Волгоградский государственный медицинский университет
Кафедра детских инфекционных болезней
ОСНОВНЫЕ ПРАКТИЧЕСКИЕ НАВЫКИ
ВРАЧА – ИНФЕКЦИОНИСТА
Волгоград 2011г
Для заметок
Правила забора материала для бактериологического исследования на дифтерию (BL)
· Материал берется врачом при первом обращении больного в стационар или поликлинику до начала лечения антибиотиками.
· Забор материала производится разными для зева, носа, глаза и т. д. тампонами.
· Мазок берется натощак, до туалета ротовой полости или через 3 часа после еды.
· 
Взятие производят стерильным ватно-марлевым тампоном, под контролем глаза, обязательно со шпателем. Слизь берется с миндалин, дужек, язычка, задней стенки глотки, не задевая языка, слизистой щек и зубов.
· Корень языка отдавливается книзу и кпереди шпателем (левой рукой), а правой рукой осторожно вводят в ротовую полость тампон и снимают слизь. При наличии пленок слизь берется на границе здоровой и пораженной ткани.
· При взятии слизи из носа, необходимо предварительно очистить носовые ходы (предлагают больному высморкаться), маленьким детям сухим ватным фитилем удаляют корки. Тампон вводят в каждую ноздрю, плотно прикасаясь всеми его сторонами к стенке и перегородке носа.
· Материал доставляется в лабораторию не позднее 3-4 часов от момента забора.
Контрольное бактериологическое исследование на токсигенные коринебактерии проводится через 3 дня после отмены антибиотиков, двукратно с интервалом в 1 день.
Правила забора материала для бактериологического исследования на менингококк
1. При менингококковой инфекции исследованию подлежит носоглоточная слизь (берется мазок из глотки и носовых ходов).
2. Материал из глотки берется с помощью стерильного тампона, укрепленного на алюминиевой проволоке, изогнутой под углом 1350.
3. Материал забирается натощак или через 3-4 часа после еды, при этом язык обязательно фиксируется шпателем.
4. Тампон осторожно вводят в ротовую полость, проводят за небную занавеску (не касаясь при этом щек, зубов, языка) и снимают слизь с задней поверхности глотки под контролем глаза.
5. При взятии слизи из носа, необходимо предварительно очистить носовые ходы (предлагают больному высморкаться), маленьким детям сухим ватным фитилем удаляют корки. Тампон вводят в каждую ноздрю, плотно прикасаясь всеми его сторонами к стенке и перегородке носа.
Взятые мазки немедленно высевают на соответствующие плотные питательные среды, а также наносят на предметное стекло, обводят стеклографом, подсушивают и направляют в лабораторию для микроскопического исследования.
Правила забора крови на малярию
1. Обнаружение паразитов в мазке крови является основным методом диагностики малярии. Мазки используют в случаях, когда видовую принадлежность плазмодиев, найденных в толстой капле, установить не удалось.
2. Лучше всего производить забор крови во время лихорадки или сразу же после озноба, до начала этиотропной терапии.
3. Предметные стекла, на которых будут готовить препарат, должны быть хорошо вымыты и обезжирены.
4. Кровь берут с соблюдением правил асептики. Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным стеклом.
5. При приготовлении мазка капля крови должна быть 2-3 мм., шлифованное стекло ставят перед каплей под углом 450º и продвигают вперед до соприкосновения с ней. Когда кровь растечется между обоими стеклами, плавным и быстрым движением делают мазок.
6. Для приготовления толстой капли на стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм. Её размазывают иглой или углом предметного стекла в диск диаметром 10-15 мм. Толщина полученной капли должна быть такой, чтобы через нее можно было читать газетный шрифт. Обычно на одно стекло наносят 2-3 капли на некотором расстоянии одна от другой. Взятые капли должны быть отмечены на обратной стороне стекла восковым карандашом - ФИО больного или регистрационный номер.
7. Возможно нанесение толстой капли на влажный мазок крови. В данном случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Маркировка препарата делается простым карандашом. При приготовлении толстой капли данным способом, удается хорошо сохранить в мазке пораженные эритроциты, что весьма важно для уточнения вида паразитемии, препарат удерживается на стекле более прочно, чем при непосредственном нанесении на стекло.
8. Приготовленные препараты высушивают при комнатной температуре не менее 2-3 часов и окрашивают по Романовскому-Гимзе.
Методика проведения спиномозговой пункции.
1. Пункцию проводят натощак в процедурном кабинете или операционной.
2. Ребенка укладывают на бок, сгибают голову кпереди, бедра приводят к животу, выгибая спину кзади, и фиксируют в таком положении.
