанных лимфоцитах. Действительно, по некоторым данным [3, 41], в малых лимфоцитах низка концентрация цитохромов, а в одной такой клетке содержится всего 25-30 митохондрий.
В любом из указанных случаев утилизация О2 в дыхательных цепях, как и в фагоцитах, должна быть минимальной, а внутриклеточное рО2 повышенным и ответственным за высокую чувствительность лимфоцитов этого ряда к различным прооксидантным воздействиям. Эти сдвиги, кстати, коррелируют со способностью малых лимфоцитов выполнять функцию клеток-киллеров [4], применяя для окислительной деструкции антигенов "кислородный взрыв". Таким образом, согласно кислородно-перекисной концепции, малые лимфоциты и, как мы полагаем, их предшественники должны быть весьма чувствительными к воздействию канцерогенных, в частности лучевых, факторов и последующей трансформации ввиду, как отмечалось выше, их "подготовленности" к этим событиям.
Обращают на себя внимание и факты присутствия в клетках некоторых лимфоидных лейкозов наряду с дезорганизованными крупных и даже гигантских митохондрий при незначительном общем их количестве [9, 19]. Сходная картина возникает при старении клеток, что обычно рассматривают как реакцию компенсации на уменьшение числа полноценных органелл. Возрастное увеличение среднего размера митохондрий Литошенко [24] объяснял тем, что при старении скорость синтеза белков митохондриального кодирования снижается, а для белков митохондрий ядерного кодирования - сохраняется. Подобный дисбаланс в скоростях синтеза белковых компонентов митохондрий в принципе возможен и в лейкозных клетках, при этом образующиеся в них большие митохондрии в условиях избыточной пероксигенации, скорее всего, дефектны.
Упомянутые выше свойства и особенности малых лимфоцитов плохо согласуются с оспариваемым некоторыми исследователями феноменом: значительным снижением содержания этих клеток в крови онкологических больных, в частности, у людей со злокачественными костными опухолями [11]. Если при каких-то условиях такой феномен действительно реализуется, объяснение его может, предположительно, сводиться к следующему. Возможна, например, ситуация, когда секретируемые опухолью АФК и ростовые факторы, попадая в лимфатические и кровеносные русла, стимулируют и чувствительные к ним малые лимфоциты. При этом уровень их активации может быть таким, что в некоторых случаях он соответствует "пролиферативному" для этих клеток диапазону значений дисбаланса DП (ПО - АО). В условиях умеренной активации малые лимфоциты трансформируются в способные пролиферировать средние или большие лимфоциты. Это сразу же объясняет данные Говалло и соавт. [12] как о снижении процентного содержания малых (мелких) лимфоцитов, так и соответственно увеличении процента больших при злокачественном опухолевом росте.
ВОЗМОЖНЫЕ ПРОГНОЗЫ
ПО МЕХАНИЗМУ ЛЕЙКОЗОГЕНЕЗА
В связи с проблемой лейкоза обратим внимание на феномен бимодального распределения частоты возникновения этого заболевания. Лейкоз поражает преимущественно людей старше 55 лет и детей до 10 лет [40]. О двухдиапазонной возрастной зависимости лейкоза сообщали и другие исследователи [34]. Увеличенный риск заболевания небольшого процента детей лейкозом не имеет пока удовлетворительного объяснения. Мы предполагаем, что у некоторых детей клетки кроветворной ткани, незрелые форменные элементы крови имеют завышенные значения дисбаланса D (ПО - АО), одна из причин которых - ослабленная на антикислородной ступени многоуровневая антиоксидантная зашита. Скорее всего, это связано с недостаточностью митохондриальной базы или ее дефектностью, причем последние могут быть обусловлены и генетически. Действительно, в последнее десятилетие получено немало фактов о развитии у детей различных заболеваний, связанных с митохондриальной недостаточностью из-за разного рода мутаций ДНК митохондрий - наследственных или возникающих под влиянием экопатогенных факторов [17]. По этой причине поражается и кроветворная система [54,77].
