При изучении механизмов устойчивости насекомых к ФОС, содержащим P=S связь, необходимо учитывать, что увеличение активности ММ может быть причиной как снижения токсичности инсектицида в результате ведущих к детоксикации химических превращений, так и ее увеличения за счет метаболической активации тиофосфата в более токсичную оксоновую форму (P=S→P=O) [29]; конечный результат чаще всего определяется наложением обоих этих процессов. Надежные данные о роли ММ в резистентности в таких случаях можно получить при проведении токсикологических испытании с использованием тионовой и оксоновой форм инсектицида, синергизируемых ингибитором ферментативной активности. Так, на резистентной популяции жука Oryzaephilus stirnamensis ППБ снижает ЛД50 фенитротиона в 40 раз, а фенитрооксона - в 34 раза [30]; следовательно, увеличение активности ММ обеспечивает в данном случае метаболическую дстоксикацию инсектицида. Pilz, Pfeiffer, Otto [31] считают возможным оценить способность паутинного клеща Teiranychus urticae превращать диметоат в диметоксон сравнением летальных доз обоих инсектицидов как на чувствительной, так и на резистентной популяциях, однако возможность участия гидролаз и трансфераз в детоксикации ФОС делает их вывод сомнительным. Действительно, летальные дозы малатиона и малооксона на клопе-наземнике Oncopeltus fasclatus находятся в соотношении 4: 1, однако их смеси с ингибитором эстераз 1-нафтил-N-пропилкарбаматом равнотоксичны [24].
Для оценки эффективности синергистического действия ингибиторов активности ферментов детоксикации используют показатель КСД {коэффициент синергистического действия), который представляет отношение среднелетальных доз инсектицида (I) в присутствии синергиста (S) и без него:
КСД = ЛД50 (I) / ЛД50 (I + S)
В рамках такого подхода Brattsten и Metcalf [32, 33] определены токсичность карбарила и синергизм с ППБ у 70 видов насекомых из разных родов и порядков. Установлено, что показатель КСД варьировал от 1 до 400, при этом не наблюдалась корреляция токсичности карбарила со значением КСД. Такие различия в чувствительности насекомых к карбарилу и вариации КСД авторами объясняются как различия в активности многофункциональных монооксигеназ, которая снижается под действием ППБ; следовательно, величина КСД должна отражать уровень активности ферментов детоксикации и изменение активности под действием ингибиторов. Однако в ряде работ соответствия между изменениями в чувствительности насекомых к инсектицидам, величиной КСД и активностью ферментов детоксикации обнаружено не было [34-36]. Пытаясь найти корреляции между ЛД50 инсектицидов и изменениями в их токсичности под влиянием ингибиторов активности ферментов, Brindley [37] для оценки вклада ферментов детоксикации (на примере монооксигеназ) предложил использовать показатель СР (синергистическая разность):
СР = ЛД50 (I) - ЛД50 (I + S)
Этот показатель, по мнению Brindley, должен отражать токсичность инсектицида в условиях, когда активность мопооксигеназ ингибируется практически полностью. При исследовании влияния ППБ на токсичность карбарила у пчелы-листорезки Megachile pacifica и у популяций клопа рода Labops экспериментальные данные, представленные в координатах ЛД50—СР, показали хорошее соответствие [37, 38]. В этих же работах был предложен еще один параметр - «процент синергизма» (%С), который должен отражать степень зависимости детоксикации конкретного инсектицида от активности определенной ферментной системы (на примере ММ):
%C = 100 [ЛД50 (I) - ЛД50 (I + S)] / ЛД50 (I)
Для возможности использования этого параметра сделано существенное допущение, а именно что ингибитор является специфическим для данной ферментной системы и практически полностью тормозит ее активность. Подобная ситуация реализуется, по-видимому, достаточно редко, и поэтому в ряде случаев применение показателя %С не позволяет правильно интерпретировать полученные результаты, что доказано на насекомых, обладающих резистентностью с заведомо установленным механизмом.
В поисках адекватного параметра для доказательства участия ферментов в резистентности. Brindley ввел несколько дополнительных параметров: «логарифм процента синергизма» (L%C), «относительный логарифм процента синергизма» (0%С) и с их помощью проанализировал собственные и литературные данные [39, 40]. Тем не менее, неоднозначность в интерпретации полученных результатов возникает и при использовании новых параметров. Это можно объяснить, с одной стороны, тем, что в большинстве случаев в основе резистентности лежит несколько, в том числе и неметаболических, механизмов, которые могут взаимно усиливать друг друга. С другой стороны, ингибиторы in vitro могут тормозить активность одновременно нескольких ферментных систем.
