УДК 617-089.5-092.9].001
Опыт Анестезиологического пособия при экспериментальных операциях в условиях
студентческого научного кружка
, ,
Кафедра оперативной хирургии и топографической анатомии ГОУ ВПО ПГМА им. ак. Росздрава, г. Пермь, Россия
A. I. Ershova, M. H. Shakirov, I. V. Grishkevich, V. *****din
Department of Operative Surgery and Topographic Anatomy at PSMA
of Vagner’s name, Perm, Russia
В экспериментальных и учебных целях нами было проведено 6 операций на собаках и 8 на крысах, из них на собаках было выполнено 5 операций на брюшной полости и одна на конечностях. В операциях на собаках использовали внутривенный, внутрилегочный или внутриплевральный наркоз, а в операциях на крысах – ингаляционный.
Успех хирургического эксперимента, помимо адекватности и качества самого оперативного вмешательства, нередко зависит и от вида обезболивания.
Целью нашей работы было изучить возможные методы обезболивания животных и на основании полученных данных выработать наиболее оптимальное анестезиологическое пособие при экспериментальных операциях в условиях студенческого научного кружка. Работа проводилась на кафедре оперативной хирургии и топографической анатомии Пермской государственной медицинской академии. В экспериментальных и учебных целях нами было проведено 6 операций на собаках и 8 на крысах, из них на собаках было выполнено 5 операций на брюшной полости и одна на конечностях. Изучив имеющуюся литературу, мы пришли к выводу, что для обезболивания собак и крыс возможно использование ингаляционного, внутривенного, внутрилегочного или внутриплеврального наркоза, а также эпидуральной анестезии.
Важным аспектом при проведении общего наркоза является премедикация, для этого наиболее часто используются нейролептики. Они оказывают общее успокаивающее влияние на организм собаки, сопровождающееся уменьшением реакции на внешние стимулы, ослаблением психомоторного возбуждения и аффективной напряженности, подавлением чувства страха и ослаблением агрессивности. В сочетании с антигистаминными препаратами, оказывающими седативное действие, и ненаркотическими анальгетиками нейролептики во всех случаях позволяют добиться нужной степени снижения активности и возбудимости животного. К несомненному достоинству этих препаратов следует отнести и то, что они входят в группу «Б», что упрощает многие организационные моменты.
В литературе описано применение сочетания препаратов, относящихся к указанным группам, разработаное : дроперидол 0,5 мг/кг, димедрол 1,5 мг/кг и анальгин 50-70 мг/кг. Спустя 15-20 минут после внутримышечного введения коктейля животное становится вялым, почти не реагирует на окружающую обстановку и слабые раздражители, ложится и приходит в полусонное состояние. Мы использовали данный метод премедикации и были вполне удовлетворены результатами.
Долгое время единственным видом обезболивания являлся морфинно-эфирный наркоз. Однако данный способ имеет целый ряд недостатков при использовании его студентами в эксперименте: продолжительная подготовка к наркозу, необходимость большого количества морфина, ярко выраженное возбуждение при введении в наркоз и при выходе из него, частые осложнения, необходимость в специальном оснащении и оборудовании для проведения наркоза и потребность в наркотизаторе. Кроме того, в России запрещено применение этих препаратов в операциях на животных без лицензии на право использования данных средств для наркоза. Ввиду вышеперечисленных сложностей от данного вида обезболивания пришлось отказаться.
Основными препаратами для проведения парентерального наркоза являются барбитураты (тиопентал натрия, гексенал), кетамин (калипсол), пропофол (диприван). Основными способами введения являются внутривенный, внутриплевральный, внутрилегочный, внутрибрюшинный. Недостатком внутривенного наркоза является то, что для его использования необходимо полное обездвиживание собаки, которое можно достичь только после дачи вводного наркоза. Мы считаем, что одной премедикации в данном случае недостаточно, как это описано в Руководстве по экспериментальной хирургии .
Достаточно простой и доступный способ обезболивания собак предложила в 1958 году – инъекционный внутрилегочный или внутриплевральный наркоз барбитуратами. При данном виде наркоза иглу вводят в плевральную полость или в поверхностный слой легких в области заднего угла правой лопатки (между IV-V ребрами). Для исключения попадания иглы в кровеносный сосуд проводят неоднократный контроль путем потягивания поршня шприца назад. Доза барбитуратов рассчитывается исходя из веса животного: тиопентала натрия 45 мг/кг, гексенала 60-70 мг/кг (по литературным данным лучше использовать гексенал). 10%-ый раствор вводят медленно. Подтверждением правильности введения наркотического вещества в легочную ткань является появление кашлевого рефлекса сразу после инъекции, а иногда и при введении его. Кроме простоты, удобства и безопасности использования, а также отсутствия необходимости в специальной аппаратуре и квалификации, преимуществом данной методики является и то, что у животных практически отсутствует стадия возбуждения, а возможность неоднократного повторения его на одном и том же животном обеспечивает возможность проведения хронического хирургического эксперимента. Однако следует помнить о том, что при всех своих достоинствах барбитураты не снимают полностью болевую чувствительность. Следовательно, появляется необходимость в местной анестезии для профилактики шока, т. е. введение раствора новокаина в рефлексогенные зоны, в нашем случае – в основание брыжейки тонкого кишечника. К сожалению, при выполнении данной манипуляции мы столкнулись с некоторыми проблемами, т. к. брыжейка собаки представляет собой не что иное, как дупликатуру серозных листков, практически полностью лишенных жировой клетчатки, и ввести в нее новокаин представлялось крайне затруднительным.
