Практические навыки дерматовенеролога (стр. 5 )

- у мужчин при исследовании материалов взятие образцов из уретры необходимо проводить при условии задержки моче­испускания не менее 3—4 часов;

- материал из уретры для микроскопического исследования берется раньше всех других уретральных образцов или сразу же после взятия выделений или проб для культурального ис­следования на гонококки.

- материал для приготовления нативного мазка из влагалища берется раньше всех других вагинальных проб. Если имеются обильные выделения и подо­зревается трихомонадная или кандидозная инфекция, обра­зец берется из заднего свода, где концентрация предполага­емого инфекционного агента наибольшая. Если количество выделений обычное, образец следует брать с боковой стенки влагалища.

- образец из шейки матки для микроскопического исследова­ния берется раньше всех других цервикальных образцов или сразу же после взятия мазка для культурального исследова­ния на гонококки.

- предметные стекла должны быть сухими, чистыми, не поца­рапанными (оптимально применять новые стекла для каж­дого нового пациента). Забор материала для микроскопического исследования производится на 2 стекла.

- для микроскопического исследования мазок наносится тон­ким слоем только на одну сторону предметного стекла.

- при использовании метода прямой микроскопии физиоло­гический раствор должен быть теплым (оптимально 37°С). Эта температура позволяет легче распознать подвижные трихомонады.

Клинический материал можно получать с помощью пласти­ковой бактериологической петли, ложечки Фолькмана или ватного/дакронового тампона. Предпочтение во всех случаях сле­дует отдавать дакроновым тампонам.

№ 2. Взятие клинического материала из уретры у мужчин.

У мужчин при наличии выделений из уретры поверхность головки и область наружного отверстия уретры должны быть очищены с помощью марлевого тампона и крайняя плоть отведена назад для предупреждения контами­нации. При отсутствии свободных выделений необходимо по­просить пациента слегка помассировать уретру скользящими движениями от основания пениса к его головке. В этом случае могут быть использованы ложечка Фолькмана или ватный/дакроновый тампон для взятия материала. После введения пластиковой петли в уретру на 1-2см необходимо плоскость «глазка» петли двигать к наружному отверстию, слегка нажимая на стен­ки уретры. Не рекомендуется вращать петлю, так как это вызы­вает у пациента болевые ощущения. Для микроскопического и иммунофлюоресцентного исследования после получения клинического материала петля накладывается на поверхность стекла и передвигается по нему несколько раз с легким нажати­ем. Петля должна оставить на стекле тонкую полоску клиниче­ского материала. Для культурального исследования и исследо­вания методом ПЦР материал помещается в соответствующие пробирки с транспортной средой.

У детей препубертатного возраста брать материал из уретры не рекомендуется. В этом случае собирается моча для исследования молекулярно-биологическими методами (ПЦР и др.) или берутся мазки из наружного отверстия мочеиспуска­тельного канала мягким зондом.

Взятие первой порции мочи для молекулярно-биологических методов исследования.

- Пациента следует обеспечить одноразовым стерильным кон­тейнером для мочи.

- Собрать надо только первые 10-15 мл свободно выпушен­ной мочи.

- Пациент не должен подмываться в течение последних 2 ча­сов до взятия проб.

№ 3. Взятие клинического материала у женщин.

При наличии большого количества вы­делений наружное отверстие уретры должно быть очищено с помо­щью марлевого тампона. При отсутствии свободных выделе­ний может быть проведен легкий массаж уретры. После введения в уретру дакронового тампона на 1-2 см необходимо двигать его к наруж­ному отверстию, слегка нажимая на заднюю и боковые стенки уретры. Для микроскопического и иммунофлюоресцентного исследо­вания после получения клинического материала тампон накла­дывается на поверхность стекла и передвигается по нему не­сколько раз с легким нажатием. Тампон должен оставить на стекле тонкую полоску клинического материала. Для культу­рального исследования и исследования методом ПЦР матери­ал помещается в соответствующие пробирки с транспортной средой.

Образец из цервикального канала берется ватным/дакроновым тампоном (при осмотре шейки матки с помощью зеркал), специальной щеточкой или ложечкой Фолькмана. Необходимо тщательно очистить наружное отверстие цервикального канала при помощи большого марлевого тампона от вагинальных вы­делений для предотвращения возможной контаминации. Пос­ле введения тампона в шеечный канал на 1—2 см его вращают несколько раз. Для микроскопического и иммунофлюорес­центного исследования клинический материал должен быть перенесен с тампона на стекло как можно более тонким слоем. Для культурального исследования и исследования методом ПЦР материал помещается в соответствующие пробирки с транспортной средой. Цервикальные мазки не берутся у девочек препу­бертатного возраста. При подозрении на ИППП в этом возрас­те мазки берутся из преддверия влагалища.

Для микроскопического исследования вагинального отделяемого материал берется (также с помощью зеркала) с заднего или боковых сводов ло­жечкой Фолькмана и тонким слоем распределяется на предмет­ном стекле. Для культурального исследования и исследования методом ПЦР материал помещается в соответствующие про­бирки с транспортной средой.