Правильная процедура применения ингибиторного анализа требует исключения влияния синергиста на проницаемость инсектицида через внешние покровы насекомого. Добиться этого можно двумя способами: десинхронизацией и делокализацией нанесения обоих активных ингредиентов. При изучении потенциирования пиретроидов различными синергистами против гусениц хлопковой листовой египетской совки Spodoptera littoralis Riskallah с соавт. показали [41], что КСД значимо увеличивается, если синергист и инсектицид наносить на различные участки поверхности насекомых. Поскольку большинство детоксицирующих ферментов у насекомых в имагинальной стадии развития локализованы в жировом теле и мальпигиевых сосудах брюшка [42], синергист при такой процедуре наносят на вентральную поверхность брюшка, а инсектицид - между мезо - и метатораксиальными конечностями [24]. Для гусениц при делокализации и инсектицид и синергист наносят на дорзальную поверхность, инсектицид на торакс, а синергист - на брюшко [24]. Не менее целесообразно применение контактного метода, в котором предварительно топикально обработанных синергистом насекомых помещают в сосуд, внутренняя поверхность которого покрыта тонким слоем инсектицида.
Показано, что синергистический эффект зависит также от интервала между нанесением синергиста и инсектицида. Так, Al-Badry и Knowles показали [43], что снижение скорости проникновения инсектицида при одновременном нанесении хлорпирифоса с диалкилфталатами на имаго М. domestica приводит к антагонизму, а нанесение диалкилфталата за 30 мин до инсектицида - к синергизму. Многие исследователи для устранения влияния синергиста на проницаемость инсектицида используют 0,5-4-ч (см. например [36]) или даже 16-24-ч [14] предобработку насекомого синергистом. Однако такая процедура может привести к непредсказуемым результатам. Синергистический эффект, который проявляется при одновременном нанесении ППБ и авермектина на гусениц совки Spodoptera eridania, исчезает при 2-ч предобработке ППБ [44]. Аналогичный результат получен при изучении влияния диэтилмалеата на токсичность фосфорорганических инсектицидов на М. domestica: синергистический эффект проявляется только при минимальном интервале между нанесением синергиста и инсектицида [16].
Кроме топикального и контактного в ингибиторном анализе может применяться и кишечный метод введения синергиста и инсектицида. В ряде случаев синергистический эффект можно получить только с использованием этого метода [45, 46]. Нужно отметить, что летальная доза инсектицида при кишечном методе введения значительно превышает таковую, полученную при контактном методе [46].
Одним из наиболее спорных вопросов при проведении ингибиторного анализа является определение оптимального соотношения инсектицида и синергиста (I/S). Совершенно очевидно, что оптимальной дозой синергиста будет минимальное его количество, вызывающее максимальный синергистический эффект. Такая доза (So) является асимптотической на графике зависимости смертности от количества инсектицида и синергиста (рисунок) [47].
В тех случаях, когда соотношение I/S выше оптимума, наносимый синергист будет не полностью блокировать активность фермента, ответственного за детоксикацию инсектицида; если же это отношение ниже оптимального, синергист может препятствовать или задерживать проникновение инсектицида.
На практике многие исследователи, чтобы избежать процедуры определения So, считают возможным применять синергист в фиксированных максимально сублетальных концентрациях Smax, исключая при этом влияние синергиста на проницаемость инсектицида делокализацией или десинхронизацией их нанесения [23, 48]. Однако даже Smas синергиста не может обеспечить полного подавления активности ферментов детоксикации: так, в этих условиях метаболизм байгона в присутствии ППБ у резистентной популяции мух М. domestica снижается только на 16% [49]. Большие дозы синергиста могут, вероятно, оказать влияние на транспорт инсектицида через гемолимфу, либо неселективно ингибировать активность ферментов детоксикации: известно, что ППБ in vitro в концентрациях 10-4 М ингибирует активность неспецифических эстераз из брюшек М. domestica примерно в той же степени, что и бутифос [18]. Кроме того, ППБ, в сублетальных концентрациях проявляющий антифидантные свойства [50], способен вызвать синергистический эффект, не связанный с метаболизмом инсектицидов [51]. Таким образом, сублетальная доза синергиста означает, по-видимому, не полное или даже максимально возможное подавление активности ферментов детоксикации, а, скорее всего, баланс во влиянии синергиста на все возможные факторы, определяющие токсичность инсектицида для насекомых. Доказательство полного ингибирования активности ферментной системы может быть корректным лишь в том случае, когда оно подкреплено данными об отсутствии метаболизма инсектицида.
Значительное число исследователей при проведении ингибиторного анализа предпочитают использовать определенные фиксированные соотношения I/S (обычно в пределах 1:1-1:10) [19, 46, 52]. Этот метод, применяемый в основном со средне - и низкотоксичными инсектицидами, обладает практически теми же достоинствами и недостатками, что и приведенный выше; для высокотоксичных инсектицидов неполное ингибирование фермента компенсируется исключением побочных механизмов. Часто различия в методике анализа совершенно непринципиальны: так, Smax ППБ для колорадского жука Leptinotarsa decetnlineata (100 мг/г) [40] примерно равно значению So с перметрином и соответствует I/S=l:4 [53]. Следует заметить, что эти нюансы могут быть значимы лишь в тех случаях, когда роль ингибируемых ферментов в устойчивости вредителя к инсектициду относительно невелика и КСД не превышает 5. Если же увеличение активности ферментов детоксикации приводит к достаточно высокому уровню резистентности, то синергистическое действие хорошо проявляется даже при обработке насекомых растворами смеси инсектицида с синергистом [28].
|
Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 |