3. Место прокола обтирают 95% спиртом.
4. Прокол производят между II-III или III-IV поясничными позвонками (место прокола определяют по линии, соединяющей гребни подвздошных костей).
5. Для пункции используют специальные иглы с коротким срезом обязательно с мандреном.
6. Игла вводится строго сагиттально по средней линии с легким наклоном в сторону головы. Игла вводится медленно, преодолевая сначала кожу, потом межпозвоночные связки, твердую мозговую оболочку, после чего как бы проваливается в спиномозговой канал.
7. Количество спиномозговой жидкости примерно составляет 1 мл на год жизни ребенка, но не более 5-6 мл.
8. После забора жидкости иглу извлекают, место прокола зажимают стерильным тампоном и заклеивают лейкопластырем. Ребенок должен лежать на животе, без подушки. Строгий постельный режим должен соблюдаться не менее суток.
Методика забора материала при коклюше методом
«кашлевых пластинок»
1. Ребенка фиксируют на руках так же, как и при заборе мазков из зева.
2. Врач шпателем нажимает левой рукой на корень языка и слегка раздражает заднюю стенку глотки, при этом в правой руке он держит открытую подогретую и подсушенную чашку Петри со средой Борде-Жангу.
3. При появлении кашлевых толчков из трахеи и бронхов отходит мокрота, которую собирают в открытую чашку Петри, поднеся ее на расстояние 10-15 см ко рту ребенка.
Правила забора материала для бактериологического исследования на кишечную группу бактерий.
1. Забор материала осуществляют до начала лечения этиотропными средствами. Посев производят немедленно после забора, непосредственно у постели больного. Если собранный материал нельзя направить в лабораторию, его помещают в консервант, хранят в холодильнике при температуре +40С.
2. Забор испражнений (2-3г) производят стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой из судна, горшка, специального лотка или пеленки. В судне или горшке не должно оставаться следов дезинфицирующих средств, для чего их необходимо тщательно промыть горячей водой. При отсутствии стула возможен забор материала непосредственно из прямой кишки с помощью ватных тампонов, металлических петель или через трубку ректоскопа.
3. Для посева нужно стремиться взять слизь, гной, фибринные пленки, избегая примеси крови в связи с ее бактерицидными свойствами
Правила забора материала для бактериологического исследования при брюшном тифе.
Материалом при исследовании на брюшной тиф служат кровь, испражнения, моча, желчь, соскобы с розеол, в редких случаях - пунктат костного мозга.
· Выделение сальмонелл из крови (гемокультура) является наиболее ранним и достоверным методом диагностики. Кровь для исследования берут при повышенной температуре в любой день болезни (обычно в первые 10 дней). Чем раньше от начала заболевания произведен посев, тем достовернее результат. Кровь берут из вены, желательно до начала антибактериальной терапии, в количестве 10 мл на первой неделе, и 15-20 мл в более поздние сроки, у постели больного засевают на питательную среду в соотношении 1:10 (при меньшем объеме питательной среды кровь оказывает бактерицидное действие на микроб-возбудитель).
· Посев кала (копрокультура) производят со второй недели заболевания. Стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой берут 2-3 г испражнений из судна или горшка и помещают в стерильные банки. Для устранения дезинфицирующих средств судно или горшок следует тщательно промыть горячей водой. Посев производят прямым методом на чашки со средой Плоскирева или Левина.
· Посев мочи (уринокультура) производят непосредственно на среды, начиная со второй недели заболевания. В стерильную посуду собирают 20-30 мл мочи с соблюдением условий, исключающих попадания посторонней флоры.
· Посев из розеол (розеолокультура) осуществляют при появлении на коже розеолезной сыпи. Кожу над розеолой обрабатывают спиртом и скарифицируют. На место скарификации наносят каплю желчного или простого бульона, а затем с помощью пипетки переносят во флакон с 50 мл желчного бульона.
· Посев желчи (биликультура) производят не ранее 10 дня нормальной температуры. Желчь, полученную при помощи дуоденального зондирования, собирают в стерильные пробирки. Производят посев всех порций дуоденального содержимого (А, В, С) по 0,5 мл на чашки Петри с дифференциальными средами, и 1-2 мл на среду обогащения (бульон).
Правила забора крови для серологических исследований
Сущность метода заключается в определении роста титра антител в сыворотке крови больного по отношению к известным антигенам.
1. Кровь берут дважды с интервалом в 7-10 дней, начиная с 3-5 дня заболевания.
2. Забор крови осуществляется «самотеком» – в локтевую вену вводят иглу широкого диаметра без шприца, кровь (3-5 мл) собирают в пробирку. При таком сборе эритроциты меньше травмируются и сыворотка реже бывает с явлениями гемолиза.