Очевидно, индивидуумы, у которых такие мутации накладываются на рассмотренную выше адаптивно сокращенную уже митохондриальную базу кроветворных клеток, должны оказаться наиболее чувствительными к лейкозогенезу, поскольку повышенные значения дисбаланса D (ПО - АО) в них становятся опасным пролейкозогенным фактором, а соответствующая категория детей - группой высокого лейкозного риска. Спонтанно или при воздействии на организм даже малых доз прооксидантных и, в частности, лучевых факторов лейкемия у них может развиться сравнительно легко. В пожилом возрасте лейкоз развивается, по-видимому, по тем же в принципе причинам, но с той лишь разницей, что спорадические мутации митохондриальной ДНК кроветворных клеток в ходе онтогенеза растянуты во времени, накапливаются с возрастом медленно, действуя одновременно как фактор старения
Нас заинтересовали также факты заболеваемости новорожденных детей лейкозом после профилактического применения витамина К в качестве антигеморрагического фактора. По мнению некоторых исследователей [98], зависимость возникновения рака у детей от такой профилактики витамином К считается недоказанной, хотя допускается, что у отдельных детей с исходной недостаточностью репарации ДНК может развиться лейкоз. Здесь, однако, просматривается и вариант индукции этой болезни по кислородно-пере-кисному механизму, который связывается нами со следующим моментом. Оказывается, витамины группы К, в частности витамин К3 (менадион), способны вызывать окислительный стресс в клетках [20, 108]. Применительно к ПСКК и клеткам-предшественникам отдельных ростков кроветворения прооксидантное действие этих витаминов, в соответствии с обсуждаемой кислородно-перекисной концепцией, и должно быть лейкозогенным. Данная аргументация требует, естественно, подтверждения в эксперименте.
В лейкозных клетках повышена экспрессия белка статмина (метабластина, онкопротеина 18), который, связываясь со свободным тубулином, препятствует встраиванию его в микротрубочки и вызывает разборку последних (см. [43]). Эти действия статмина способствуют, как мы полагаем, поддержанию необходимых для окислительного митогенеза и лейкозогенеза условий: дестабилизации цитоскелета и повышенного в клетках дисбаланса D (ПО - АО) на уровне DЛ (ПО - АО). Такой исход аргументируется нами тем, что в случае дезорганизации микротрубочек как внутриклеточных транспортных путей нарушается бесперебойная адресная доставка питательных веществ и О2 к митохондриям, прикрепленным в норме к микротрубочкам. В результате эффективность работы митохондрий по утилизации О2 должна снижаться, а значения рО2 и D (ПО - АО) в клетке соответственно — возрастать. Если по той же причине эти показатели повышаются до более высокого уровня, то может в принципе реализоваться и кислородно-перекисный механизм апоптоза клеток с указанным в них дефектом [27].
Важным, однако, прежде всего в теоретическом отношении становится осмысление фактов, указывающих на нередкое установление в лей-козных клетках антиапоптозного состояния. В дополнение к уже приведенным материалам сошлемся и на такие. У детей, больных острыми лимфобластным и миелоидным лейкозами, показана низкая экспрессия рецептора СD95, опосредующего апоптоз, и высокая экспрессия антиапоптозного белка bcl-2. На таком уровне оба эти белка фактически определяют резистентность к апоптозу указанных лейкозных клеток [22]. Антиген СD95 отсутствовал на лейкозных клетках у резистентных к терапии больных хроническим лимфолейкозом [5]. Экспрессия некоторых генов семейства bcl-2 в лейкозных клетках разного вида, как и во многих других злокачественно трансформированных клетках, усиливается в сторону защиты от апоптоза. В контрольных клетках лейкоза НL-60 экспрессия белка bcl-2 регистрируется в 94%, но при инкубации их с кверцетином (флавоноидным антиоксидантом) в концентрации 15-60 мкМ в течение 48 ч снижается до 84--45%. Экспрессия мРНК bcl-2 также заметно падает после обработки клеток кверцетином [116].
