Задания к практическим занятиям по общей микробиологии (издание второе, переработанное) Методическая разработка для студентов факультета ветеринарной медицины (стр. 1 )

ЗАДАНИЯ К ПРАКТИЧЕСКИМ

ЗАНЯТИЯМ

ПО ОБЩЕЙ МИКРОБИОЛОГИИ

(издание второе, переработанное)

Методическая разработка

для студентов  факультета ветеринарной медицины

Новосибирск 2009

ЗАДАНИЕ

К ПРАКТИЧЕСКИМ ЗАНЯТИЯМ

ПО ОБЩЕЙ МИКРОБИОЛОГИИ

СТУДЕНТ_____________________________________________

ГРУППА______________УЧЕБНЫЙ ГОД__________________

Новосибирск, 2009

Программа        1

Новосибирский государственный аграрный университет        1

ЗАДАНИЯ К ПРАКТИЧЕСКИМ        1

ЗАНЯТИЯМ        1

ПО ОБЩЕЙ МИКРОБИОЛОГИИ        1

(издание второе, переработанное)        1

Методическая разработка        1

Новосибирск 2006        2

ЗАДАНИЕ        2

СТУДЕНТ_____________________________________________        2

ГРУППА______________УЧЕБНЫЙ ГОД__________________        2

Новосибирск, 2006        3

Тема I. Общая бактериологическая техника        3

Контрольные вопросы        3

Оборудование и материалы        3

Методические указания        3

Основные части микроскопа:        3

Основные правила работы с микроскопом        4

Техника работы с бактериологической петлей, бактериологической пробиркой, спиртовкой        4

Техника приготовления мазка-препарата, фиксирования, окрашивания        5

Окраска фиксированного мазка-препарата по Граму        5

Окраска спор по Ожешко        6

Тема 2. МОРФОЛОГИЯ СОВЕРШЕННЫХ И НЕСОВЕРШЕННЫХ ГРИБОВ И АКТИНОМИЦЕТОВ        7

Контрольные вопросы        7

Оборудование и материалы        7

Методические указания        7

Признаки плесневых грибов        7

Грибы делятся на классы.        8

Краткий ключ для определения плесневых грибов.        8

Тема 3. КУЛЬТИВИРОВАНИЕ МИКРООРГАНИЗМОВ        12

Контрольные вопросы        12

Оборудование        12

Методические указания        12

Тема 4. КОЛИЧЕСТВЕННЫЙ УЧЕТ БАКТЕРИЙ В РАЗЛИЧНЫХ СУБСТРАТАХ.        16

Контрольные вопросы        16

Оборудование и материалы (на одно место)        16

Посев бактерий почвы.        16

Посев бактерий воды.        17

Посев бактерий воздуха.        17

3 х 100 = 300 бактерий        18

Тема  5.  КУЛЬТИВИРОВШЕ АЭРОБОВ И АНАЭРОБОВ        18

Контрольные вопросы        18

Оборудование и материалы (на I рабочее место)        18

Методические указания        18

Ход работы        19

Тема 6. ВЛИЯНИЕ УЛЬТРАФИОЛЕТОВЫХ ЛУЧЕЙ НА МИКРООРГАНИЗМЫ        19

Контрольные вопросы        19

Оборудование        19

Методические указания        19

Ход работы        20

Тема 7. ВЛИЯНИЕ ТЕМПЕРАТУРЫ НА МИКРООРГАНИЗМЫ        21

Контрольные вопросы        21

Оборудование        21

методические указания        21

Ход работы        21

Тема 8. ВЛИЯНИЕ АНТИБИОТИКОВ И ФИТОНЦИДОВ НА МИКРООРГАНИЗМЫ        22

Контрольные вопросы        22

Оборудование        22

Методические указания        22

Ход работы        22

Тема 9. ВЫДЕЛЕНИЕ И ИЗУЧЕНИЕ ЧИСТЫХ КУЛЬТУР МИКРООРГАНИЗМОВ        23

Контрольные вопросы        23

Занятие 1.Выращивание изолированных колоний.        23

Оборудование        23

Методические указания        23

Ход работы        23

Занятие 2. Изучение колоний и получение чистых культур.        24

Оборудование        24

Методические указания        24

Ход работы        25

Занятие 3.  Определение чистоты выделенных культур и изучение их биохимических свойств.        25

Оборудование        25

Методические указания        25

Ход работы        26

Задание 4. Определение биохимических свойств и вида выделенных культур.        26

Оборудование        26

Методические указания        26

Ход работы        27

Тема 10. МЕТОДЫ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ МОЛОКА        28

