Обучение медицинского персонала технике взятия крови с помощью вакуумных систем обязательно и должно находиться под контролем врачей клинической лабораторной диагностики. Наряду с известными производителями систем забора крови «Becton Dickinson», США; «Greiner Bio One GmbH», Австрия; «Terumo Europe N. V.», Бельгия; «Sarstedt AG&Co», Германия и др. предлагают свою продукцию более десяти новых компаний, включая Китай.
Рис. 5. Формализованный бланк направления на клинико-лабораторные исследования в ИОККДЦ.
Характеристика вакуумных контейнеров для взятия образца крови
Маркировка вакуумного контейнера для взятия крови
По статистике неправильный выбор вакуумного контейнера лишь в 12,2 % случаев становится причиной ошибок в диагностике, в отличие от числа ошибок, которые возможны при неправильной идентификации образца. Тем не менее, проблема останется, если не уделить ей должного внимания. Практически все руководство к использованию вакуумного контейнера представлено на этикетке, сопровождающей вакуумную систему любой фирмы. В качестве примера на рисунке 6 представлена этикетка вакуумной системы типа «вакуэтт» австрийской компании «Greiner».
Рис. 6. Маркировка вакуумной пробирки.
Для того чтобы быть уверенным в правильности выполнения исследования, важны следующие характеристики образца:
1. Кровь должна наполнять контейнер до риски наполнения (это происходит автоматически, когда заполняется вакуум в пробирке). По истечении срока годности пробирки, в неё попадает воздух, и она не полностью заполняется кровью, что сказывается на соотношении кровь/антикоагулянт;
2. Кровь должна забираться в пробирку с теми наполнителями и реагентами, которые предопределены для выполнения анализа тех или иных аналитов.
3.Если пробирка имеет гелевый наполнитель, очень важна маркировка «Запрет на повторное центрифугирование».
Основные условия, которым соответствует забор крови в вакуумные контейнеры при правильном их использовании:
§ Отсутствие тромбов.
§ Отсутствие гемолиза.
§ Правильное соотношение крови и реагента.
§ Отсутствие контаминации образца.
Виды вакуумных контейнеров для взятия крови
Взятие крови осуществляется в вакуумные контейнеры, строго соответствующие заказанным исследованиям, отмеченным в направлении. Вакуумные пробирки являются значительно более сложными устройствами, чем обычно представляет персонал клинических лабораторий. Включая многочисленные реагенты (добавки, наполнители), стеклянные или пластмассовые пробирки влияют на формирование сгустка, на взаимодействие с поверхностью пробирок, могут выделять вещества в образец или адсорбировать аналиты из образца.
При выборе вакуумных систем важно учитывать целый ряд факторов, таких как вид материала, из которого изготовлены пробирки, и виды добавок. Пластмассовые пробирки обладают рядом преимуществ, по сравнению со стеклянными. Они дешевле, не бьются, имеют меньший вес, лучше подходят для автоматических систем обработки образцов крови и удобны при утилизации. А выбор добавок важен для адекватности выполнения заказанного исследования.
Виды наполнителей вакуумных контейнеров для взятия крови
§ Для исследования сыворотки - с активатором свертывания, с тромбином, с активатором свертывания и разделительным гелем.
§ Для исследования плазмы - с литий-гепарином, с натрий-гепарином, с аммоний-гепарином, с литий-гепарином и разделительным гелем.
§ Для исследования цельной крови - с солями ЭДТА (К2-ЭДТА, К3-ЭДТА).
§ Для исследования плазмы - с К2-ЭДТА и разделительным гелем.
§ Для выделения мононуклеаров - с натрий-гепарином, цитратом натрия, с раствором фи-колл-гипак и разделительным гелем.
§ Для исследования свертывающей системы - с раствором цитрата натрия (3,2 и 3,8 %), с раствором СТАD.
§ Для исследования гормонов - с ингибиторами протеолитических ферментов.
§ Для исследования глюкозы - с ингибитором гликолиза и антикоагулянтом.
§ Для определения групп крови - с раствором ACD.
§ Для исследования микроэлементом - без наполнителей, с натрий-гепарином.
§ Для исследования СОЭ - с раствором цитрата натрия.
Порядок взятия крови в вакуумные системы
Ещё одним важным моментом при работе с разными типами пробирок является порядок взятия крови на исследования, показанный на рисунке 7.
Пробирки для постановки теста на стерильность крови всегда должны быть первыми. Пробирки для коагулологии могут быть первыми при взятии крови только для рутинных тестов (протромбиновое время и АЧТВ).
Всегда выполняйте эту последовательность взятия крови в пробирки.
Рис. 7. Рекомендации по порядку взятия крови при работе с пробирками типа «Вакуэтт».
Качество образца для анализа естественно зависит от всех выше представленных факторов, но есть и ещё ряд процедур, которые оказывают на качество образца не меньшее, а может быть и большее влияние. К таким процедурам относятся:
§ условия взятия образца;
§ условия транспортировки образца;
§ условия хранения образца.
