РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ

С. В. ЛОПАТИН

НЕКРОБАКТЕРИОЗ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

// Ветеринария сельскохозяйственных животных. – 2007. - №12. – С. 9-15.


ежемесячный научно-практический журнал


Некробактериоз крупного рогатого скота — системное заболевание, про­являющееся гнойно-некротическим воспалением преимущественно кож­ных покровов разных участков тела (дисталъный отдел конечностей, вымя, хвост), слизистых оболочек (ротовая полость, половые органы), внутренних органов (печень, легкие, почки), при септическом процессе — мышечной ткани.

Н

екробактериоз имел широкое распро­странение в 70—80-е годы прошлого века во всех республиках бывшего Советского Союза. С середины 90-х годов, с распадом СССР и образованием на его основе неза­висимых суверенных государств, по данным официальной государственной ветеринарной отчетности, во многих областях Российской Федерации наметилась тенденция к снижению числа неблагополучных по некробактериозу пунктов и заболевших животных. Практиче­ски не поступает биоматериал для диагностики болезни в ветеринарные лаборатории. Однако результаты эпизоотологических исследований указывают на значительное распространение болезни на территории Сибирского региона, Республики Татарстан, Европейской части страны, и в независимых сопредельных го­сударствах (, 1993; Д. А. Ху-зин, Г. X Камалов, 1995; , , 1999; и др., 2000; с соавт., 2001; ­канов, , 2001; и др., 2001; , , 2002).

Так, по данным , Л. В. Ки­риллова (2001), в Российской Федерации ежегодно болеют некробактериозом около крупного и 16% — мелкого рогатого ско-

НЕ нашли? Не то? Что вы ищете?

та. По распространенности болезнь занимает третье место после лейкоза и туберкулеза. А. Сидорчук, А. Воронец (2001) указывают, что за последние 20—25 лет заболеваемость крупного рогатого скота некробактериозом вышла в структуре инфекционной патологии на одно из первых мест.

Болезнь наносит неблагополучным хозяй­ствам большой экономический ущерб. По со­общениям с соавт. (2003), в процессе переболевания коровы теряли 30—40% массы тела и до одной тонны мо­лока. В оленеводстве из заболевших за год 50—70 тыс. животных 30—35% погибали.

Некробактериоз сельскохозяйственных животных в большинстве случаев научными работниками и практическими ветеринарны­ми специалистами ассоциируется с гнойно-некротическими поражениями в области дистального отдела конечностей. Однако с ин­тенсификацией животноводства, связанной с концентрацией животных, введением силосно-концентратного типа кормления и высокой механизацией производственных процессов, стали регистрировать поражения некробакте-риозной этиологии и других органов. Так, в США у крупного рогатого скота, убиваемого на мясо, в среднем у 12—32% животных реги­стрируют абсцессы печени (D. R. Brink et al., 1990), при этом в отдельных группах они мо­гут варьировать от 1 до 95% (T. G. Nagaraja, М. М. Chengappa, 1998).

Принимая во внимание, что возбудитель некробактериоза является постоянным оби­тателем рубца жвачных, S. Narayanan et al. в 1997 г. подтвердили генетическую однотип­ность изолятов Fusobacterium necrophorum, выделенных из абсцессов печени и поражен­ного эпителия рубца, a T. G. Nagaraja et al. (1999) доказал, что снижение концентрации Fusobacterium necrophorum в содержимом рубца способствует уменьшению инцидент­ности абсцессов в печени.

Этому также способствует увеличение доли грубых кормов в рационе (R. A. Zinn,

РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ

A. Plascencia, 1996), о чем, на основании своих исследований, убедительно показали Т. О. Nagaraja, M. M Chengappa (1998), за­ключив, что наибольшая инцидентность аб­сцессов печени регистрируется в откормочных хозяйствах с преобладанием высококонцент-ратного типа кормления.