У женщин после гистерэктомии мазки на С. trachomatis и N. gonorrhoeae берутся из уретры, вагины и ануса.

№ 4. Микроскопическое исследование мазка на гонококки.

Перед окраской метиленовым синим и по способу Грама мазки фиксируют 96° этиловым спиртом в течение 3 минут, высушивают. Окраску мазков 1% водным раствором метиленового синего производят в течение 1 минуты, затем высушивают.

Используют для изуче­ния морфологии и расположения диплококков, в то время, как окончательный лабораторный диагноз гонореи ставится на основании мазков, окрашенных по способу Грама.

При правильной окраске по способу Грама ядра__клеточных элементов (лейкоцитов, эпителиальных клеток) должны частично удерживать основную фиолетовую краску (критерий правильности окраски) - в центре они должны быть ок­рашены в фиолетовый цвет, а по периферии — в оранжево-красный, а гонококки, расположенные в_ лейкоцитах и на эпи­телиальных клетках, обесцвеченные таким образом и окра­шенные дополнительной краской, будут оранжево-красные.

Качество окраски мазков в значительной степени зависит и от их приготовле­ния: материал в мазках из уретры, цервикального канала и ректум на одном стекле должен быть расположен равномер­ным, тонким слоем и содержать достаточно материала для исследования.

Идентификация гонококка производится на основании его свойств: морфологии, расположения и отношения к ок­раске по способу Грама.

Гонококк—это парный кокк, имеющий форму кофейного зерна; кокки обращены друг к другу своей вогнутой сторо­ной, гонококки не образуют цепочек. Внутри лейкоцитов они располагаются парами и группами так, что одни диплококки лежат по отношению к другим под различными углами. Внеклеточ­ное расположение гонококков также имеет свои характер­ные особенности. Часто гонококки лежат на клетках плоского эпителия в большом количестве рядами с расположением диплококков под углом или перпендикулярно друг к другу внутри ряда. Частота внутри и внеклеточного расположения гонококков зависит как от периода заболевания, так и от методики взятия материала.

Основным дифференциальным признаком является отно­шение гонококка к окраске по способу Грама. Гонококки грамотрицательны, т. е. они легко обесцвечиваются спиртом и окрашиваются дополнительной краской

№ 5.Профилактика гонококковых заболеваний глаз у новорожденных

По существующему законодательству (Приказ Минздрава РФ № 000 от 26.11.97) профилактика гонобленнореи у новорожденных является обязательной. Сразу после рождения ребенку протирают глаза ватным тампоном, смоченным дезинфицирующим раствором (фурациллин 1:5000, риванол 1:5000), и закапывают в каждый глаз 1 каплю 20%-ного раствора сульфацил натрия. Закапывание этого лекарственного вещества повторяют через 2 — 3 минуты.

№6. Дезинфекция рук и инструментов при работе с больным сифилисом

Манипуляционные столы, столы для сохранения стерильных инструментов, стоматологические установки, раковины, краны и другие поверхности в кабинетах дезинфицируют: 1% раствором хлорамина; 1,0% раствором амфолана; 0,5-1% водным раствором хлоргексидина биглюконата; 0,2 % раствором сульфахлорантина; 0,25% раствором гипохлорита натрия; 0,25% раствором нейтрального гипохлорита кальция; 0,5% раствором хлорацину; 0,1% раствором дезоксону-1 (спиртовой раствор над уксусной кислоты). 
Дезинфекции подлежат и стаканы многоразового использования для полоскания полости рта. Их промывают проточной водой и обеззараживают одним из способов - кипячение, сухим горячим воздухом или погружением на ЗО минут в 0,5% раствор хлорамина; 0,1% раствор гипохлорита натрия; 0,1% раствор сульфахлоратина; 0,05% раствор дезоксона-1; 2,5% водный раствор хлоргексидина биглюконата и др. 
В течение рабочего дня младший медперсонал должен мыть плевательницы после приема каждого пациента, не допуская их переполнения окровавленными марлевыми тампонами, сгустками крови и слюны. Перед тем, как выбросить содержимое плевательницы, ее нужно залить 3% раствором перекиси водорода или 2% раствором хлорамина, после чего пустую плевательницу мойте 2% мыльно-содовым раствором или горячим роствором любого моющего порошка, а затем ополоснуть проточной водой. 

Для уничтожения отходов (использован перевязочный материал, подкладная бумага и т. д.), малоценных предметов используется сжигание. 
Дезинфекцию инфицированных материалов следует проводить в закрытых емкостях в сухожаровом шкафу, оборудованном механической вентиляцией. 
Генеральная уборка проводится строго по графику не реже 1 раза в неделю. Для проведения генеральной уборки персонал надевает чистые халаты, непромокаемую обувь, респиратор, защитные очки, резиновые перчатки, клеенчатые фартуки.