Индуцировать экспрессию белка bcl-2 и ингибировать апоптоз различных клеток способен интерлейкин-6 (ИЛ-6) [60]. Продукция его усиливается при окислительном стрессе [117], стимуляции каскада арахидоновой кислоты [86], в плазматических клетках костного мозга больных множественной миеломой [100], а также с возрастом [67]. Эти примеры свидетельствуют о существенном моменте: экспрессия bcl-2 прямо или косвенно зависит от АФК, т. е., по нашей концепции, при повышенных "кислородно-перекисных" условиях индукции и поддержания лейкозогенеза эта экспрессия и должна возрастать.
Сложнее понять причины снижения экспрессии рецептора СD95 при острых лейкозах у детей (см. выше) и, вероятно, при других видах лейкозов. Какие-либо объяснения на этот счет в литературе не приводятся. Поэтому полезными, возможно, окажутся следующие два наши предварительные суждения:
1) экспрессия рецептора СD95 (Fas) и сопряженных с его цитоплазматическим доменом белков предпринимается организмом в качестве сигнала о дефектности клетки, невозможности в ней восстановить нормальное состояние или по каким-то причинам запустить механизм апоптоза
больной клетки самостоятельно. Такую ситуацию создают сами дефектные клетки, но под влиянием внешних факторов (например, цитокинов) число подобных клеток может возрастать, а экспрессия Fas на них - усиливаться [88]. Это происходит в ответ на усугубление патологического состояния в указанных клетках, которые фактически сигнализируют своему окружению о помощи и
готовности погибнуть в интересах организма;
2) количественная и/или функциональная недостаточность митохондрий в ПСКК и их потомках, повышенный уровень в них дисбаланса D (ПО - АО) представляет для этих клеток нормальное состояние, граничащее, однако, как уже
отмечалось выше, с состоянием неустойчивого динамического равновесия - сравнительно легким переходом на патологические уровни окислительного стресса при наличии даже малых возмущающих воздействий, прежде всего, на митохондриальное дыхание. Находясь в таком "привычном", адаптированном к близко критическому состоянии, ПСКК, клетки-предшественники гемо - и лимфопоэза стали, возможно, недостаточно "бдительными", не обезопасили процесс кроветворения и организм достаточным уровнем экспрессии рецептора СD95 (Fas) с целью вынуждения наиболее дефектных из них и тем более уже
лейкозных к апоптозу при воздействиях извне. Но, с другой стороны, возникает сомнение, что природа поступила тут неправильно. Возможно, здесь реальной была более опасная альтернативная ситуация: экспрессия рецептора СD95 (Fas) на поверхности многих ПСКК и их потомков могла бы стать причиной массовой их гибели и нарушения кроветворения вообще.
Данные соображения являются сугубо гипотетическими. На стадии высказывания и накопления новых идей они, надо полагать, имеют право на существование вплоть до получения определенных доказательств в пользу обсуждаемых представлений или, наоборот, отвергающих их правомерность.
Наконец, в порядке предварительного обсуждения укажем на один возможный, хотя и довольно спорный пока, путь индукции лейкозогенеза. Речь здесь идет о последствиях того, что в норме небольшая, по-видимому, часть ПСКК попадает из костного мозга в систему кровообращения, циркулирует в ней какое-то время, внедряется в другие органы кроветворения. Например, исследование у некоторых мышей судьбы гемопоэтических стволовых клеток и клеток-предшественников отдельных ростков кроветворения костного мозга показало, что они мигрируют в кровь и этот процесс является физиологическим [115]. Более того, изучалась возможность мобилизации у онкологических и гематологических больных стволовых клеток периферической крови с целью последующей трансплантации их с использованием КСФ, в том числе КСФ-Г. Последний вызывал достоверно более выраженную стимуляцию лейкопоэза у больных [56]. Интерес к аутологичной трансплантации стволовых кроветворных клеток периферической крови, например, при остром миелобластном лейкозе связывают с меньшей контаминацией опухолевыми клетками по сравнению с костным мозгом [64].