Вопрос об адекватном обезболивании при данном виде наркоза до сих пор остается для нас открытым. Имеющиеся в нашем распоряжении препараты, такие как анальгин, баралгин и кеторол, не дают должного анальгетического эффекта при применении их у собак, а, по мнению некоторых авторов (Кузнецов, 2005), вообще не рекомендованы для применения на собаках (кеторол) из-за высокого риска осложнений, вплоть до летального исхода. Предложенные в литературе препараты, специально разработанные для собак (ведапрофен (квадрисол), карпрофен (римадил)), нам недоступны ввиду их высокой стоимости, либо отсутствия разрешения на их применение. Наиболее оправданным мы сочли применение кетонала (действующее вещество кетопрофен), поскольку он обладает достаточным анальгетическим эффектом, безопасен при применении на собаках и продается практически во всех аптеках.
Для обеспечения наиболее адекватного обезболивания мы обратились к методу эпидуральной анестезии. Этот метод анестезии широко применяется в ветеринарной практике и используется при различных хирургических вмешательствах, в том числе и на органах брюшной полости. описывает выполнение эпидуральной анестезии на фоне седации ксилазином, однако, из-за отсутствия у нас данного препарата, мы проводили седацию собаки внутрилегочным введением тиопентала натрия. Техника выполнения пункции эпидурального пространства достаточно подробно описана В качестве анестетика для собак применяется 2% раствор лидокаина. Если есть необходимость, для увеличения продолжительности действия эпидуральной анестезии можно добавить к анестетику 1 каплю официнального раствора адреналина. Продолжительность анестезии у собак 20-40 минут (лидокаин) и 60-120 минут (лидокаин + адреналин). Количество вводимого анестетика рассчитывается в зависимости от массы животного. Наступление анестезии сопровождается полной релаксацией хвоста и задних конечностей, отсутствием пателлярного и анального рефлексов, расслаблением анального сфинктера. Ввиду отсутствия должного опыта пункция эпидурального пространства собаки вызвала у нас значительные затруднения, что не позволило нам провести эпидуральную анестезию. Однако мы считаем этот способ обезболивания наиболее адекватным и отвечающим требованиям проводимых нами операций, и будем стремиться к использованию данного метода в своей дальнейшей работе.
Что касается обезболивания крыс, то в литературе () описано применение двухкомпонентного наркоза: ксилазин 0,1 мл/100 г веса животного внутримышечно или подкожно, а через 10-15 минут внутривенно пропофол (диприван) 0,1 мл официнального раствора на 100 г веса животного. Этот метод, несомненно, является достаточно простым и универсальным, однако сложность применения его в наших условиях заключалась в отсутствии вышеперечисленных препаратов.
Исходя из доступности метода, мы выбрали ингаляционный наркоз эфиром через открытый контур. Техника его выполнения заключается в том, что в стеклянную прозрачную банку с плотно притертой крышкой мы помещали ватку, обильно смоченную эфиром, и подопытную крысу. Сквозь прозрачное стекло легко наблюдать все стадии наркоза. Когда крыса впадала в стадию хирургического наркоза, мы вынимали ее из банки, фиксировали на столе, а рядом с мордочкой клали смоченную в эфире ватку для поддержания нужной глубины наркоза. Данный вид наркоза достаточно прост и удобен в использовании, не требует специального оборудования, дорогостоящих препаратов и дополнительного обезболивания, но сложность его применения заключается в трудности контроля глубины наркоза и возможности передозировки препарата, что приводит к смерти животного в результате остановки дыхания и сердечной деятельности. Из восьми прооперированных нами крыс одна умерла из-за передозировки эфира.
На основании проведенной нами работы, мы сделали следующие выводы:
1. Наиболее доступным при экспериментальных операциях на собаках в условиях студенческого научного кружка является внутриплевральный наркоз барбитуратами.
2. Наиболее адекватным методом обезболивания собак мы считаем эпидуральную анестезию, технику выполнения которой мы планируем осваивать.
3. Для крыс самым оптимальным мы считаем применение двухкомпонентного наркоза: ксилазин+диприван. Однако в условиях отсутствия данных препаратов мы останавливаем свой выбор на ингаляционном наркозе эфиром через открытый контур.
Список использованной литературы:
1. Демихов жизненно-важных органов в эксперименте – М.: Медгиз, 1960. – С.31-33.
2. Кузнецов анестезия мелких домашних животных: пятилетний опыт применения в клинической практике.// http://klinika. *****/doctor. php
3. Кузнецов применение эпидуральной анестезии в ветеринарии мелких домашних животных.// http://klinika. *****/doctor. php
4. Кузнецов анестезия грызунов (практический опыт).// http://klinika. *****/doctor. php
5. Кузнецов собак.// http://klinika. *****/doctor. php
6. Лопухин хирургия –М.: Медицина, 1971.–С.18-28.
7. , Чудакова инъекционный наркоз в экспериментальной пластической хирургии.//Вопросы экспериментальной и клинической хирургии – Пермь,1970. – С.14-17.
8. Сперанская операций на собаках и проведения хронических опытов в физиологии – Москва-Ленинград, 1953. – С.10-16.
9. , , Шейко собаки – Л.: Наука, 1972. – С.170-173.
10. , , Кейсевич по экспериментальной хирургии – М.: Медицина, 1989. – С.26-41.
