Чума свиней

Чума свиней (лат. Pestis suum, англ. Swine fever, Hog cholera).

Чума - высококонтагиозная вирусная болезнь, характеризующаяся при остром течении септицемией и геморрагическим диатезом, постоянным типом лихорадки, а при подостром или хроническом часто осложняется секундарной инфекцией (бактериями из группы сальмонелл или пастерелл), что проявляется в виде крупозных пневмоний и крупознодифтерическим колитом.

Историческая справка. Распространение болезни. Болезнь впервые описана в Северной Америке в 1833г. В 60-х гг. XIX в. Она распространилась в большинстве стран Европы, и до 50-х гг. XX в. ее отмечали во многих странах мира. В Россию вирус чумы занесен в 1903г. из Западной Европы. Вирусную природу болезни установили в 1903г. американские исследователи Швейниц и Дорсет. Большой вклад в изучение чумы и разработки профилактических мероприятий внесли , , , и др. За последние годы опубликованы данные о биологии вируса, описаны формы клинического проявления и течения эпизоотического процесса, предложены вакцины, разработаны средства и методы диагностики, однако предпринимаемые попытки ликвидации болезни успеха пока не имеют.

Классическая чума свиней (КЧС) относится к списку А особо опасных инфекций и наносит большой экономический ущерб свиноводству как и развивающихся, так и развитых страна с хорошо организованным ветеринарно-санитарным надзором. В настоящее время встречается повсеместно на всех континентах за исключением США, Канады, Австралии, Исландии, Новой Зеландии, Норвегии, Швеции. Больше других эта инфекция распространена в странах Европы, Азии, Южной и Центральной Америки, где хорошо развито свиноводство.

В гг. около 60 стран мира были неблагополучны по КЧС. Рост эпизоотологических показателей КЧС в Европе объясняется тем, что страны ЕЭС разработали программу искоренения этой болезни в сочетании с резким ограничением или полным прекращением проведения профилактической иммунизации живыми вакцинами. За рубежом уже давно считается аксиомой, что если в стране продолжается вакцинация свиней против КЧС, да еще и живыми вакцинами, то эту страну нельзя считать свободной от возбудителя этой болезни.

Отмечается периодическое усиление и ослабление проявления эпизоотического процесса чумы и в России (табл.1).

Таблица 1.

Эпизоотическая ситуация по КЧС в РФ за период гг.

Периоды (гг.)	Количество свиней (млн.)	Количество вспышек всего/год	Заболело всего (тыс.)	Пало всего (тыс.) летальность (%)
	347,2	118/12	*	*
	236	109/18	144,5	54,9/38
	234,3	324/36	243,9	123,2/50,5
	99,7	60/10	10,9	5,2/47,7

Примечание: *-данных нет

В 2005 году было зарегистрировано 7 неблагополучных пунков на территориях 5 субъектов (Владимирская, Московская, Волгоградская, Тверская области и р. Коми).

Возбудитель болезни. Возбудитель – РНК-содержащий вирус из рода Pestivirus семейства Flaviviridae. По вирулентности различают А-, В - и С-варианты вируса. В группу А входят вирулентные эпизоотические штаммы, вызывающие у свиней всех возрастов остропротекающую болезнь. Вирусы подгруппы В вирулентны только для поросят и при циркуляции в стаде вызывают атипичную или хроническую чуму. К подгруппе С относится американский слабо вирулентный штамм. Установлено одностороннее родство между вирусом КЧС и вирусом диареи КРС: антитела к виру диареи КРС нейтрализуют вирус КЧС, но антитела к вирусу КЧС не нейтрализуют вирус диареи. Вирус пантропен, накапливается во всех органах и тканях, но преимущественно в лимфоузлах, костном мозге, селезенке, печени, слизистой оболочке кишечника и эндотелии кровеносных сосудов. Вирус размножается в гомологичных (свиньи) и гетерологичных (КРС, овцы, козы) культурах клеток без ЦПД.

Лабораторные животные невосприимчивы. Вирус удается репродуцировать в первичной культуре клеток легких, селезенки, почки. Вирус чумы свиней адаптируется к организму кролика.

Устойчивость. По устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам вирус чумы относится к устойчивым (2 группа). В свинарниках не теряет вирулентности в течение года, в замороженном мясе – более 4 лет, свежеохлажденном мясе 45-71 день, в солонине - более 6 мес., в копченостях -3 мес. При прогревании мясных продуктов при 44С вирус инактивируется через 4 часа. В навозе и трупах погибает через 3-5 дней, в почве через 1-2 недели. Сыворотка крови больных чумой свиней при 37С содержит активный вирус 11 дней, при 2-4С, не теряет активности 4-6 мес. Неустойчив к высоким температурам. Для дезинфекции наиболее эффективны растворы: едкого натра (2-3%-ные), формалина (2%-ный), хлорной извести (2-3%-ные), однохлористого йода (5%-ный), перекиси водорода (3-4%-ные), йодеза (1%-ный), виркона С 1:350 и др. Быстро инактивируется под действием ультрафиолетового света.

Эпизоотологические данные. При эпизоотологическом анализе внимание обращают на заболеваемость свиней на соседних фермах и в приусадебных хозяйствах, на наличие природных очагов этой инфекции, факты гибели диких кабанов и реализации свинины от таких животных, добытой охотниками, поступление на ферму свиней, кормов, кухонных и боенских отходов. Обращают внимание на связи транспортных средств с перевозкой свиней, особенно из хозяйств, оздоровленных от этой инфекции. Учитывают характер рапространения инфекции: при одновременном заболевании большого числа животных уделяют повышенное внимание кормам и ингредиентам, из которых они приготовлены, как факторы передачи возбудителя инфекции. При выявлении единичных больных и постепенном веероподобном распространении инфекции на ферме уточняют связи обслуживающего персонала с неблагополучными пунктами и другие факторы передачи возбудителя инфекции.

Факторами передачи возбудителя могут являться животные личных подворий. Продукты убоя больных свиней, поступившие из индивидуального сектора по неучтенным каналам, способствуют механическому переносу и сохранению вируса во внешней среде. Распространение вируса КЧС в значительной мере зависит также от ветеринарно-санитарного состояния хозяйства. Отсутствие скотомогильников и убойных площадок, убой в необорудованных местах, захоронение трупов павших или внутренностей вынужденно убитых животных в землю способствует заражению диких животных.