Наши исследования также показали, что в животноводческих хозяйствах Сибири до­статочно широко распространена патология печени в виде абсцессов. Так, по данным ветеринарно-санитарной экспертизы живот­ных, убиваемых на Новосибирском мясоком­бинате, абсцессы печени установлены в 25,4% хозяйств, поставлявших скот с инцидентно­стью от 2,1 до 35,2% животных, достигая в отдельных случаях 40—80%.

В настоящее время считается, что основны­ми факторами, способствующими возникнове­нию абсцессов печени, являются всевозможные нарушения кормления животных, в том числе несбалансированность рационов по количе­ству и типу кормов. Объясняется это тем, что стенка рубца, подверженная высокой кислот­ности из-за несбалансированного кормления и действия инородных предметов, становится восприимчивой к вторжению и колонизации возбудителя, который, обладая адгезивными свойствами по отношению к эпителию рубца, через кровь попадает в печень.

По нашим многолетним наблюдениям, в Сибири у крупного рогатого скота в основ­ном поражается кожа конечностей в области мякишей, межкопытцевого свода и венчика. В то же время зарубежные исследователи из США, Великобритании, Италии пора­жения мягких тканей дистального отдела конечностей подразделяют на четыре формы клинического проявления (D. G. Baggot, 1978, R. W. Blowey, 1994, S. L. Berry, 1997, С. Bergsten, 1999).

Тем не менее, мы наблюдали несколько форм клинического проявления некробакте-риоза. Некоторые из них ранее не отмечены (поражения сосков вымени, фрагментов кожи в области рудиментарных копытцев).

В Усть-Таркского района Новосибирской области инфекционным забо­леванием было поражено 350 дойных коров, или 70% стада. Болезнь протекала в летний период (июль — август). В этот период часто шли дожди.

Клинические признаки болезни — пораже­ние кожи в области рудиментарных копытцев задних конечностей. Пораженные участки имели форму полосок размером 2,5—3,0 х 1,0—2,0см. В начальной стадии развития за-

болевания отмечали отечность, гиперемию кожи, болезненность при пальпации, хромоту, повышение местной температуры. Во второй стадии заболевания образовывалась рана в виде язвы. Поверхность раны покрыта фибринозно-гнойным экссудатом, на ней были участки некроза. Раневая поверхность была сухой; корочки фибринозного экссудата от­торгались на 3—4-й день, образуя язву.

Одним из основных факторов, способству­ющих появлению некробактериоза, являлась сырость на пастбище и в загонах. Заболевае­мость коров некробактериозом прекратилась в конце августа, когда установилась сухая погода.

Второй случай некрабактериоза отмечен в пастбищный период в Ново­сибирской области. Заболеванию был подвер­жен молодняк в возрасте 12 мес.: 60% телочек из 450 голов и 50% бычков из 320 голов. У животных поражались участки кожи над венчиком задних конечностей. Клинические признаки заболевания: хромота, образование воспалительного отека, что сопровождалось припуханием кожи и повышением местной температуры. Затем развивался абсцесс, с последующим образованием язвы; от раны ис­ходил запах сероводорода. Появление болезни было связано с травмированием стеблями сухой травы кожи конечностей в результате засушливого жаркого лета.

Третий случай клинического проявления некробактериоза связан с поражением кожи сосков вымени. Эта форма некробактериоза была отмечена у высокоудойных коров в одном из хозяйств Новосибирской области. При осмотре кожи сосков обнаруживались гнойно-некротические язвы. Бактериоло­гическим исследованием выделили чистую культуру, патогенную для белых мышей. По­ражения кожи сосков вымени были вызваны травмированием ее резиной стаканов доиль­ных аппаратов в процессе доения.

Поражение мышечной ткани тазовых ко­нечностей при некробактериозе наблюдали в нескольких хозяйствах Сибири (Новоси­бирская и Томская области, Красноярский край). В этих хозяйствах некробактериозом заболевали высокопродуктивные коровы и первотелки. Коровы не хромали; дистальный отдел конечностей не поражался. При убое животных отмечали гнойно-некротические поражения мышц тазового пояса, бедренной кости и эпифизарной части костного мозга. Мышечная ткань была вишневого цвета, дряблой консистенции, от нее исходил не­приятный запах. Костная ткань эпифиза на




разрезе наполнена кровью, костный мозг серо-коричневого цвета, мягкой консистенции.