Циркулирующие ПСКК из-за указанных выше их структурно-функциональных особенностей могут в некоторых случаях относительно легко подвергаться первичному поражению и трансформироваться в лейкозные под влиянием как внешних (радиация и др.), так и внутренних (повышенные уровни рО2 и прооксидантов в крови) лейкозогенных факторов. Попадая с током крови обратно в костный мозг и другие кроветворные органы, они могут стать в них центрами (очагами) патологического кроветворения и постепенно заместить собой всю кроветворную ткань. По данному механизму лейкозогенез может индуцироваться, скорее всего, на базе циркулирующих стволовых клеток, коммитированных в направлении лимфоидного кроветворения и дифференцировки малых лимфоцитов, поскольку они долгожители. Вероятность трансформации таких клеток в процессе длительного пребывания их в сосудистой системе организма значительно выше, чем у других незрелых и зрелых форменных элементов крови.
Предположение о существовании указанного "обратного" механизма лейкозогенеза, естественно, противоречит установившемуся мнению, согласно которому первичные сдвиги при этой патологии происходят всегда в самих кроветворных органах, прежде всего в костном мозге. Тем не менее ничто не мешает полагать, что ПСКК, клетки-предшественники отдельных ростков кроветворения и даже некоторые уже зрелые эффекторные клетки крови могут трансформироваться вне органа кроветворения, в ходе их циркуляции по системе кровообращения, т. е. в условиях повышенного кислородного напряжения, с последующим обратным "метастазированием" в их родоначальный орган. Данная точка зрения на проблему лейкоза не встречалась в литературе и высказывается, по-видимому, нами впервые.
Обсуждая кислородно-перекисный механизм лейкозогенеза, мы связали его с принципиально важным, по нашему мнению, положением - малым числом митохондрий в ПСКК, клетках-предшественниках отдельных ростков кроветворения и в некоторых иммунокомпетентных клетках, в частности микро - и макрофагах. В норме эта морфо-физиологическая особенность создает необходимые условия для поддержания в указанных клетках окислительного митогенеза и/или использования внутриклеточного О2 преимущественно для специальных недыхательных функций. Но в этой же их особенности кроется относительная легкость возникновения некоторых "кисло-родно-перекисных" патологий. Таким образом, минимизация необходимого количества митохондрий в специализированных типах клеток, приспособленная природой для реализации определенных полезных, в основном неэнергетических функций, связана и с повышенным риском заболевания таких клеток через установление в них окислительного стресса - необходимого условия для инициации указанных патологий, в том числе лейкозогенеза. Вкратце это положение изложено в нашей недавней статье [29].
Кислородно-перекисная концепция лейкозогенеза объясняет многие факты протекторного действия различных антиоксидантов. В числе последних отметим, например, ресвератрол - фенольный антиоксидант, натуральный компонент виноградного вина. Ресвератрол дозозависимо угнетал рост клеток моноцитарного лейкоза человека ТНР-1 [112]. Он же проявлял антилейкозную активность в отношении клеток лейкоза мышей (L1210) и человека (U937, НL-60), подавляя пролиферацию клеток. Ингибиторный эффект ресвератрола проявлялся также на нормальных гемопоэтических клетках-предшественниках и был частично обратимым, действие же его на лейкозные клетки было необратимым [69].
Как новое эффективное лекарство против лейкоза представлен 2-хлор-2'-дезоксиаденозин. Особенностью его является раннее действие на функции митохондрий и содержание митохондри-альной ДНК, показанное на культивируемых в течение £ 7 дней клетках лейкоза человека ССRF [74]. Для отслеживания изменений окислительного фосфорилирования и митохондриальной дисфункции здесь использовано образование молочной кислоты в клетке. Короткая инкубация с указанным агентом приводила к увеличению уровня лактата уже через 12 ч экспозиции, параллельно цитотоксичности. С нашей точки зрения, эти результаты являются следствием возрастания дисбаланса D (ПО - АО) с лейкозогенного уровня до апоптозного А2 или сразу до цитолизного, вызванного, прежде всего, снижением митохондриального дыхания и гипероксией внутри лейкозных клеток в дополнение к таким уже существующим в них сдвигам.