Установлено, что имеющие недостаточный иммунитет супоросные свиноматки в случае заноса болезни в хозяйство являются основным источником возбудителя для новорожденных, играют важную роль в его поддержании и распространении. Данные вирусологических исследований показали, что вирус КЧС персистирует среди паросят отъемного возраста и молодняка на доращивании. Продажа и транспортирование таких животных в инкубационном периоде, очевидно являются основной причиной распространения вируса среди этих хозяйств.

Из неблагополучных хозяйств вирус КЧС выносится за 2 недели до появления болезни в инкубационном периоде и после начала ее до установления диагноза, когда животных без ограничения вывозят на мясокомбинаты и другие хозяйства. Реализация продуктов убоя таких свиней - главная причина распространения чумы в современных условиях. Важное значение имеют механические переносчики вируса - домашние и дикие животные, мухи, птицы, обслуживающий персонал, ветеринарные специалисты (кастраторы, вакцинаторы, осеминаторы). Описана передача вируса комарами. Примерно из 100 комаров разных видов, отловленных в двух неблагополучных по КЧС фермах, готовили суспензию и заражали поросят. В 8 случаях поросята заболели.

Животные заражаются чумой при совместном их содержании с больными, при размещении свиней в инфицированных помещениях, а также при скармливании зараженных кормов. В организм вирус проникает через пищеварительный тракт и органы дыхания, а также через слизистую оболочку и поврежденную кожу. Возбудитель внутри хозяйства в основном распространяется горизонтальным путем (кормовой, водный и воздушный). Вирус передается аэрогенным путем, реально его распространение между помещениями с принудительной вентиляцией, находящимися в непосредственной близости.

Опасным путем распространения болезни является завоз латентно инфицированных свиней, а также использование инфицированной спермы.

Наиболее важным аспектом в циркуляции вируса КЧС в природе является трансплацентарная передача полевых и вакцинных штаммов (вертикальный путь). Доказана трансплацентарная передача вируса КЧС в различные периоды супоросности. Поросята длительное время после рождения остаются скрытыми вирусоносителями и служат источником заражения. Исследования крови 1-3 дневных поросят методом ПЦР показало, что в неблагополучных хозяйствах от 10 до 30% потомства рождается инфицированным вирусом КЧС. Свиноматки-вирусоносители рождают клинически здоровых, но инфицированных и иммунотолерантных поросят, которые выделяют вирус в больших количествах в течение 4-6 месяцев. Все поросята с виремией в конечном счете погибают. Циркуляция вируса в популяции «свиноматка-плод-потомство» является основным связующим звеном естественного кругооборота вируса.

Наличие латентных форм, возможность длительного вирусоносительства, сходство с другими болезнями, затруднительная клиническая и лабораторная диагностика осложняют своевременное выявление КЧС и способствуют ее распространению. Этому также в значительной степени способствуют оживленные экономические связи между хозяйствами, регионами и странами. Чума свиней может возникнуть в любое время года. Эпизоотии чумы свиней не имеют сезонности и периодичности. Однако чаще отмечают осенью (массовые перемещения, продажа и убой свиней). Болезнь возникает независимо от типа (структуры) ведения свиноводства, однако наиболее неблагополучными по КЧС оказались хозяйства с концентрацией свиней до 10 тыс.- откормочные совхозы, подсобные хозяйства, связанные с закупкой поросят в хозяйствах-репродукторах и кооперативы, в которых ветеринарно-санитарное обслуживание организованно недостаточно.

Важной особенностью современной эпизоотической ситуации является то, что во многих случаях, особенно в небольших и индивидуальных хозяйствах, вспышки чумы свиней провоцируют скрытое пастереллоносительство и вызывают острое проявление пастереллеза. Положение осложняется тем, что бактериологическими исследованиями довольно легко подтверждается пастереллез, а по патологоанатомическим признакам дифференцировать эти болезни трудно. Следует отметить, что пастереллез в хозяйствах частного сектора практически не регистрируют. Если он подтвержден лабораторно, надо обязательно исключить чуму. Чума свиней, как правило, провоцирует скрытое носительство пастереллеза и вызывает клиническое проявление этой болезни в ассоциации. Для пастереллеза не свойственна эстафетная передача возбудителя инфекции: он относится к эндогенным инфекциям. Свиньи больные пастереллезом легко поддаются лечению антибиотиками (особенно тетрациклинового ряда). При классической чуме нет эффективных средств лечения. Поэтому если в подобных случаях применение антибиотиков не дает терапевтического эффекта, то как правило в 100% случаев подтверждается диагноз - классическая чума.

Важнейшие эпизоотологические данные о чуме представлены в табл.2

Таблица.2

Патогенез. Вирус попав в организм свиньи репродуцируется в лимфоидноретикулярной ткани входных ворот (миндалины и носоглотка). Через 16-24 часа вирус проникает в регионарные лимфотические узлы. Для вируса характерна пантропность, однако преимущественно репродуцируется и накапливается в органах богатых лимфоидно-ретикулярными клетками (селезенка, лимфатические узлы, костном мозге, печени и эндотелии кровеносных сосудов), вызывая дистрофические и некротические изменения. В результате этого повышается проницаемость стенок сосудов, что приводит к возникновению кровоизлияний, отеков и воспалительных процессов в различных тканях и органов, а в селезенке инфаркты. Вирусемия сопровождается лихорадкой, нарушением обмена веществ. В результате поражения кроветворных органов развивается анемия и лейкопния, сильное угнетение опсоно-фагоцитарной реакции и резкое снижение бактерицидности сыворотки крови. Размножаясь в клетках иммунной системы и вызывая их разрушение, вирус сильно снижает иммунные свойства организма, что способствует активизации условнопатогенных микроорганизмов (пастерелл, сальмонелл). При осложнении секундарными бактериальными инфекциями развивается пневмония и крупозно-дифтеритический колит. Воспалительные процессы в мозговой ткани обуславливают развитие в головном и спинном мозге периваскулярных инфильтратов, что клинически проявляется нервными явлениями (депрессия, возбуждение, припадки). При остром течении смерть наступает в результате морфологических поражений всех систем организма, в особенности органов кроветворения и кровообращения.