Правила взятия образца крови:
§ Никогда не следует брать кровь из сосуда, расположенного проксимально месту инфузии. Пробу следует брать из другой руки, в вену которой не проводилось вливание лекарственных препаратов.
§ Если пробы берут из венозных или артериальных инфузионных катетеров, канюлю следует промыть изотоническим солевым раствором. Прежде чем взять пробу, следует выбросить первые 5 мл крови, полученной из катетера.
§ Взятию пробы должна предшествовать фаза отдыха. Психический стресс приводит к увеличению концентрации ряда гормонов, альбумина, фибриногена, глюкозы, инсулина, лактата и холестерина.
§ Положение тела, время дня и длительность наложения жгута должны быть одинаковыми. Положение тела должно быть сидя или лежа (повышение некоторых аналитов при перемещении из положения лежа в положение стоя).
§ Следует избегать повторного сжимания и разжимания кулака.
§ Длительность наложения жгута не должна быть более одной минуты.
§ Рекомендуется брать вдвое больше крови, чем нужно для анализа.
(В ИДЦ эти условия введены в ЛИС и контролируются автоматически).
§ Взятие крови с использованием ЭДТА и последующее быстрое замораживание плазмы является адекватным способом сохранения нестабильных гормонов белковой природы, таких как АКТГ, например.
§ Если используется плазма, обработанная лития гепарином, натрия цитратом или натрия фторидом/калия оксалатом, полученные значения некоторых аналитов могут быть снижены приблизительно на 25 %. Это необходимо учитывать при выборе вакуумных контейнеров. Желательно пользоваться вакуумными контейнерами одних производителей и с одинаковыми наполнителями во избежание интерференции результатов исследования.
§ Взятие проб должно выполняться через 12 часов после последнего приема пищи.
§ Взятие образцов рекомендуется производить при сниженной физической активности.
§ Взятие проб должно выполняться до проведения диагностических и лечебных процедур, способных оказать влияние на результаты теста.
§ В случае проведения лекарственного мониторинга следует учитывать наличие пика концентрации после введения лекарственного препарата и фазу устойчивого состояния перед введением следующей дозы препарата.
§ Анализ пробы, взятой не во время, может быть хуже, чем отсутствие анализа вообще!!!! Проба, результат анализа которой поступает слишком поздно, взята напрасно!!!!
§ Интервал времени от момента взятия пробы крови до ее центрифугирования не должен быть меньше 30 минут и больше 2 часов. Всегда следует отмечать точное время взятия пробы в соответствующих документах. В ИДЦ эти условия введены в ЛИС и контролируются автоматически.
§ Кровь с антикоагулянтами нужно немедленно центрифугировать (плазма), а без антикоагулянтов оставить на 30-45 мин, а затем центрифугировать (сыворотка).
§ Взятие крови производится в пункте дистанционного забора натощак, утром в период с 07.00 до 10.00 часов, дипломированной процедурной медсестрой, получившей подготовку по работе с вакуумными системами забора крови в ИДЦ. Кровь на анализы, для которых время суток не имеет значения, например, ПЦР - анализ, берется до 15 часов
§ При использовании пробирок с разделительным гелем для сыворотки или плазмы необходимо исключить повторное центрифугирование после хранения проб в холодильнике. Это ведет к заметному повышению концентрации компонентов клеток (калий, неорганический фосфат, ЛДГ).
§ Для определения разных аналитов необходимо индивидуально подходить к выбору образца для анализа.
Преимущества плазмы перед сывороткой
1.Экономия времени (исключается ожидание свертывания крови, время центрифугирования может быть сокращено за счет увеличения скорости вращения ротора).
2. Больший выход материала для исследования (из цельной крови может быть получено плазмы на 15-20 % больше, чем сыворотки).
3. Практически отсутствует интерференция, связанная с последующим свертыванием (в сыворотке может произойти свертывание после центрифугирования, чего не происходит в плазме)
4. Результаты исследования плазмы более точно отражают состояние in vivo, чем анализ сыворотки.
5. Меньший риск образования гемолиза и тромбоцитолиза (у здоровых людей содержание в плазме свободного гемоглобина почти в 10 раз меньше, чем в сыворотке). В плазме тромбоциты остаются интактными in vitro, отсутствует ложная гиперкалиемия, как в сыворотке.
Недостатки плазмы по отношению к сыворотке:
Картина разделения белков при электрофорезе будет изменена. Фибриноген появляется в виде пика в районе расположения гамма-глобулинов и может маскировать М-градиент.
Метод-зависимая интерференция. Антикоагулянты в качестве потенциальных комплексообразующих веществ и ингибиторов ферментов могут вызвать метод-зависимую интерференцию. Каждая новая методика должна быть изучена на предмет возможности интерференции антикоагулянта (см. информацию в инструкциях по тестам).
|
Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 |