Исходя из рассмотренных нами положений о провоцирующей лейкозогенез роли повышенного уровня рО2, следует ожидать, что обитатели высокогорных районов менее радиочувствительны, а случаи лейкоза среди них достаточно редки. Такие данные, действительно, существуют (см., например, давнюю публикацию [111]). Показательны также статистические данные [65], согласно которым, начиная с 2000 футов над уровнем моря, частота заболеваемости лейкозом, против ожидания, значительно падала с дальнейшим повышением высоты. Впрочем, "высотная" гипоксия известна не только как антилейкозный, но и вообще противоопухолевый фактор [33].
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. И. //Клиническая онкогематология: Руководство для врачей. М.: Медицина, 2001. С. 116.
2. , А. Родоначальные кроветворные клетки человека. Л.: Наука, 19с.
3. , , Н. // Биохимия. 1983. Т. 48. № 9. С. 1463.
4. Балаж А. Биология опухолей. Сомнения и надежды. М.: Мир, 19с.
5. Ю. // Int. J. Immunorehabil. 1999. № 14. Р. 64.
6. Биологический энциклопедический словарь. М.: Советская энциклопедия, 1989. С. 321.
7. , Н. //Радиац. биология. Радиоэкология. 2001. Т. 41. № 4. С. 385.
8. , , К. //Радиац. биол. Радиоэкол. 2001. Т. 41. № 5. С. 489.
9. , , И. Лейкозные клетки: происхождение, ультраструктура, дифференцировка. Киев: Наукова думка, 19с.
10. , , //Цитология. 1999. Т. 41. № 5. С. 394.
11. , , Т. // Вопросы онкологии. 1987. Т. 33. № 9. С. 15.
12 ., , М. // Генет. и иммунол. методы исследования больных с заболеваниями опорно-двигат. аппарата. М., 1988. С. 61.
13. Г. // 1996. Т. 61. № 11. С. 2045.
14. Е. //Успехи современной биологии. 1989. Т. 108. № 4. С. 3.
15. , , И. // Гематол. и трансфузиол. 1995.Т. 40. № 5. С. 8.
16. , , Г. Молекулярные основы канцерогенеза у человека. М.: 19с.
17. , С. // Архив патол. 1997. Т. 59. № 5. С. 3.
18. , А. //Цитология. 1997. Т. 39. № 4-5. С. 320.
19. Г. Острые лейкозы. М.: Медицина, 19с.
20. , В. // Биохимия. 1999. Т. 64. № 4. С. 558.
21. , , Герайн В. // Биополимеры и клетка. 1998. Т. 14. № 6. С. 544.
22. , , А. // 2 Симпозиум «Биол. основы терапии онкогематол. Заболеваний». М., 2001. С. 17.
23. А. //Нормальное кроветворение и его регуляция. М.: Медицина, 1976. С. 260.
24. Я. // Вопр. медицинской химии. 1985. Т. 31. № 2. С. 105.
25. Н. //ин-т эксперим. кардиол. ВКНЦ АМН СССР. М., 1с. (Деп. в ВИНИТИ, 1985. ).
26. , Ф. //Бюлл. эксперим. биол. 1958 № 12. С.57.
27. Лю Б. Н. //Успехи современной биологии. 2001. Т.121. № 5. С. 488.
28. Лю Б. Н. //Успехи современной биологии. 2002. Т.122. № 4. С. 376-389.
29. Лю Б. Н. //Современные аспекты онкологии и радиологии. Сб. научных трудов, посвященных 80-летию Балмуханова , 2002. С.41.
30. Лю Б. Н., И. // Рак – проблема XXI века. Сб. науч. статей, посвященных 40-летию. Казах. НИИ онкол. и радиол. Алматы, 2000. С.415.
31. Лю Б. Н., М. // Тезисы докл. VI Всес. симпозиума «Синтетические полимеры медицинского назначения». Алма-Ата, 1983. С. 200.
32. Лю Б. Н., М. // Успехи современной биологии. 1989. Т. 107. № 2. С. 289.
33. Лю Б. Н., М. Физико-химические и биокибернетические аспекты онкогенеза. Алма-Ата: Гылым, 19с.