Течение и клиническое проявление. Инкубационный период в зависимости от вирулентности вируса, дозы, метода заражения и резистентности животного длится 3-9 дней, реже 12, иногда - до 20 дней. КЧС может протекать сверхостро, остро, подостро и хронически. Сверхострое течение (в основном в популяции неиммунных свиней). Отмечают высокую температуру (41-42С), угнетенное состояние, отсутствие аппетита, рвоту, учащенное сердцебиение и дыхание, ярко-красные пятна на коже. Животные погибают через 1-2 дня. Острое течение чаще регистрируют в начале эпизоотии. Основные признаки: постоянный тип лихорадки до 40,5-41С, угнетение, отказ от корма. Развивается гнойный конъюнктивит, появляется рвота, запор, а затем диарея (фекалии иногда с примесью крови). Мочеиспускание затруднено. Одновременно с этим общее количество лейкоцитов снижается с тыс/мл (норма) до тыс/мл, уменьшение эозинофильных и базофильных гранулоцитов, снижаются тромбоциты с 500-550 тыс/мл (в норме) до 100 тыс/мл. Супоросные свиньи абортируют, часто возникает слизисто-гнойный ринит, а у отдельных животных - носовое кровотечение. На коже внутренних поверхностей бедер, живота, шеи и основании ушных раковин появляются пустулы, заполненные желтоватым экссудатом, а позже - точечные кровоизлияния, которые в дальнейшем сливаются и образуют темно-багровые пятна, не исчезающие при надавливании. В результате сердечной недостаточности кожа пяточка, ушных раковин, живота и конечностей приобретает синюшную окраску. Перед гибелью температура снижается до 35-36С. Животные погибают на 7-10 день. Подострое течение длиться до 3 недель и проявляется преимущественно поражением органов дыхания. У животных наблюдают затрудненное дыхание, кашель, слизисто-гнойное истечение из носа. При осложнении чумы сальмонеллезом местом локализации вторичных поражений является ЖКТ. Запор сменяется поносами со зловонным запахом и примесью слизи, а иногда крови. Свиньи худеют, ослабевают, передвигаются с трудом и болезнь заканчивается гибелью, реже приобретает хроническое течение.

Хроническое течние продолжается до 2 месяцев и более. Клинические признаки могут сильно варьировать в зависимости от осложнений секундарной инфекции. Отмечают точечные и более крупные кровоизлияния в коже ушей и живота, как диагностический признак КЧС. Свиньи приобретают вид заморышей, полностью не выздоравливают и остаются вирусоносителями. Летальность 30-60%.

Часто отмечаются некрозы кончиков ушей и хвоста. Температура тела повышена, но редко повышение температуры тела не отмечают. Животные большей частью лежат, зарывшись в подстилку.

В последнее время под влиянием различных причин болезнь протекает атипично (более продолжительный инкубационный период, субклиническое переболевание взрослого свинопоголовья, с нарушением функции воспроизводства, а у поросят и подсвинков - развитие нервного синдроима без явного геморрагического диатеза).

Атипичная форма обычно проявляется у поросят-сосунов и отъемышей, имевших материнский иммунитет или зараженных слабовирулентным вирусом серогруппы В. Для нее характерно подострое и хроническое течение, продолжительностью 2-3 недели и более. Болезнь характеризуется анорексией, конъюнктивитом, внутрикожными кровоизлияниями, гипертермией. Одни животные выздоравливают, а у других болезнь осложняется вторичной бактериальной инфекцией, заканчивающейся гибелью животного либо превращением их в заморышей.

В хозяйствах промышленного типа, связанных с репродукцией поголовья, КЧС на фоне вакцинации протекает, как правило, атипично и часто осложняется условно-патогенной микрофлорой, присутствующей в пищеварительном или респираторном тракте здоровых свиней. В основном болеют поросята в период доращивания (1-3 мес.), гибель которых может достигать 20-50%.

Общие признаки классической чумы свиней при различных течениях болезни показаны в табл 3.

Таблица 3

Общие признаки классической чумы свиней при различных течениях болезни (Van Oirshot J. T., 1994)

Показатели	Острое	Хроническое	Латентное
Вирулентность вируса	высокая	умеренная	Низкая
Время заражения	постнатальное	постнатальное	Преднатальное
Симптомы	Короткий инкубационный период, тяжелая депрессия, высокая лихорадка, анорексия, конъюнктивит, запор, диарея, конвульсии, нарушение координации, геморрагии на коже	Короткий инкубационный период, три фазы болезни: 1. депрессия, лихорадка, анорексия; 2. клиническое улучшение; 3.обострение болезни	Латентное заболевание, тяжелая депрессия и анорексия, нормальная или слегка изменившаяся температура тела, дерматиты, конъюнктивит, двигательные нарушения.
Виремия	Высокого уровня	непостоянная	Высокого уровня
Лейкопения	Развивается быстро	Развивается быстро, следует за лейкоцитозом	Развивается поздно в течение болезни
Иммунный ответ на КЧС	нет	есть	Есть
Гибель	Через 10-20 дней	Через 1-3 мес.	Через 2-11 мес.
Патологоанатоми-ческие изменения	Множественные геморрагии, особенно в лимфоузлах и почках, инфаркты селезенки	Изъязвления толстого кишечника, «бутоны», инфаркты селезенки.	Лимфоузлы увеличены, тимус атрофирован
Гистологические изменения	Дегенерация эндотелиальных клеток, пролиферация ретикулярных клеток, энцефалит	Дегенерация эндотелиальных клеток, лимфоцитарное истощение, гистеоцитарная гиперплазия, гломерулонефриты	Дегенерация эндотелиальных клеток, лимфоцитарное истощение, гистеоцитарная гиперплазия.

Патологоанатомические изменения при чуме очень вариабельны и зависят от течения болезни и наличия осложнений секундарной инфекцией (сальмонеллез, пастереллез и др.), возраста животных. Наиболее типичные изменения встречаются у подсвинков и взрослых животных. При остром течении (септическая форма) чума обычно протекает без осложнения вторичной инфекцией. На краях век и углах глаз образуются коричневые корочки. Конъюнктива, слизистые оболочки носа и рта бледны, цианотичны. Кожа ушей, шеи, живота, внутренней стороны бедер пятнисто или диффузно окрашена в багрово-красный цвет, видно точечно-пятнистые кровоизлияния. Обращают внимание выраженные явления геморрагического диатеза в различных органах. Наиболее выраженные и постоянные изменения в лимфатических узлах (63-100%). Лимфоузлы, преимущественно головы и шеи, набухшие, сочны, красного цвета снаружи и мраморного вида на разрезе. Характерны точечные кровоизлияния под слизистой надгортанника. Селезенка особенно по краям, в 36-60% случаев обнаруживают гемарагические инфаркты в виде плотных черно-красных бугорков. Почки анемичны с точечными кровоизлияниями в корковом слое и лоханке, а также в мочеточниках и мочевом пузыре. В желудке и кишечнике катаральное или геморрагическое воспаление со множеством кровоизлияний в фундальной части желудка и толстом кишечнике. Легкие кровенаполнены, отечные и пятнистые. У поросят-сосунов признаки геморрагического диатеза проявляются слабее, и патологоанатомические изменения находят в основном в органах пищеварения и почках.