3. После отстаивания и центрифугирования с помощью пипетки сыворотку крови переносят в другую пробирку и хранят в холодильнике при +40С до постановки реакции.
4. Нарастание титра антител в 4 и более раза является подтверждением предполагаемого диагноза.
Правила введение гетерогенных сывороток по методу Безредки
Все гетерогенные сыворотки содержат остаточное количество чужеродного (лошадиного) белка, поэтому вводить сыворотку нужно дробно, определив предварительно чувствительность организма.
1. Внутрикожно в среднюю треть сгибательной поверхности предплечья вводят 0,1 мл разведенной в 1:100 сыворотки (ампулы прилагается к каждой упаковке). Результат оценивается через 20-30 минут. Проба считается отрицательной, если диаметр папулы и гиперемии не превышает 9 мм и нет общей реакции организма (сыпи, повышения температуры и т. д.).
2. При отрицательной внутрикожной пробе вводят подкожно (в наружную поверхность плеча) 0,1 мл не разведенной сыворотки. Результат учитывают через 40 минут. Если в месте введения диаметр папулы или гиперемии не превышает 9 мм, проба считается отрицательной.
3. Вводят всю лечебную дозу сыворотки внутримышечно (в переднюю поверхность бедра или наружный квадрант ягодичной мышцы).
Методика проведения катетеризации мочевого пузыря
1. Катетеризацию проводят мягким одноразовым катетером с соблюдением асептики.
2. Ребенка укладывают на спину и обмывают наружные половые органы марлевым тампоном, смоченным раствором фурациллина (1:5000). Конец катетера смачивают стерильным вазелином.
3. У мальчиков средним и безымянным пальцами левой руки обхватывают половой член ниже головки, а большим и указательным фиксируют её и слегка натягивают уретру по средней линии. Девочкам указательным и большим пальцами раздвигают большие половые губы и дезинфицирующим раствором обрабатывают наружное отверстие уретры.
4. Катетер вводят стерильным пинцетом в наружное отверстие уретры и проталкивают его внутрь до мочевого пузыря. О попадании катера в пузырь свидетельствует появление мочи.
Методика проведения очистительной клизмы грудному ребенку
1. Грудного ребенка укладывают на спину с приподнятыми вверх ногами.
2. Прокипяченный резиновый баллон с кипяченой водой (28-300С) осторожно вводят в задний проход на глубину 3-5 см. Предварительно его наконечник смазываю вазелином маслом.
3. Медленно вводят в прямую кишку воду. Количество воды для новорожденного 25-30 мл, грудного ребенка – 60-150 мл.
4. После введения жидкости ягодицы ребенка сжимают рукой, а другой осторожно извлекают наконечник чтобы не допустить вытекания воды до усиления перистальтики кишечника.
Методика проведения очистительной клизмы ребенку старшего возраста
1. Для очистительных клизм детям старшего возраста используют кружку Эсмарха.
2. Ребенка укладывают на левый бок с подогнутыми ногами. Заполняют кружку кипяченой водой (20-220С) и вешают на штатив, чтобы она находилась на 50-75 см выше уложенного ребенка.
3. Резиновый наконечник смазывают вазелином и, разведя ягодицы, вводят на глубину 5-10 см.
4. Скорость поступления жидкости и ее объем регулируют с помощью крана, размещенного на резиновой трубке.
5. Детям 2-5 лет вводят 150-200 мл, более старшего возраста – 200-500 мл.
6. После введения жидкости больной должен полежать 8-10 мин, пока не усилится перистальтика.
Методика промывания желудка
Промывание желудка производится с лечебной и диагностической целью для удаления из него недоброкачественной пищи, ядов, слизи. При этом используется принцип сифона.
1. Больной садится на стул, плотно прислонившись к его спинке, слегка наклонив голову вперед. Между ногами больного ставится таз или ведро, куда будут собираться промывные воды.
2. Введение зонда может вызвать тошноту или рвоту. Больного предупреждают об этом и предлагают делать частые глотательные движения и глубоко дышать через нос.
3. После введения зонда в желудок к наружному концу трубки присоединяют воронку и наполняют ее жидкостью, затем воронку поднимают вверх. Когда жидкость опустится до нижней части конуса воронки, ее опускают до уровня головы ребенка.
4. Как только воронка заполнится содержимым желудка и промывной жидкостью, резиновую трубку пережимают пальцами ниже воронки и все сливают в таз. Это повторяют до тех пор, пока из желудка не будут поступать чистые промывные воды.
5. Собранные промывные воды собирают в стерильную посуду и отправляют в лабораторию для исследования.
