Рис. 6. Очаговая алопеция у потомства самок мышей, которым на 7-ые сутки беременности вводили Кон А или активированные клетки селезёнки (слева). Справа – мышь контрольной группы.

Выявленные отличия гистологического строения кожи потомства контрольных и опытных самок указывали на то, что, во-первых, изменениям подвергаются как производные эктодермы, так и мезодермы, во-вторых, изменения развиваются как во внутриутробном периоде развития, так и после рождения особи. Известно, что формирование волосяных фолликулов и сальных желёз происходит во внутриутробном периоде развития [Peters E., 2002], следовательно, уменьшение их численности является нарушением развития кожной эктодермы в пренатальном периоде. Особенности строения кожи позволяют предположить, что в их основе лежало нарушение Wnt-сигналинга, приведшее к уменьшению формирования волосяных фолликулов и дермы, так как активация Wnt-сигналинга вызывает формирование из эктодермы кожного эпителия и способствует ингибированию костных морфогенетических белков, препятствующих развитию волосяных фолликулов [Jung H. et al., 1998; Noramly S. et al., 1998; ; Petiot A. et al., 2003; Atit R., 2006]. Следовательно, воздействие избыточного количества цитокинов на эмбрион способно приводить к нарушению активации транскрипционных факторов.

Через 2 недели у животных начиналось восстановление шерстного покрова. В дальнейшем в коже мышей опытной и контрольной групп наблюдались сходные возрастные изменения: уменьшение толщины мальпигиева слоя эпидермиса к 2,5 месяцам, увеличение толщины дермы, усиление ШИК-реакции аморфного вещества межклеточного матрикса, а также уменьшение количества клеток в дерме, в том числе и выявляемых тучных клеток.

НЕ нашли? Не то? Что вы ищете?

Табл. 8

Морфологические характеристики кожи и её производных самок, перенесших иммуностимулирующее воздействие в ранние сроки беременности, и мышей контрольной группы в различные периоды постнатального развития (M±m)

Возраст

Показатели

17 суток

1,5 месяца

2,5месяца

Толщина мальпигиева слоя, мкм

Контрольная группа

Опытная группа

12,60±1,06

17,48±0,45*

19,69±0,64#

16,17±1,07*

15,97±0,75#

10,56±0,65*#

Толщина дермы, мкм

Контрольная группа

Опытная группа

211,47±7,24

222,45±6,11

501,92±13,46#

383,45±16,52*#

307,25±6,82#

162,34±9,03*#

Количество волосяных фолликулов в мм2 кожи

Контрольная группа

Опытная группа

255,58±6,13

163,58±13,42*

130,49±11,93#

92,92±11,61#

122,05±10,44

86,40±2,10*

Количество сальных желез в мм2 кожи

Контрольная группа

Опытная группа

92,92±5,74

64,13±7,89*

45,13±3,11#

46,95±7,50

56,41±9,24

43,28±7,99

Доля волосяных фолликулов с сальными железами, %

Контрольная группа

Опытная группа

36,37±2,13

39,26±4,79

34,58±3,43

50,63±1,00#

46,72±6,99

50,09±6,27

Доля волосяных фолликулов, содержащих пуховые волосы, %

Контрольная группа

Опытная группа

65,72±4,20

3,72±0,64*

86,67±7,31#

96,00±2,64#

88,17±2,70

83,00±0,88#

Количество клеток в мм2 среза дермы

Контрольная группа

Опытная группа

7049,51

±1005,25

4272,67

±293,55*

2353,33

±801,44#

2930,0±250,0#

1923,77±233,08

3467,11

±450,16*

Примечание: * - статистически значимые отличия от контрольной группы, # - статистически значимые отличия от предыдущего срока исследования.

При исследовании гистологических препаратов кожи спины мышей опытной группы в возрасте 1,5 месяцев толщина эпидермиса была меньше, чем у мышей контрольной группы (табл. 8). По сравнению с предыдущим сроком исследования базальная мембрана на всём протяжении была чётко выражена, характеризовалась резко положительной ШИК-реакцией. Толщина дермы меньше, чем у животных контрольной группы аналогичного возраста (табл. 8). Гиподерма умеренно развита. В дерме значительно увеличено количество ШИК-положительного аморфного вещества межклеточного матрикса.

Пространственная ориентация волокон в дерме не отличалась от контрольной группы. Количество волосяных фолликулов в мм2 площади дермы было меньше, чем у мышей контрольной группы (табл. 8). Большинство волосяных фолликулов содержало пуховые волосы, но в отличие от контрольной группы фолликулов, содержащих два волоса, было крайне мало. Количество сальных желёз существенно не изменено по сравнению с предыдущим сроком исследования (табл. 8). Количество клеток в дерме также уменьшено и существенно не отличалось от значений контрольной группы (табл. 8). Нейтрофилы в дерме встречали редко. Численность популяции тучных клеток была относительно стабильна. По цитофизиологическим характеристикам тучные клетки не отличались от значений контрольной группы (табл. 9).