Чума, осложненная пастереллезом (грудная форма). Основные изменения наблюдают в органах грудной полости. Устанавливают крупозно-геморрагическую пневмонию, множественные некрозы, серозно-геморрагический или фибринозный плеврит и перекардит, кровоизлияния на серозных покровах грудной полости, а также на слизистой гортани и трахеи.

Чума, осложненная сальмонеллезом (кишечная форма). Болезнь протекает преимущественно хронически и характеризуется язвенно-некротическими процессами в пищеварительном аппарате (глотке, миндалинах, желудке и кишечнике). Наиболее часто поражаются слепая и ободочная кишки, где находят дифтеритические «бутоны» и язвы, реже диффузное дифтеритическое воспаление. Резко выраженные поражения кишечника чаще отмечают у паросят-отъемышей и подсвинков. При хроническом течение у 90% убитых и павших животных находят ненормальное окостенение 6-8 пар ребер и появление здесь геморрагической линии, что имеет большое диагностическое значение.

Гистологические изменения при КЧС неспецифические. В большинстве случаев (70-90%) в ЦНС обнаруживают негнойный лимфоцитарный энцефаломиелит. В срезах, приготовленных из лимфоузлов, сердечной мышцы и печени, можно обнаружить присутствие ацидофильных внутриядерных телец-включений. В лимфоузлах их находят на 6-12-й день после заражения.

Вирус КЧС обладает выраженным гематотропизмом в отношении костного мозга, содержащего большое количество бластных клеток, чем лимфоузлы и селезенка. Поэтому костный мозг поражается первым. При подозрении на чуму для уточнения диагноза несколько тяжелобольных животных убивают и исследуют мазки из костного мозга грудной кости.

Диагностика и дифференциальная диагностика. Болезнь диагностируют на основании анализа эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований. Сообщения последних лет свидетельствуют о трудности, а порой невозможности быстрой постановки диагноза по комплексу эпизоотологических данных, клинических признаков и патологоанатомических изменений, так как частая вакцинация свиней против чумы создает иммунный фон, влияющий на симптомы болезни и характер патоморфологических изменений. Правильный диагноз может быть поставлен только лабораторными методами. Эффективность любого диагностического метода зависит от ряда конкретных условий, в частности необходимо учитывать биологические свойства вируса, время отбора проб и вид используемого для исследования материала.

Для выделения вируса берут пробы крови, кусочки селезенки, миндалин, лимфоузлов, грудной кости, почек и легких от 2-3 животных в первые 2 часа после гибели или убоя больных в агональном состоянии.

альтернативный процесс: Вирусологический" width="162" height="42"/>Методы лабораторной диагностики представлены в табл.4

Таблица 4

Диагноз на чуму свиней по результатам лабораторных исследований считают установленными при получении одного из следующих показателей:

Ø  Обнаружение скоплений форменных элементов крови и пролиферации эндотелия сосудов при микроскопическом исследовании гистосрезов головного мозга;

Ø  Обнаружение специфического свечения цитоплазмы и ядра при люминисцентном микроскопическом исследовании клеток;

Ø  Положительная биопроба на неиммунных поросятах (в возрасте 2-3 мес.), зараженных фильтратом патологического материала с развитием у них через 5-6 дней клинической картины, характерной для чумы виней и гибели их в течении 7-10 дней.

Весьма ценным и быстрым методом ранней диагностики чумы свиней является гематологический – резко выраженная лейкопения (2,5-3 тыс лейкоцитов в 1 мл крови), резкое уменьшение или исчезновение ретикулоцитов, эозинопения.

Лабораторная диагностика КЧС основывается на выявлении вирусного антигена, специфических антител, обнаружении вирусного генома и выделении вируса. Выделение вируса в перевиваемой линии клеток почки поросенка (РК-15) – наиболее чувствительный и традиционный метод диагностики КЧС, поскольку он позволяет выявить присутствие небольшого количества вирулентного вируса. Наличие вируса в культуре определяют и его идентификацию проводят с использованием меченных антисывороток и моноклональных антител (МФА).

Для обнаружения вирусного антигена в патологическом материале применяют МФА. Исследуют мазки-отпечатки миндалин и других органов павших и убитых животных, а также криосрезы тканей. Этот метод оказался быстрым и надежным для выявления вирусного антигена и используется во многих странах.

Другим современным методом, применяемым для обнаружения вируса КЧС, является метод полимеразной цепной реакции (ПЦР). С помощью этой реакции вирус КЧС можно обнаружить в инфицированных культурах клеток и в материалах от больных и павших животных.

Серологические методы диагностики КЧС играют важную роль, однако их значение различно и зависит от стратегии борьбы с этим заболеванием. В странах Западной Европы при отсутствии вакцинации обнаружение вирусспецифических антител служит основанием для постановки диагноза на КЧС.

В России и ряде других стран, где проводится широкомасштабная вакцинация свиней против КЧС, определение уровня специфических антител может иметь значение при оценке иммунного статуса животных и проведении соответствующих мероприятий по специфической профилактике.

НПО Нарвак выпускает набор реагентов для определения антител к вирусу классической чумы свиней иммуноферментным методом «КЧС-СЕРОТЕСТ». Набор реагентов предназначен для выявления антител к вирусу КЧС у невакцинированных животных и оценки напряженности иммунитета после вакцинации.

Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить африканскую чуму, рожу, пастереллез, сальмонеллез, болезнь Ауески, вирусный гастроэнтерит, энзоотическую пневмонию, дизентерию, листериоз, грипп, отравления. Дифференциальная диагностика классической чумы от африканской, рожи и пастереллеза свиней представлены в табл.5.