Согласно данным других исследований, с интенсификацией откорма крупного рогатого скота участились случаи появления гнойного воспаления тканей хвоста, вызванные возбу­дителем некробактериоза F. necrophorum. Они связывают это с односторонним кормлением бычков и неудовлетворительными условиями содержания ( и , 1982; , 1989; P. Klucznick, 1976; W. Goldhorn, 1984).


Имеются сообщения об этиологической роли F. necrophorum в воспалении половых орга­нов (I. M. Sheldon et al., 2004; E. J. Williams et al., 2005) и вымени животных (Т. Shinjo, 1983). Эндометриты встречаются у 20 — 40% коров после отела. По данным зарубежных исследователей, этиология послеродовых болезней у коров может быть связана со сле­дующими возбудителями: Arcanobacterium pyogenes, Fusobacterium necrophorum, Bacteroides melaninogenicus. Синергизм меж­ду Arcanobacterium pyogenes и Fusobacterium necrophorum усиливает их вирулентность, в результате чего эндометрит у коров протекает очень тяжело. Fusobacterium necrophorum продуцирует лейкотоксин, который способ­ствует распространению Arcanobacterium pyogenes в ткани органов животных. В то же время, Arcanobacterium pyogenes выраба­тывает фактор роста для Fusobacterium necrophorum (R. A. Laven, A. R. Peters, 1996; G. S. Lewis, 1997; E. Malinowski, 2004).

M. H. Коннов, , и др., (2003), (2004) в резуль­тате вирусологических и бактериологических исследований доказали, что этиологическими агентами, вызывающими инфекционный ба-ланопостит откормочных бычков, являются герпесвирус типа 1 и бактерии Fusobacterium necrophorum. Впервые установлено, что бала-нопостит у откормочных бычков протекает, в основном, в виде смешанной инфекции.

В КП «Беклемишевское» Читинской об­ласти поражение бычков некробактериозом в форме баланопостита составляло до 35% (, , 2002; , 2004).

При лабораторном исследовании проб секретов из сосков вымени коров в летний период содержания в 35% случаев выделя­ли Cory neb acterium pyogenes, Peptococcus indolicus — 31% и Fusobacterium necrophorum - 22% (J. M. Van Den Bogaard, M. J. HazenU Vecht, 1987).

Некробактериозные поражения хвоста были отмечены у бычков на откорме в одном из хозяйств Новосибирской области. Заболе­вали бычки, находившиеся на втором перио­де откорма. Болезнью было охвачено 23,5% животных.

Показатели естественной резистентности организма крупного рогатого скота как бак­терицидная, так и лизоцимная активности меняются в течение года. В хозяйствах, небла­гополучных по некробактериозу, показатели резистентности ниже, чем в благополучных




РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ

хозяйствах, и они ниже у больных живот­ных по сравнению со здоровыми. Динамика показателей естественной резистентности и заболеваемости имеет противоположную на­правленность, т. е. со снижением показателей естественной резистентности увеличивается заболеваемость и, наоборот, при повышении резистентности снижается заболеваемость, при коэффициенте корреляции: БА - г = -0,924, ЛА - г = -0,600,

Следовательно, некробактериоз животных следует рассматривать не как местное пораже­ние тканей дистального отдела конечностей, а как системное заболевание, которому свой­ственен эпизоотический процесс. Ведущи­ми же факторами, влияющими на степень его проявления, выступают условия кормления и содержания. В хозяйствах при концентратном (40,00—52,85%) типе кормления и продук­тивностью от кг до 7700кг, заболеваемость коров кожной формой некробактериоза ко­лебалась от 8 до 50%, абсцессы печени — от 2,3 до 7,80%, отмечены единичные случаи поражения мышечной ткани и сосков вы­мени. В хозяйствах при полуконцентратном (25,3—37,91%) типе кормления коров и удое на 1 фуражную корову от 2750 до 4000кг, заболеваемость коров кожной формой некро­бактериоза колебалась от 8 до 24%, абсцессы печени — от 1,81 до 2,05%.