Табл. 9

Цитофизиологические характеристики тучных клеток кожи потомства самок, перенесших иммуностимулирующее воздействие в ранние сроки беременности, и мышей контрольной группы в различные сроки постнатального развития (M±m)

Возраст

Показатели

17 суток

1,5 месяца

2,5 месяца

Количество тучных клеток в мм2 среза дермы

Контрольная группа

Опытная группа:

участок с волосяным покровом

участок без волосяного покрова

189,67±13,60

153,87±11,21*

190,43±16,77

124,42±2,84

157,23±17,74*

170,89±15,51

149,62±17,77

СГК тучных клеток

Контрольная группа

Опытная группа:

участок с волосяным покровом

участок без волосяного покрова

1,93±0,02

1,89±0,02

2,03±0,02

1,89±0,06

2,02±0,02*

2,09±0,05

1,95±0,07

ИД тучных клеток

Контрольная группа

Опытная группа:

участок с волосяным покровом

участок без волосяного покрова

49,51±5,09

30,56±4,08*

17,66±1,89*

28,98±6,34

38,89±5,97

24,24±3,75

35,76±2,01

Примечание: * - статистически значимые отличия от контрольной группы.

Исследование кожи спины мышей опытной группы в возрасте 2,5 месяцев выявило меньшую толщину мальпигиевого слоя эпидермиса и дермы по сравнению со значениями мышей контрольной группы (табл. 8). Базальная мембрана характеризовалась хорошо выраженной ШИК-положительной реакцией, как и в предыдущем сроке исследования. Волокна в дерме располагались преимущественно параллельно поверхности кожи. Количество клеток превышало значения контрольной группы. Количество тучных клеток не изменено и соответствовало значениям контрольной группы. Насыщенность тучных клеток секреторным материалом была высокая. Выделение секреторных гранул наблюдали у трети клеток (табл. 8). Большинство волосяных фолликулов содержали пуховые волосы, но фолликулов, содержащих два волоса, было крайне мало. Существенных отличий в строении гиподермы и сосудистого русла не наблюдали.

Таким образом, у потомства самок мышей, подвергшихся однократной иммуностимуляции в ранние сроки беременности, наблюдали замедление постнатального развития кожи.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенное исследование впервые выявило связь между реакциями иммунной системы матери в ранние сроки беременности до формирования зачатков органов иммунной системы эмбриона и развитием этих органов и кожи потомства и показало, что однократное иммуностимулирующее воздействие способно вызывать изменения развития органогенеза потомства, длительно наблюдающиеся в постнатальном периоде. Анализ полученных данных показывает, что повышенная пролиферация и секреция цитокинов вследствие активации лимфоцитов Кон А на 7-ые сутки беременности усиливает физиологические изменения в органах иммунной системы беременной самки оказывает влияние на развивающийся эмбрион. Цитокиновый шторм влияет на дифференцировку зародышевых листков, так как изменения постнатального развития наблюдаются у производных энтодермы, мезенхимы зародышевой мезодермы, дерматомов сомитов, а у производных эктодермы (волосяные фолликулы, сальные железы) выявлены также и изменения пренатального развития.

Цитокиновая атака до начала закладки тимуса и селезёнки значительно изменяет последующий морфогенез этих органов. Из центральных органов иммунной системы тимус начинает формироваться первым. Воздействие цитокинов вызывает изменение темпов его постнатального развития. В норме в постнатальном развитии тимуса мыши выделяется три этапа: развития органа, расцвета и инволюции (рис. 7). В первые недели после рождения особи в тимусе происходили более активные процессы пролиферации, дифференцировки и миграции Т-клеток в периферические органы иммунной системы. Затем происходил дисбаланс между процессами пролиферации и дифференцировки за счёт снижения темпов последней. В постпубертатном периоде снижалась пролиферативная активность, медленно дифференцирующиеся клетки скапливались в тимусе, вызывая увеличение доли коркового вещества. Таким образом, наблюдалось замедление морфогенетических процессов, атрофические изменения не развивались (рис. 7).

В постнатальном развитии селезёнки отмечаются изменения, обусловленные пренатальным воздействием, но также и прослеживаются последствия изменений морфогенеза тимуса. Постнатальное развитие селезёнки мыши протекает в три этапа: формирование лимфатических узелков и ПАЛМ и угасание кроветворения в красной пульпе; увеличение белой пульпы и расширение маргинальной зоны; уменьшение доли лимфоидных образований и сужение маргинальной зоны (рис. 7). У потомства самок, перенесших цитокиновый шторм на ранних сроках беременности, в препубертатном периоде происходило более активное заселение белой пульпы Т - и В-клетками, но значительно отставало формирование маргинальной зоны и протекали активные процессы кроветворения. Затем снижалась миграция дифференцированных Т - и В-клеток в селезёнку, замедлялось увеличение белой пульпы и маргинальной зоны. А в постпубертатном периоде их развитие достигало максимума (рис. 7). Таким образом, постнатальное развитие селезёнки как органа иммунной системы было замедлено.

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10