Таблица.5

Патологонатомические показатели	Классическая чума	Африканская чума	Рожа	Пастереллез
Геморрагический диатез и кровоизлияния в кожу.	Менее выражены	Сильно выражены	-	-
Серозный отек в области глотки и шеи	-	Непостоянный признак	-	Типичный признак
Серозный дерматит	-	Непостоянный признак	Типичный признак	-
Геморрагический инфильтрат в соматических и висцеральных лимфоузлах.	Поражены только узлы головы и шеи	Характерный признак	Непостоянный признак	-
Геморрагический лимфаденит с диффузным рексисом лимфацитов	Редко встречается и слабо выражен	Характерный постоянный признак	-	-
Системная гиперплазия в сочетании с геморрагической инфильтрацией в лимфатических узлах	Характерный постоянный признак	-	Типичный признак	-
Серозный плеврит, перикардит, перитонит	Иногда наблюдают	Обнаруживают большое количество экссудата	Непостоянный признак	Характерный признак
Нормальная или слегка увеличенная селезенка с инфарктами	Характерный признак	-	-	-
Геморрагическая спленомегалия с интенсивным кареорексисом лимфоцитов	-	Постоянный признак	-	-
Крупозная пневмония	-	-	-	Типичный постоянный признак
Серозно-геморрагическая пневмония с резким интерстициальным отеком легких	-	Типичный постоянный признак	-	-
Серозный гепатит с резким отеком желчного пузыря	-	Характерный постоянный признак	-	-

При африканской чуме ярче выражен геморрагический диатез, увеличена и размягчена селезенка, полнокровие и кровоизлияния в почках. Чаще поражаются, имея вид кровяных сгустков, портальные, почечные и брыжеечные лимфоузлы. Сильно выражен отек интерстициальной ткани легких, скопление в грудной полости кровянистой жидкости. Редко отмечают инфаркт селезенки, постоянно-тотальный распад лимфоцитов и тканей лимфоидных органов. Для дифференциации ставят тест перекрестного иммунитета, тест гемадсорбции и РИФ, а также путем постановки биопробы на иммунных к чуме подсвинках

Учитывают быстрое развитие эпизоотий с высокой летальностью и особенно развитие эпизоотий среди животных, привитых против классической чумы.

Дифференциальная диагностика классической и африканской чумы свиней представлена в табл. 5,6

Пастереллез, как правило, не принимает характера эпизоотии, поражает преимущественно взрослых животных. Для него характерны отек подкожной клетчатки подчелюстного пространства, распростроняющийся на шею и глотку, серозный лимфаденит, фибринозно-некротизирующая пневмония, слабо выраженный геморрагический диатез. Кроме того, обнаруживают возбудителя при бактериологическом и биологическом исследованиях. Хороший лечебный эффект оказывают одновременное применение пастереллезной сыворотки с антибиотиками.

При остром течение пастереллеза выделенные штаммы высоко вирулентны для лабораторных животных; штаммы же пастерелл, выделенные у животных, больных классической чумой, осложненных пастереллезом, слабо вирулентны для белых мышей и кроликов (последние погибают после заражения на третьей стадии и позднее).

Сальмонеллезом болеют поросята с первых дней жизни до 5-6 месячного возраста, особенно в период отъема. Взрослые свиньи болеют без резко выраженных симптомов. Ведущим признаком является понос. Селезенка темно-синего цвета, с плотной пульпой, размер ее больше нормы. При подостром течении в толстом отделе кишечника некроз лимфатических фолликулов и дифтерическое воспаление слизистой оболочки. Лечебное действие оказывают антибиотики. Результаты бактериологических исследований являются также основанием для дифференциации КЧС.

Таблица 6

Дифференциальная диагностика классической и африканской чумы свиней

Показатель	Классическая чума	Африканская чума
Продолжительность инкубационного периода	3-4 дня и больше	От 2 до 7 дней(редко больше)
Распространение болезни	Постепенно нарастающее	Очень быстрое
Смертность	60-70%	98-100%
Экссудаты в полостях тела	Обнаруживают часто	Бывают очень часто
Изменения в почках	Анемия, точечные рассеянные кровоизлияния под капсулой	Цианоз, кровоизлияния под капсулой часто напоминающие гематомы
Кровоизлияния в лоханках почек	Встречаются лишь при остром течении болезни	Встречаются очень часто
Язвы в кишечнике («бутоны»)	Встречаются при подостром течении	Обычно отсутствуют, часто отмечаетя диффузный некроз слизистой оболочки
Отек легких	Наблюдается редко	Наблюдается часто
Изменение количества лейкоцитов	Отмечается лейкопения с нормальными ядрами лейкоцитов	Отмечается лейкопения с разрушением ядра лейкоцитов
Иммунитет после переболевания	Стойкий и продолжительный	Отсутствует
Вакцинация вакциной против классической чумы	Создает иммунитет	Не создает иммунитета

Рожей болеют свиньи в возрасте от 3-4 мес. до года. Болезнь чаще возникает в летний период. На коже вместо кровоизлияний видны участки гиперемии (багрово-красные или темно-фиолетовые пятна), при надавливании они бледнеют. Отмечают застойные явления кожи и во внутренних органах, увеличение селезенки, гломерулонефрит и катаральный гастроэнтерит. Хороший терапевтический эффект оказывают пенициллин с противорожистой сывороткой. Бактериологическое исследование решает постановку диагноза на рожу.

Болезнь Ауески у взрослых свиней протекает легко, а у поросят сосунов тяжело. Большинство больных погибает. Ведущим симптомом болезни является расстройство нервной системы. Проводят вирусологические исследования и биопробу на кроликах.

Вирусный гастроэнтерит свиней особенно тяжело протекает и наиболее характерно клинически проявляется у поросят первых дней жизни и лактирующих неиммунных маток при первичной его вспышке в хозяйстве. Типичные клинические признаки у поросят – внезапная рвота (первичный признак), понижение аппетита и быстро развивающаяся диарея. Отмечается быстрая потеря массы, цианотичность и липкость кожных покровов, 100% падеж у поросят до 5-дневного возраста, 6-10-дневном до 70%, в 11-15-дневном – 30% на 2-7-й день после проявления первых клинических признаков. Для подтверждения диагноза ставят биопробу на 2-7 дневных поросятах.

Дизентерией чаще болеет молодняк свиней в возрасте 1-6 мес. Основной клинический признак – диарея со слизью и примесью крови в фекалиях. Для дизентерии характерно наличие геморрагического и дифтеретического колита. При микроскопии фекалий и соскобов слизистой оболочки толстого кишечника обнаруживают Serpulina hyodysenteriаe.

Листериоз можно дифференцировать от чумы на основании эпизоотологических данных, патологоанатомических изиенений и результатов бактериологического исследований.