Основным способом лабораторной диагно­стики некробактериоза крупного и мелкого рогатого скота является бактериологическое исследование: микроскопия мазка, посев на питательные среды, биопроба на лаборатор­ных животных.

По данным экспертиз районных и об­ластных ветеринарных лабораторий в боль­шинстве случаев диагноз на некробактериоз не подтверждается. Одной из причин таких заключений лабораторий мы связываем с тру­доемкостью взятия для бактериологического исследования некротизированных тканей из пораженного пальца внутри роговой капсулы. Второй причиной, на наш взгляд, является то, что некротизированные участки тканей для исследования отбираются с поверхности пора­женного органа. На поверхности пораженных тканей органа присутствует, как известно, большое количество аэробных микроорганиз­мов. А возбудитель некробактериоза относится к анаэробным микроорганизмам и в поражен­ном органе находится глубоко, на границе здоровой и некротизированной тканей.

Для исследования в лабораторию направ­ляют обычно пораженную фалангу по путо-вый сустав. Взятие из глубины пораженной

фаланги некротизированных фрагментов тканей скальпелем, ножницами, пинцетом или ложкой Фолькмана, как правило, всегда очень затруднительно.

Мы предлагаем пораженную фалангу меха­нически расчленить на несколько фрагментов (3—4), в зависимости от степени пораже­ния. Затем в боксе из пораженных участков фаланги ложкой Фолькмана, скальпелем, ножницами или пинцетом, предварительно обработанных 70% спиртом или подвергну­тых фломбированию над пламенем горелки, отбирают пробы некротизированных тканей для исследований. Дальнейшее бактериоло­гическое исследование проводят согласно «Методическим указаниям по лабораторной диагностике некробактериоза» (1987).

При некробактериозе, особенно его кож­ной форме, наряду с основным возбудителем в больших количествах присутствует сопут­ствующая микрофлора: стафилококки, стреп­тококки, микрококки, кишечная палочка и другие микроорганизмы, препятствующие по­лучению чистой культуры и своевременной и правильной постановке диагноза. В целом на постановку диагноза затрачивается 8—10 суток, а в случае значительного обсеменения биологи­ческих образцов вульгарной микрофлорой это время увеличивается на 6—10 дней.

В настоящее время наиболее чувствитель­ными и специфичными признаны способы диагностики инфекционных болезней, осно­ванные на выявлении генома возбудителя в биологическом материале с помощью полиме-разной цепной реакции.

Теоретически и практически обосновано, что меры борьбы с некробактериозом круп­ного рогатого скота должны базироваться на комплексном проведении организационно-хозяйственных, ветеринарно-санитарных и лечебно-профилактических мероприятий, воз­действующих на все звенья эпизоотического процесса — восприимчивое животное, возбу­дитель инфекции и факторы передачи.

В России с начала 90-х годов многочислен­ными группами авторов начались усиленные исследования по изысканию биологических препаратов, в частности вакцин разного типа, для профилактики некробактериоза животных. По данным А. Сидорчук, А. Воронец (2001), применение вакцин нековак и нековак-стимул в течение одного-двух лет способствует резкому снижению количества больных животных в неблагополучном стаде (с 30—50% до 1—5%), а в ряде случаев дает возможность добиться полной ликвидации заболевания. Как указыва­ют авторы, в целях повышения эффективности


РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ



вакцинации необходимо сочетать применение препарата с другими ветеринарно-санитарными мероприятиями,

По сообщению , Л. В. Ки­риллова (2001), среди животных, привитых инактивированной формолвакциной, заболело 0,3% особей, при заболеваемости до вакцина­ции и в контроле от 15% до 30%.