Контрольные вопросы        28

Оборудование и материалы (на одно рабочее место)        28

Методические указания        28

Метод посева молока  на МПА в чашках Петри.        28

Проба на редуктазу        29

Определение кислотности молока титрометрическим методом.        29

Тема 11. МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ КОЛИ-ТИТРА ВОДЫ И МОЛОКА        30

Контрольные вопросы        30

Оборудование и материалы        30

Методические указания        30

Порядок исследования воды:        31

Порядок исследования молока.        31

Терминологический диктант        31

Вопросы для текущего контроля знаний        33

ТЕМА: МОРФОЛОГИЯ ГРИБОВ        34

ТЕМА: КУЛЬТИВИРОВАНИЕ        34

ТЕМА: МЕТОДЫ ВЫДЕЛЕНИЯ        35

ТЕМА: ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПАТОГЕННОСТИ МИКРОБОВ.        37

ТЕМА: РЕАКЦИЯ ИММУНИТЕТА        37

ЗАДАНИЯ        39

Вопросы к зачету по общей микробиологии        42

Тема I. Общая бактериологическая техника

Контрольные вопросы

1.Микроскоп, его устройство, иммерсионная система.

2.Основные правила работы с микроскопом.

3.Техника работы с бактериологической петлей, бактериологической  пробиркой, спиртовкой.

4.Техника приготовления мазка-препарата, фиксирование, простой метод окраски.

5.Сложный метод окраски по Граму.

6.Окраска спор по Ожешко и другими методами.

Оборудование и материалы

Микроскопы, кедровое масло, готовые окрашенные препараты (мазки), набор красок, спирт 960, дистиллированная вода, фильтровальная бумага, предметные стекла, бактериологическая петля, спиртовка, физиологический раствор, салфетки, чистые культуры.

Методические указания

Микроскоп (“микрос” – малый, “скопо” – смотрю) предназначается для рассмотрения объектов, невидимых простым глазом. увеличение светового микроскопа достигает до2000 раз.

Основные части микроскопа:

Механическая часть, куда входит штатив (башмак, колонка), предметный столик,  тубус с револьвером и система винтов. Оптическая часть включает в себя осветительный аппарат (конденсор, диафрагма), собственно оптическую часть (объектив, окуляр). Объективы делятся на  воздушно-сухие и иммерсионные (масляные). Иммерсионные объективы – между фронтальной линзой и рассматриваемым препаратом помещается капля масла. В этом случае  изображение получается наиболее четко, так как стекло, масло и линза имеют одинаковый показатель преломления света и исключается рассеивание лучей.

Чтобы определить общее увеличение микроскопа, надо умножить  увеличение объектива на увеличение окуляра.

Наибольшее увеличение светового микроскопа, используемого в нашей лаборатории, равно 1350 (15 х 90).

разрешающая способность микроскопа  - минимальное расстояние между двумя точками или штрихами, которые изображаются раздельно, равна 0,2 мкм.

Основные правила работы с микроскопом

Поставить микроскоп на стол и найти наилучшее освещение. Поместить на предметный столик и закрепить зажимами готовый фиксированный и окрашенный препарат. Рассмотреть препарат при сухих объективах и отыскать лучшее место для детального исследования. Поднять тубус микроскопа, поставить иммерсионный объектив и нанести каплю кедрового масла на препарат. Под контролем глаза сбоку погрузить в кедровое масло нижнюю фронтальную линзу иммерсионного объектива. Глядя в окуляр, медленно поднять тубус микроскопа до появления в поле зрения изучаемого объекта. Уточнить фокус с помощью макровинта. Изучить и зарисовать препарат. Поднять тубус и удалить салфеткой кедровое масло с иммерсионного объектива.

10.Поставить микроскоп в футляр или закрыть чехлом.

Техника работы с бактериологической петлей, бактериологической пробиркой, спиртовкой

Бактериологическую петлю берут в правую руку как карандаш, прогревают над пламенем спиртовки сначала вертикально, затем горизонтально до покраснения. Пробирку держат в левой руке отверстием вверх. Открывают пробирку мизинцем правой руки и держат пробку до конца работы. Отверстие пробирки должно находиться над пламенем горелки. Остуженную петлю вводят в пробирку с физиологическим раствором или культурой бактерии. Пробирку держат в левой руке так же, как карандаш, но отверстием вверх, бактериологическую пробку прижимают мизинцем правой руки и открывают пробирку и так держат пробку во время всей манипуляции. Ни в коем случае нельзя пробку класть на стол или в другое место. Берут небольшое количество физиологического раствора (или культуры бактерии) и переносят на предметное стекло. Обжигают пробирку и пробку над пламенем спиртовки, закрывают пробкой и ставят в штатив, затем готовят мазки-препараты.