Грипп свиней исключаются вирусологическим исследованием материала взятого из верхних дыхательных путей (наличие гемагглютинирующего вируссодержащего материала в первых пассажах на КЭ, гемадсорбции в культуре ткани, цитоплазматических включений при риноцитоскопии).

Лечение. Заболевших чумой свиней немедленно убивают, так как лечение не разработано.

Иммунитет, специфическая профилактика. Переболевшие чумой свиньи приобретают стойкий пожизненный иммунитет. В настоящее время для активной иммунизации в большинстве стран применяют сухие вирусвакцины из лапинизированных и культуральных аттеинуированных штаммов вируса чумы свиней. Иммунитет при классической чуме свиней обусловлен вируснейтрализующими антителами. Для профилктики болезни в нашей стране применяют живые вакцины:

1.  сухую культуральную вирусвакцину из штамма «К» «ВГНКИ» (Щелковский биокомбинат)

2.  сухую лапинизированную вирусвакцину из штамма «СИНЛАК» (ВНИИЗЖ)

3.  сухую культурльную вирусвакцину из штамма «ЛК-ВНИИВВиМ» (покровский завод); сухая куьтуральная вирусвакцина из штамма «ЛК-К»- ВНИИВВиМ

4.  сухую культуральную вирусвакцину из штамма «КС» (НАРВАК НПО)

Иммунная активность у этих препаратов различная. В настоящее время для специфической профилактики КЧС в России в основном применяют вакцину из штамма «ЛК-ВНИИВиМ». Иммунитет формируется на 10-14 день после однократной прививки и у взрослых животных сохраняется не менее года.

Во ВНИИВВиМ разработана инактивированная сухая культуральная вирусвакцина против КЧС из штамма «ЛК-К» для перорального, внутримышечного и аэрозольного методов применения, а так же эта вакцина является единственным эффективным средством защиты от КЧС диких кабанов в охотохозяйствах и заповедниках.

Обследование очагов и анализ эффективности существующих мероприятий показали, что применение вирусвакцин не позволяет ликвидировать болезнь независимо от типа применяемой вакцины. Результаты серологического обследования хозяйств свидетельствует об отсутствие 100% группового специфического иммунитета. Основным противоречием при этом является вакцинация свиноматок, которые обеспечивают колостральный иммунитет у поросят. Наличие специфических колостральных антител затрудняет создание поствакцинального иммунитета.

Успех противоэпизоотических мероприятий при классической чуме свиней зависит от создания напряженного иммунитета во всех возрастных группах стада свиней, но особенно поросят до 2-3-месячного возраста, составляющих до 40-50% поголовья репродукторных хозяйств. Однако практика ликвидации эпизоотических вспышек классической чумы свиней выявила недостаточную эффективность ранее предложенных схем многократной вакцинации поросят с 10-15-суточного возраста, рожденных иммунными к вирусу КЧС свиноматками. Эффективная вакцинация поросят, имеющих естественно или искусственно пассивно-приобретенные вируснейтрализующие антитела, представляют собой сложную проблему. Схемы вакцинации разрабатывают с учетом иммунологического статуса вакцинированных свиней и эпизоотической ситуации. С целью передачи потомству материнского иммунитета свиноматок рекомендуют вакцинировать за 20-30 дней до опороса, а полученных от них поросят на 45 или 70 день жизни. Однако, полученные данные свидетельствуют о том, что вакцинация свиноматок против КЧС с целью создания колострального иммунитета у их потомства является недостаточной мерой для надежной защиты поросят в эпизоотическом очаге.

По данным , и др. наиболее эффективной схемой вакцинации поросят – отъемышей является вакцинация поросят, в 20-дневном возрасте и повторно в 40-дневном возрасте сухой культуральной вирусвакциной ЛК-ВНИИВВ и М против КЧС. Эффективность групповой защиты к 2-месячному возрасту поросят отъемышей привитых двукратно, составила 87,24. Результаты опытов показали, что применение эмульгированной культуральной вирус вакцины « ЛК-ВНИИВВ и М» создает напряженный иммунитет против КЧС только у 40% поросят, полученных от иммунных свиноматок. Наиболее эффективной (94-100% защиты от КЧС) схемой иммунизации поросят, независимо от уровня колостральных вируснейтрализующих антител к моменту вакцинации, оказалась однократная прививка в повышенной в 20 раз дозой вирус вакцины поросятам в течение первых 6 часов после рождения, а также двукратная прививка поросят-сосунов от 1 до 30-суточного возраста с интервалом 20-25 суток.

В последнее время, в НПО НАРВАК разработана новая культуральная вакцина «КС» против КЧС. Данная вакцина по безопасности и иммуногенности отвечает требованиям МЭБ и отличается от аналогичных живых вакцин против КЧС (ЛК-ВНИИВВ и М) более высокой концентрацией вируса. Вакцину производят в двух вариантах: концентрированная и неконцентрированная. Неконцентрированную вакцину «КС» применяют для профилактической вакцинации свиней во всех категориях хозяйств, благополучных по КЧС, а также для вынужденной вакцинации свиней в небольших хозяйствах при появлении КЧС. Концентрированная вакцина «КС» предназначена для иммунизации свиней в крупных хозяйствах промышленного типа, неблагополучных по КЧС.

Основная цель гипервакцинации с применением вакцины «КС» состоит в прекращении циркуляции вирулентного вируса КЧС в неблагополучных хозяйствах путем создания максимально выраженного иммунитета практически у всего поголовья и, в первую очередь, у свиноматок и новорожденных поросят.

Учитывая вышеизложенные аспекты, в условиях промышленного свиноводства, одним из путей реализации данной проблемы может быть комплексное использование вакцины на фоне иммуномодуляторов, сочетание которых может усилить гуморальный иммунитет. Установлен наиболее выраженный стимулирующий эффект миксоферона при введении его через 48 часов после иммунизации их вакциной против КЧС, то есть в продуктивную фазу синтеза антител. Литературные данные свидетельствуют о том, что при титре вируснейтрализующих антител в сыворотке крови 1:8 и выше животные не реагируют на введение в организм живой вакцины против КЧС. Применение миксоферона в значительной степени уменьшало ингибирующее влияние фонового титра антител свыше 3 log на эффективность вакцинации. Учитывая вышеизложенное необходимо контролировать напряженность иммунитета против КЧС по аналогии с таковой на птицефабриках, определяющей эффективность вакцинации кур против Ньюкаслской болезни.