с соавт., (2004) на осно­вании своих исследований показали, что инактивированная эмульсин-вакцина предо­храняет от заболевания около 98% приви­тых животных и обладает терапевтическим эффектом. Наилучший эффект отмечался в тех хозяйствах, где было сбалансированное кормление, вовремя проводилась обрезка ко­пытцев у животных.

Авторами разработана и апробирована вакцина ГОА ИЭВСиДВ, не уступающая по эффективности другим известным вакцинам.

В 90-е годы в России разработкой вакцин против некробактериоза занимались несколь­ко научных коллективов: ГНУ ИЭВСиДВ - гидроокисьалюминиевая вакцина; МВА и ВГНКИ — нековак и нековак-ститул вакцины; ВИЭВ — эмульгированная инактивированная вакцина. Нами проведено одновременное ис­пытание этих вакцин в неблагополучном хозяй­стве Новосибирской области на одной и той же ферме, при одинаковых условиях кормления, хода и содержания животных (табл. 1).

Все вакцины применяли согласно настав­лениям по их применению. Среднемесячная заболеваемость животных в опытных группах была достоверно ниже по сравнению с кон­трольными (Р<0,01). Однако, применение только одного метода вакцинации для про­филактики и ликвидации некробактериоза животных в неблагополучном хозяйстве не обеспечивает полную защиту животных от данной болезни. Коэффициент снижения интенсивности проявления эпизоотического процесса после применения вакцин составил от 41,1 до 59,78%.

За последние 10—15 лет для лечения боль­ных некробактериозом животных было предло-

жено и апробировано значительное количество неспецифических лечебных средств местного и общего действия. Препараты общего действия (левотетрасульфин, некрофар и др.) обладают раздражающим действием на организм жи­вотных и содержат в своем составе большое количество антибиотиков, что исключает воз­можность использования молочной и мясной продукции в пищу в течение 7—10 дней после их применения. После длительного их исполь­зования возможно привыкание возбудителя некробактериоза к антибиотикам. Большин­ство лечебных препаратов, применяемых местно при некробактериозе, обладают или антимикробным, или только дегидратирующим действием. Поэтому разработка эффективных комплексных препаратов и поиск оптимальных схем лечения крупного рогатого скота при указанной болезни имеют большое значение для сохранения поголовья.

Нами разработан и предложен для ветери­нарной практики комплексный, безвредный лечебный препарат для местного применения - некрогель, обладающий антимикробным действием в отношении микроорганизмов, участвующих в инфекционном гнойно-некротическом процессе при некробактериозе животных.

Разработаны и испытаны два инъекцион­ных препарата тетрацин, некросептин и пре­парат для местного применения — фузоцид.

Лечение крупного рогатого скота с инфи­цированными ранами дистальных отделов конечностей осуществляли следующим обра­зом. Первоначально выполняли туалет раны с удалением гноя и свободнолежащих нежиз­неспособных тканей с применением 0,25%-го раствора перманганата калия. По возможно­сти иссекали все некротизированные ткани, вскрывали ниши, карманы. Далее орошали раневую поверхность 3%-ным раствором пере­киси водорода, обсушивали ватно-марлевым тампоном. Наносили испытуемые препараты и накладывали марлевую повязку с интер­валом 2—3 дня. Лечебный эффект действия препаратов сравнивали с контрольной груп-

Результаты одномоментного испытания разных разрабатываемых противонекробактериозных вакцин

Таблица 1


"'Ж;:

и/и

^^^^^^^^•^^•^••••••нр^ ' • ' ~"* 'эщ ^•|^^нн^^^^^^^^^^^н^н^^^^^^^^^в^н^^н|^^^нвНЁ^:~: ........................ I
И Коэффициент снижения интенсивности

проявления эпизоотического ироцесеа

1

- вакцина

ГОА ИЭВСиДВ

50,71

2

- вакцина

Нековак

46,1

3

- вакцина

ВИЭВ

41,2

ежемесячный научно-практический журнал

РАСШИРЕННАЯ ТЕМА - НЕКРОБАКТЕРИОЗ

пой животных, раны которых обрабатывали общепринятыми средствами.