34. , , А. // Мед.-биол. вопр. норм. и патол. старения. Тез. докл. 1 Всесрос. конф. 1994. С. 75.
35. , , Н. //Иммунология. 1999. № 6. С. 11.
36. Н. Хроническое воспаление. М.: Медицина, 19с.
37. , , И. // Биохимия. 1990. Т. 55. № 2. С. 225.
38. , , Г. //Биол. мембраны. 2002. Т. 19. № 3. С. 195.
39. А. // Цитология. 2001. Т. 43. № 4. С.367.
40. И. Отдаленные последствия ионизирующих излучений. М.: Медицина, 19с.
41. Н. // Молекулярные механизмы клеточного гомеостаза. Новосибирск: Наука, 1987. С. 169.
42. Мусил Я. Основы биохимии патологических процессов. М.: Медицина, 19с.
43. , А. // Успехи биол. химии. 1999. Т. 39. С. 187.
44. Д. Рост и воспроизведение митохондрий. М.: Наука, 19с.
45. Н. Лечение болезней внутренних органов: Руководство. Т. 4. М.: Мед. литература, 20с.
46. М. // Биохимия. 1996. Т. 61. № 11. С. 1948.
47. А. // Иммунопрофилакт., иммунодиагност. и иммунокоррекция. Омск, 1944. С.56.
48. , , Б. // Биол. мембраны. 1997. Т. 14. № 4. С. 376.
49. М. // I Всес. радиобиол. съезд. Т. 1. Пущино, 1989. С. 158.
50. В. //Биохимия. 1997. Т. 62. № 12. С. 1571.
51. , , И. Биохемилюминесценция клеток при опухолевом росте. Киев: Наукова думка, 19с.
52. , Квитницкая-, А. // Пробл. старения и долголетия. 1993. Т.3. № 1. С.29.
53. Т. //Биохимия. 2002. Т.67. № 3. С. 339.
54. Бадер- // Гематол. и трансфузиол. 1995. Т. 40. № 2. С. 16.
55. , , Е. Циклические нуклеотиды и их аналоги в медицине. М.: Медицина, 19с.
56. , , // Вопросы онкологии. 1999. Т. 45. № 4. С. 380.
57. , А. Стволовая кроветворная клетка и ее микроокружение. М.: Медицина, 19с.
58. , , Н. // Биохимия. 2002. Т. 67. № 3. С. 403.
59. Allen R. G., Tresini M. // Free Radic. Biol. Med. 2000. V. 28, № 3. Р. 463.
60. Atreya R., Mudter J., Finotto S., Müllberg J., Jostock T., Wirtz S., Schütz M., Bartsch B., Holtmann M., Becker C. // Nature Med. 2000. V. 6. № 5. Р. 583.
61. Babior B. M. // Blood. 1999. V. 93. P. 1464.
62. Bechter O. E., Eisterer W., Pall G. // Cancer Res. 1998. V. 58. № 21. Р. 4918.
63. Calin G., Ivan M., Stefanescu D. // Med. Hypothesis. 1999. V. 53. № 4. Р. 326.
64. De La Rubia J., Sanz M. A. // Best. Pract. and Res. Clin. Haematol. 1999. V. 12. № 1-2. Р. 139.
65. Eckholf N. D., Shultis J. K., Clack R. W., Ramer E. R. // Health Phys. 1974. V. 27. № 4. Р. 377.
66. Fiedler W., Gehling U., Mende T., Hossfeld D. K. // Dtsch. Arztebl. 2001. Bd.98. S. 1109.
67. Ershler W. B., Keller E. T. // Annu. Rev. Med.: Selec. Top. Clim. Sci. V. 51. Palo Alto (CalifP. 245.
68. Garsia-Bermejo L., Vilaboa N. F., Perez C. // Exp. Cell Res. 1997. V. 236. № 1. Р. 268.
69. Gautam S. C., Xu Y. X., Dumaguin M., Janakiraman N., Chapman R. A. // Bone Marrow Transplant. 2000. V.25. № 6. P. 639.