Для повышения иммуногенности сухой живой вакцины из штамма «ЛК-ВНИИВВ и М» и снижение возможных поствакцинальных осложнений рекомендует в качестве разбавителя вакцины использовать 30%-ый раствор натрия тиосульфата в количестве 2 см3 препарата на одну дозу вакцины. Общим для всех иммуномодуляторов-стимуляторов иммунной системы является активация иммунокомпетентных клеток-макрофагов, лимфоцитов, а также гуморальных факторов иммунной системы-комплемента, пропердина, лизоцима, интерферона, бета-лизинов, нормальных антител.

Серологическое обследование поголовья свиней, вакцинированных против КЧС, позволяет оценивать эффективность проведенной вакцинации. При иммунизации живыми вакцинами ВНА в крови появляются на 7-10-й день, достигая, пика (1:128 и выше) к концу месяца, и сохраняются на высоком уровне в течение всего периода невосприимчивости. Вакцинацию можно считать успешной, если титр антител в РН флюоресцирующих микробляшек, спустя 2-5 мес. после иммунизации составляет 1:20 и выше. Установлено, что при титре ВНА в РН флюоресцирующих бляшек 1:4 и выше животные устойчивы к внутримышечному заражению эпизоотическим штаммом в дозе 104 ЛД50, при титре 1:2- переболевают и независимо от исхода представляют опасность как вирусоносители.

Профилактика. Главное внимание обращают на охрану благополучных хозяйств от заноса возбудителя чумы свиней. Поэтому в основе предупреждения возникновения КЧС лежат общие профилактические меры. Для успешной профилактики классической чумы свиней необходимо учитывать и вертикальную передачу возбудителя инфекции, фактор скрытого вирусоносительства у животных определенных возрастных групп, и зависимость вирусоносительства от проводимой вакцинации животных.

Большую опасность представляет перемещение клинически здоровых свиней их хозяйств, оздоровленных от этой инфекции. Свинину от таких животных следует реализовать на мясные изделия, подвергающиеся по технологии высокой термической обработке. В зоне реализации такой свинины все кухонные отходы подвергаются термической обработке.

Специфическая профилактика классической чумы свиней должна проводиться с учетом эпизоотической ситуации. Необходимо учитывать, что применение противочумных вакцин на большом поголовье взрослых свиней способствует формированию у определенной части животных скрытого вирусоносительства.

Общие профилактические и специфические мероприятия представлены в таблице 7.

Таблица 7

 

 

Меры борьбы. При подозрении на заболевание чумой больных животных изолируют, прекращают перегруппировки животных, неблагополучные станки дезинфицируют 2-3%-ым раствором едкого натра, вирконом С 1:350. Одновременно вводят жесткие ограничительные меры с целью недопущения распространения болезни. При установлении диагноза накладывают карантин и определяют границы угрожаемой зоны. Для ликвидации чумы свиней проводят комплекс ветеринарно-санитарных и организационных мероприятий, формирующих обстановку, исключающую возможность заражения свиней этой инфекцией. Мероприятия по ликвидации чумы свиней представлены в таблице.8

Таблица 8

 

 

Карантин с неблагополучного по чуме свиней пункта снимают через 40 дней после последнего случая падежа или убоя больных свиней, обезвреживания мяса, полученного от их убоя, и при условии проведения всех ветеринарно-санитарных мероприятий, предусмотренных инструкцией. После снятия карантина сохраняют ограничения, в частности запрещают вывозить оставшихся свиней, продукты животного происхождения и сырье, полученные от убоя (кроме вывоза на мясокомбинат), за пределы неблагополучного хозяйства. По завершению откорма свиней убивают на мясокомбинате, проводят весь комплекс закрепительных мероприятий с заключительной дезинфекцией и снимают ограничения.

В угрожаемой зоне запрещают контакт и связи с неблагополучным пунктом; вакцинируют всех свиней; устанавливают дезбарьеры при входе и выходе из свинарников; строгий ветеринарно-санитарный контроль за заготовкой и вывозом свиней, сырья, фуража; ветеринарно-просветительная работа среди населения.

Стратегия борьбы с КЧС в разных странах была и остается различной. Одни полностью исключают вакцинацию, другие прибегают к ней в случае крайней необходимости как к вынужденной и временной мере, третьи используют ее как основную меру борьбы и профилактики КЧС. Меры борьбы с КЧС часто определяются эпизоотической ситуацией и социально-экономическими факторами. Положительный опыт борьбы с КЧС с помощью вакцинации накоплен во многих странах.

Широкое применение таких вакцин в ряде стран, в том числе в СССР и России, привело к существенному сокращению заболеваемости свиней КЧС, резкому снижению экономических потерь и улучшению эпизоотической обстановки по данному заболеванию.

Несмотря на снижение заболеваемости свиней вследствие планомерно проводимой вакцинации, ее эффективность во многом зависит от выполнения ветеринарно-санитарных мероприятий, направленных на ликвидацию КЧС (Т. Szent-Ivanii, 1984). По мнению ряда авторитетных специалистов, опыт Европы убедительно показал, что КЧС может быть ликвидирована в отдельных энзоотических зонах при систематическом и жестком режиме вакцинации в течение длительного времени в сочетании со строгими полицейскими и ветеринарно-санитарными мерами (C. Terpstra et al., 1986, 1987).

Широкая вакцинация в гг. привела к ликвидации КЧС в Нижней Саксонии и Рейн-Вестфалии, но оказалась недостаточной, чтобы исключить вирусоносительство и обеспечить в конечном счете ликвидацию КЧС в стране (D. Kuttler, 1999). В Голландии в гг. на фоне широкого применения лапинизированной вакцины С в зонах интенсивного свиноводства случаи возникновения КЧС (12 случаев из 63) наблюдали через 9-13 мес. после вакцинации. Анализ 450 вспышек в Голландии в этот период показал, что вакцинация более эффективна в откормочных хозяйствах, чем в репродукторных или хозяйствах смешанного типа. В двух последних категориях хозяйств эффективность вакцинации находится в обратной зависимости от их размера. По-видимому, большие хозяйства, несмотря на вакцинацию всего поголовья, содержат достаточное количество чувствительных к заражению свиноматок и поросят, чтобы непрерывно поддерживать репродукцию и распространение вируса на низком уровне. Инфекция у поросят может длиться в течение всего подсосного периода (С. Terpstra, G. Wensvoort, 1988). Как показал международный опыт, эффективность специфической профилактики КЧС обратно пропорциональна плотности популяции свиней в данном регионе или численности свиней в одном хозяйстве (C. Terpstra, J. Van Oirschot, 1989, 1999).