Производственное испытание разрабатывае­мых препаратов проводили в неблагополучных хозяйствах Новосибирской области, Алтайско­го края, в Республиках Татарстан и Хакасия, в Таймырском автономном округе. Животных в опытных группах лечили испытуемыми лечеб­ными средствами согласно разработанных нами наставлений по их применению, контрольных - традиционными препаратами (присыпка Плахотина, Островского, мазь Вишневского, левотетрасульфин). В течение 30 дней с начала лечения учитывали количество выздоровевших животных и сроки их выздоровления. Лечеб­ную эффективность препаратов оценивали по количеству выздоровевших животных и про­должительности их лечения.

Некрогелъ — это многокомпонентная смесь на водорастворимой основе, имеющая форму мази желто-коричневого цвета, со специфическим запахом чеснока,, в состав которой включены лекарственные вещества из групп антибиотиков, сульфаниламидов, мест-ноанастезирующих, антисептических средств и формообразователей. Мазь некрогель ис­пытана в 65 неблагополучных хозяйствах на 16865 больных животных в 12 субъектах России. Лечебная эффективность мази коле­балась от 84 до 90% и в среднем составила 86,33±0,53% (табл. 2).

В качестве присыпки предложен препарат фузоцид на основе бентонита, лечебная эф­фективность которого при производственном испытании составила 78,15±1,2% а общепри­нятых лечебных средств (присыпки Остров­ского, Плахотина) была достоверно ниже - 65,34± 1,1%.

Разработанные авторами инъекционные препараты тетрацин и некросептин рекомен­дованы для применения при осложненной стадии болезни.

Тетрацин — комплексный препарат, пред­ставляющий собой композит антибиотиков нового поколения, пролангаторов и аналь-гезирующих веществ, который не вызывает побочной реакции при введении больным животным.

Некросептин — комплексный препарат, представляющий собой композит антибиотиков, пролангаторов и аналыезирующих веществ.

При производственном испытании на круп­ном рогатом скоте лечебная эффективность составила: тетрацина — 92,7±0,46%, (Р<0,01), некросептина - 84,7±0,56%, (Р<0,01), в кон­троле (левотетрасульфин) — 81,0±0,43%; на северных оленях совместное применение те­трацина с некрогелем давало положительный результат в 91,7%, (Х2=17,6; Р<0,01), взвеси антибиотиков (окситетрациклина гидрохло­рид) на 0,15% растворе агар-агара с мазью Вишневского — 45,0%.

Лечебная эффективность некрогеля при некробактериозе крупного рогатого скота в разных регионах страны

Таблица 2


Количество Получено Обработано Выздоровело, Наименование региона „ Л/ хозяйств препарата, юг животных. %

Новосибирская область

34

621

9936

88

Алтайский край

10

120

1920

90

Республика Татарстан

5

215

3440

86

Томская область

2

21

335

84

Республика Хакасия

2

15

242

87

Кемеровская область

3

14

221

85

Читинская область

2

10

160

87

Кировская область

1

8

128

84

Тюменская область

1

6

96

85

Красноярский край

3

6

112

85

Краснодарский край

1

5

80

88

Таймырский АО (олени)

1

5

195

87

Итого по 12 - и регионам

65

1046

16865

86,33+0,53

«Ветеринария сельскохозяйственных животных» №12/2007


ежемесячный научно-практический журнал


I

Для лечения больных некробактериозом животных предложено большое количество разных препаратов, эффективность которых не во всех случаях высокая. Это связано, по-видимому, с тем, что многие исследователи не учитывали или не указывали в своих рабо­тах степень некробактериозного поражения, что, на наш взгляд, может существенно влиять на результаты лечения. Нами испытаны лечеб­ные препараты разных фирм-производителей

Мазь профезима серии пред­ложенная НИКТИ БАВ НПО «Вектор». Профезим -- бактериальный препарат про-тосубтилин, полученный из Вас. subtilis, иммобилизованный на аминоэтиленцеллюлозе, обладающий способностью быстро очищать гнойно-некротические раны за счет длитель­ного гидролиза денатурированных белков. Ле­чебная эффективность мази составила 65%.