70. Giannetti N., Enjalbet A., Krantic S. //J. Cell. Biochem. 2000. V.78. № 4. Р.666.
71. Greaves M. F. // Cancer Surveys. 1982. V. 1. № 2. Р. 189.
72. Hallbeck A. L., Walz T. M., Wasteson A. // Biosci. Repts. 2001. V.21. № 3. Р. 325.
73. Hentosch P., Tibudan M. // Mol. Pharmacol. 1997. V. 51. № 4. Р. 613.
74. Ho E. S. P., O´Neill H. C. // Immunol. and Cell Biol. 1995. V. 73. № 3. Р. 193.
75. Hayen T., Dvilansky A., Oriev L., Nathan I. //Anticancer Res. 1999. V. 19. № 3а. Р. 2089.
76. Hussain S. P., Aguilar F., Amstad P., Cerutti P. // Oncogene. 1994. V. 9. № 8. Р. 2277.
77. Kapsa R., Thompson G. N., Thorbun D. R. // J. Inherit. Metab. Dis. 1994. V. 17. № 5. Р. 521.
78. Kennedy A. R., Symons M. C. R. // Carcinogenesis. 1987. V. 8. № 5. Р. 683.
79. Kwon T. K., Baek S. H., Kim J. H., Lee S. J., Park Y.-K., Kwun K. B., Buchholz M. A., Nordin A. A. // Exp. Cell Res. 2000. V. 257. № 1. Р. 145.
80. Laskin D. L., Beaves A. J., Sirak A. A., O´Connell S. M., Laskin J. D. // Cancer Res. 1990. V. 50. № 1. Р. 20.
81. Liu G.-Y., Chen K.-J., Lin-Shiau S.-Y., Lin J.-K. // Mol. Carcinogenes. 1999. V. 25. № 3. Р. 196.
82. Macfariane D. E., Manzel L. // J. Biol. Chem. 1994. V. 269. № 6. Р. 4327.
83. Maher P., Schubert D. // Cell and Mol. Life Sci. 2000. V. 57. № 8-9. Р. 1287.
84. Markides C. S. A., Roy D., Liehr J. G. // Arch. Biochem. Biophys. 1998. V. 360. № 1. Р. 105.
85. Matushansky I., Radparvar F., Skoultchi A. I. // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 2000. V. 97. № 26. Р. 14317.
86. Miwa M., Kozawa O., Tokuda H., Uematsu Т. // Prostagland., Leikotrienes and Essent. Fatty Acids. 2000. V. 62. № 3. Р. 189.
87. Morre D. M., Lenaz G., Morre D. J. //J. Exp. Biol. 2000. V. 203. №. 10. Р. 1513.
88. Moulian N., Bidault J., Planche C., Berrich-Aknin S. // Blood. 1998. V. 92. № 4. Р. 1297.
89. Moutsatsou P., Psarra A.-M., Tsiapara A., Paraskevakou H., Davaris P., Sekeris C. E. // Arch. Biochim. Biophys. 2001. V. 386. № 1. Р. 69.
90. Mullan P. B., McKenna P. G., McKelvey-Martin V. J. // Brit. J. Biomed. Sci. 1997. V. 54. № 2. Р. 91.
91. Nathan I., Dizdaroglu M., Bernstein L., Junker U., Lee C., Muegge K., Durum S. K. // Cytokine. 2000. V. 12. № 7. Р. 881.
92. Nie J., Ota K., Morisawa K., Auer B., Schweiger M., Taniguchi T. // Biochemisty 1998. V. 37. № 40. Р. 14181. V. 37. № 40. Р. 14181.