Опыт борьбы с КЧС в странах ЕС привел к выводу, что существующие в мире живые вакцины против КЧС и традиционные схемы их применения «способны защитить свиней от заболевания и гибели, но не от инфицирования» (G. Edwards. Симпозиум МЭБ по КЧС; Англия, Бирмингем, 1998). Наиболее ярким примером недостаточной эффективности систематической вакцинации в ликвидации КЧС по причине высокой плотности популяции свиней явилась ситуация, которая сложилась в Голландии в гг. Аналогичные результаты в других странах Европы послужили причиной отказаться от вакцинации в борьбе с КЧС, заменив ее убоем всех свиней в неблагополучных и угрожаемых хозяйствах. По этой причине с 1993 по 1998 г. в странах ЕС было уничтожено более 13 млн свиней. Экономические потери составили 5 млрд. долл. США (симпозиум МЭБ по КЧС, 1998). Подобная стратегия борьбы с КЧС была принята в США еще с 1962 г. и позволила в 1977 г. стать первой страной, ликвидировавшей КЧС. Кроме США в настоящее время еще более 15 стран являются свободными от КЧС. В крупных хозяйствах промышленного типа ликвидация КЧС с помощью средств специфической профилактики оказалась неразрешимой задачей. Это, прежде всего, относится к репродукторным хозяйствам и хозяйствам с замкнутым циклом. В них, несмотря на систематическую вакцинацию и временами кажущееся клиническое благополучие, КЧС протекает в стертой форме, поражая в основном поросят в период доращивания.

Такое явление связано с рядом причин: генетически обусловленной недостаточностью иммунного ответа у части вакцинированных свиней (K. Depner et al., 1997), низкой иммунореактивностью поросят, особенно до отъемного возраста (С. Terpstra, G. Wensvoort, 1987; G. Correa et al., 1992), подавлением вакцинального иммунитета у поросят колостральными антителами (T. Lin et al., 1980; K. Suvintaracorn et al., 1993).

Наиболее коварным звеном в поддержании КЧС в крупных хозяйствах репродукторного типа, несмотря на вакцинацию, является наличие слабоиммунных свиноматок, способных к латентному инфицированию и последующей трансплацентарной передаче вируса потомству (W. Stewart, E. Carbrey, J. Kreese, 1972, 1973). Трансплацентарное инфицирование поросят может происходить на любой стадии супоросности.

Вопросы для самопроверки

1.По каким показателям диагноз на классическую чуму свиней считается установленным? 2. Эпизоотологические особенности болезни?

3. Опишите клинические признаки болезни?

4. Назовите факторы передачи возбудителя классической чумы свиней, какие мероприятия проводят в отношении второго звена эпизоотической цепи?

5. От каких болезней и на основании, каких данных нужно дифференцировать чуму свиней?

6. Как провести дифференциальную диагностику классической чумы свиней от африканской чумы свиней?

7. Какие патологоанатомические изменения имеют диагностическое значение при постановке диагноза на классическую чуму свиней?

8. Дайте сравнительную оценку диагностической ценности лабораторным методам исследований?

9. Опишите патогенез при КЧС?

10. Роль серологических методов диагностики при КЧС?

11. Какие применяют вакцины для специфической профилактике КЧС?

12. Как определить эффективность проведенной вакцинации против КЧС?

13. Роль иммуномодуляторов при вакцинации свиней против КЧС?

14. Опишите общие и специфические профилактические мероприятия при КЧС?

15. Что необходимо сделать при подозрении на заболевание чумой свиней?

16. Какие происходят изменения в крови при КЧС?

17. Какие проводят мероприятия по ликвидации чумы свиней в неблагополучном пункте?

18. Составьте план мероприятий по ликвидации КЧС в хозяйстве?

19. Порядок наложения и снятия карантина при КЧС?

20. Стратегия борьбы с КЧС в разных странах?

Библиографический список

1. , и др. Вакцины против классической чумы свиней из штамма ЛК-К. / Ветеринария, 2001, . 19-21.

2. и др. Совершенствование лабораторной диагностики классической чумы свиней. / Ветеринария, 1992, . 28-29.

3. Жалдыбин у свиней, вакцинированных против классической чумы с применением иммуностимуляторов. //Автореферат дисс. кандидата вет. Ак. наук-М., 2005, С. 17.

4. Ильков контроль эффективности профилактических мероприятий против классической чумы свиней. //Ветеринария, 1992, . 25-28.

5. Конопаткин чума свиней. //Эпизоотология и инфекционные болезни. М., 1993-С.432-441.

6. , Нагасингхе сампат //Классическая чума свиней. М., 2002, С. 26.

7. и др. Роль супоросных маток в эпизоотическом процессе классической чумы свиней. //Ветеринария, 1991, . 30-33.

8. , Вишняков и др. Эпизоотологические, патогенетические и диагностические особенности классической чумы свиней. //Ветеринария, 1993. . 6-11.

9. , , Алипер чума свиней в промышленном свиноводстве. //Ветеринария, 2001. . 10-15.

10. Сергеев чума свиней. Диагностика и профилактика основных инфекционных и паразитарных болезней свиней. М., 2005-С.12-13.

11. Стариков чума свиней: территориальное распределение и анализ эпизоотического процесса в Волгоградской области. //Автореферат дисс. кандидата вет. наук - Покров, 2005, С. 26.

12. , и др. Чума свиней. Вирусные болезни животных. М., 1998, С. 111-113.

13. Ветеринарное законодательство. //Под ред. М., 1988, Т.4.

Содержание

1. Историческая справка. Распространение классической чумы свиней……………………………………………………………………………….

2. Этиология………………………………………………………………...

3.Эпизоотологические особенности………………………………………..

4. Патогенез…………………………………………………………………

5.Течение и симптомы………………………………………………………

6. Патологоанатомические изменения……………………………………..

7. Диагноз……………………………………………………………………

8. Дифференциальная диагностика………………………………………...

9. Иммунитет и специфическая профилактика…………………………...

10. Профилактика и меры борьбы………………………………………….

11. Стратегия борьбы к КЧС в разных странах……………………………

12. Вопросы для самопроверки……………………………………………..

13. Библиографический список……………………………………………..