Процеол - препарат НИКТИ БАВ НПО «Вектор» применили для группового лечения и профилактики некробактериоза крупного рогатого скота в ножных ваннах. Лечебная эффективность в первоначальном контро­лируемом научном опыте равнялась 95,6%. Дальнейшее испытание процеола на разных группах в разных хозяйствах при терапии гнойных ран показало низкую терапевтическую эффективность (60—70%). Данный препарат, как и профезим при лечении гнойных ран не­обходимо применять с лечебными средствами, способствующими заживлению ран.

Повиаргол — новый антисептик, — изготов­лен НИИКТИ БАВ НПО «Вектор». Повиаргол - коллоидное серебро, стабилизированное син­тетическим полимером. Лечебная эффектив­ность в научном опыте была лишь 33,3%.

Учитывая полученный недостаточно высо­кий результат применения мази повиаргола, приготовили из порошкообразного повиаргола гель на водорастворимой основе с добавлением антибиотика тетрациклиновой группы и стаби­лизатора. Лечебная эффективность препарата составила 100%.

Однако, учитывая очень высокую цену при покупке повиаргола, мы вынуждены были от­казаться от разработки препаратов на основе коллоидного серебра.

Оксигель-К — изготовитель -технология». Оксигель-К представляет собой вязкую опалесцирующую массу от желтого до зеленевато-желтого цвета. Лечебная эффектив­ность оксигеля-К составила 100%, присыпки Островского — 85%. Препарат оксигель-К ис­пытали в 3 хозяйствах Новосибирской области на 184 больных некробактериозом животных, из которых выздоровело 76,3±2,3%.

Данный препарат, также как процеол и профезим при лечении гнойных ран необ ходимо применять с лечебными средствами, способствующими заживлению ран.

Тетрацин испытали в неблагополучном по некробактериозу хозяйстве. Производствен­ное испытание тетрацина без учета стадии некробактериоза проведено в 4 неблагопо-лучннных хозяйствах на 394 больных жи­вотных, из которых выздоровело в среднем 92,7±0,46%, (Р<0,01). В контрольной группе при обработке левотетрасульфином 162 жи­вотных лечебная эффективность составила 81,0±0,43%.

Таким образом, один тетрацин или в ком­плексе с некрогелем показал высокую лечеб­ную эффективность в начальной и средней стадиях некробактериоза крупного рогатого скота. Продолжительность лечения больных некробактериозом животных тетрацином в начальной стадии в 2,5 раза меньше, чем не-кросептином, в средней стадии в комплексе с некрогелем — в 2 раза. При производственном испытании лечебная эффективность тетра­цина составила 92,7±0,46%, некросептина -84,7±0,56%, левотетрасульфина — 81,0+0,43 - 82,0±0,66%. При внутримышечном введении животным тетрацин не обладал раздражаю­щим действием по сравнению с некросептином и левотетрасульфином.

Тетрацин мы впервые испытали на больных некробактериозом северных оленях в неблаго­получном хозяйстве Таймырского автономного округа.

Таким образом, при производственном испытании на больных некробактериозом северных оленях лечебная эффективность тетрацина совместно с некрогелем оказалаь в два раза выше (91,%) по сравнению с взвесью антибиотиков (окситетрациклина гидрохло­рид) на 0,15% растворе агар-агара с мазью Вишневского.

В неблагополучных по некробактериозу хозяйствах рационы кормления не сбалан­сированы по многим показателям; нарушены обменные процессы организма животных с проявлением клинических признаков остеоди-строфии; ветеринарно-санитарное состояние животноводческих помещений не соответству­ют комфортным условиям содержания.

Оздоровление животных от некробакте­риоза возможно только после стабилизации обменных процессов за счет нормированного сбалансированного кормления и условий со­держания, контролируемых по основным био­химическим показателям сыворотки крови.