93. Ogino M., Hisatomi H., Murata M., Hanazono M. // Jap. J. Cancer Res. 1999. V. 90. № 7. Р. 758.
94. Oikawa Sh., Kawanishi Sh. // FEBS Lett. 1999. V. 453. № 3. Р. 365.
95. Powles N., Rudin J., Carland J., Joyner M. // Brit. J. Hematol. 1997. V. 97. Suppl. 1. P. 19.
96. Pyatt D. W., Stillman W. S., Irans R. D. // Mol. Pharmacol. 1996. V. 49. № 6. Р. 1097.
97. Qu W., Graves L. M., Thurman R. G. // Amer. J. Physiol. 1999. V. 277. № 5. Part 1. P. 1048.
98. Ross J. A., Davies S. M. // Med. And Pediat. Oncol. 2000. V. 36. № 6. Р. 434.
99. Sachs L. //J. Cell. Physiol. 1997. V. 173. № 2. P. 126.
100. Sati H. I. A., Apperley J. F., Greaves M., Lawry J., Gooding R., Russel R., Graham G., Croucher I. // Brit. J. Haematol. 1998. V. 101. № 2. Р. 287.
101. Schumacher H. R., Szekely I. E., Fisher D. R. // Amer. J. Hematol. 1980. V.9, № 1. Р. 49.
102. Sentürker S., Karahalil B., Inal M., Yimaz H., Müslümanogli H., Gedikoglu G., Dizdaroglu M. // FEBS Lett. 1997. V. 401. № 1. Р. 97.
103. Shen H. M., Ong C. N. // Mutat. Res. 1996. V. 366. № 1. Р. 23.
104. Shiose A., Sumimoto H. // J. Biol. Chem. 2000. V 275. № 18. Р. 13793.
105. Smith M. T. // Environ. Health Perspect. 1996. V. 104. Suppl. 6. P. 1219.
106. Snyder D. S., Castro R., Desforges J. F. // Exp. Hematol. 1989. V. 17. № 1. Р. 6
107. Souici A. C., Mirovitch J., Hausel P., Keefer L. K., Felleybosko E. // Carcinogenesis. 2000. V. 21. № 2. Р. 281.
108. Suzuki Y., Ono Y. // Biochem. Biophys. mun. 1999. V. 255. № 2. Р. 262.
109. Szekely I. E., Fischer D. R., Schumacher H. R. //Cancer. 1976. V.37. № 2. P. 815.
110. Takahashi N. // Biol. and Pharm. Bull. 2000. V. 23. № 2. Р. 222.
111. Tatum H. J., Popa E., Stevenson S. // Тр. VIII Международ противоракового конгресса. Т. 4. М.: Медгиз, 1963. С. 116.
112. Tsan M.-F., White J. E., Maheshwari J. G., Brenner T. A., Sacco J. // Brit. J. Haematol. 2000. V. 109. № 2. Р. 405.
113. Van Furh R. // Acta Paediatr. Hungar. . V. 29. P. 11.
114. Von Wagenheim K. H., Peterson H. P. //J. Theor. Biol. 1998. V. 409. P. 663.
115. Wright D. E., Wagers A. J., Gulati A. P., Johnson E. L., Weissman I. L. // Science. 2001. V. 294. № 000. Р. 1933.
116. Xiao D., Gu Z.-L., Zxu S. P. // Zhongguo yaoli xuebao (Acta pharmacol. sinV. 19. № 6. Р. 551.
117. Yoshida Y., Maruyama M., Fujita T., Arai N., Hayashi R., Araya J., Matsui S., Yamashita N., Sugiyama E., Kobayashi M. // Amer. J. Physiol. 1999. V. 276.№ 6. Pt. 1. P. 900.
Peroxigenasive Processes and Leukosogenesis
B. N. Lyu
Kazakh National Technical University, Almaty, Kazakhstan
High sensibility of the gemopoetical cells to radiation, prooxidative and other leukosogenical effects is connected with some morphological and energetic peculiarities. This sensibility is based on the minimal sufficient quantity of the active mitochondries and accordingly increase intracellular levels of pO2 and active form of oxygen (AFO), which are normally required for cells oxidative mitogenesis. When the mitochondrial res-piratory is decrease or destroy this state redoubles and oxidative stress appears relatively easy. This oxidative stress is necessary condition for induction and support of leukosogenesis. The ability of leukemic cells to continue interrupted in their differentiation, can be explained by the influence of differentiative agents. These differentiative agents can directly or indirectly influence the AFO level and change the AFO-dependent transcription of the differentiation genes. In general antioxdative therapy confirms the oxygen-peroxide concept of the leukosogenesis.


