Материалы конференции (стр. 25 )

По данным разных авторов, микобактерии туберкулёза обладают высокой устойчивостью к воздействию различных физических и химических факторов вследствие особенностей строения клеточной стенки и высокого содержания в ней липидов, восков (А, Б, Д) [1].

Анализ литературных данных свидетельствует о том, что возбудители туберкулёза, находясь в объектах внешней среды, могут сохранять свою жизнеспособность и патогенность длительное время, но в разных климатических зонах их устойчивость колеблется в широких пределах. Так, в условиях Сибири возбудители туберкулёза бычьего вида сохраняет свою жизнеспособность и патогенность в течение 12 месяцев (на поверхности почвы), 27 месяцев – на глубине 5 см и 36 месяцев – на глубине 10 и 20 см.[4]. при изучении выживаемости микобактерий в дерново0подзолистой супесчаной почве средней полосы России установил, что M. tuberculosis сохраняют жизнеспособность до 3 месяцев ( сообщает, что данный возбудитель на поверхности почвы и других объектов сохранял жизнедеятельность не более нескольких дней [2]), M. bovis – до 5 месяцев, а M. avium – до 18 месяцев [3]. Что касается устойчивости возбудителей туберкулёза в объектах внешней среды в зонах Степи, Лесостепи и Полесья Украины, то этот вопрос остаётся не полностью изученным.

В связи с этим, целью наших исследований явилось изучение сроков устойчивости M. avium и атипичных микобактерий в разных климатических зонах Украины. Полученные данные позволят усовершенствовать систему противотуберкулёзных и ветеринарно-санитарных мероприятий по санации.

Материалы и методы. Для проведения исследований были отобраны пробы подстилки, силоса и мочи в ЧСП «Нива» Волчанского района в количестве не менее 0.5 кг. Исследования проводили в двух модификациях: одна половина отобранных проб с целью уничтожения банальной микрофлоры была автоклавирована при режиме 132оС, 2 атмосферы в течение 60 минут. Остальная половина объектов оставалась в нативном виде.

Для контаминации использовали двух-четырёх недельные культуры патогенных микобактерий птичьего вида (шт. №61) и атипичных микобактерий видов: M. intracellularae, M. scrofulaceum, M. Fortuitum, выращенные на картофельной питательной среде Павловского. Названные культуры микобактерий гомогенизировали в стерильном физиологическом растворе из расчета 1 мг бактериальной массы на 1 см3 раствора. Полученной взвесью контаминировали объекты из расчета 1 см3 взвеси на 1 г пробы. После контаминации пробы сохраняли при комнатной температуре, умеренной влажности, на рассеянном солнечном свету. Через 30, 60, 90, 120 дней из заложенных тест-объектов отбирали пробы, которые центрифугировали при режиме 1-1.5 тыс. об. / мин. в течение 20-30 минут. Нативные пробы, которые не подвергали автоклавированию, обрабатывали 10-18% раствором серной кислоты при экспозиции 20-30 минут, а обеззараженные объекты исследовали этими же методами без обработки кислотой и с обработкой 5% раствором серной кислоты с экспозицией 20 минут. Отцентрифугированный осадок после действия серной кислоты дважды отмывали стерильным физиологическим раствором, а полученный ресуспензированный в стерильном физиологическом растворе осадок высевали на поверхность питательной среды для культивирования микобактерий. Пробирки с посевами культивировали в термостате при температуре 37оС. Учёт роста выделенных колоний проводили через каждые 5-7 дней на протяжении трёх месяцев. Из выращенных колоний микроорганизмов готовили мазки, окрашивали их по методу Циля-Нильсена и подвергали световой микроскопии. Эталоном служили референтные культуры микобактерий.

Результаты исследований. Сроки выживаемости микобактерий в подстилке, силосе и моче определяли в течение 120 дней.

Исследования показали, что за данный промежуток времени микобактерии не утрачивают жизнеспособности, но изменяют свои свойства. Так, начиная с 60-90-х суток пребывания микобактерий в тест объектах, высеваемость их постепенно уменьшается и к 120-му составляет до 10 колоний, что свидетельствует о снижении жизнеспособности M. avium и атипичных микобактерий в процессе пребывания их в силосе и моче.

Табл. 2 Сравнительная таблица интенсивности роста колоний микобактерий, выделенных из тест-объектов через 30, 60, 90 и 120 дней

Культуры микобактерий, заложенные в тест – объекты

Тест-объект

Стерильность

M. avium

M. intracellularae

M. scrofulaceum

M. fortuitum

Интенсивность роста (в крестах) колоний микобактерий, выделенных из тест – объектов на 30, 60, 90 и 120-е сутки

30

60

90

120

30

60

90

120

30

60

90

120

30

60

90

120

Подстилка

ст

_

_

_

_

_

_

_

_

#

#

#

#

#

#

#

#

нс

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

_

Моча

ст

_

_

_

_

_

_

_

_

#

+++

++

+

#

#

#

++

нс

#

#

++

+

#

++

++

+

#

++

+

+

#

#

++

++

Силос

ст

_

_

_

_

_

_

_

_

#

+++

++

+

#

#

#

+

нс

#

++

++

+

#

#

++

+

#

+

+

±

#

++

+

+

«+» – рост на питательной среде до 10 колоний; «++» – от 10 до 50 колоний; «+++» – от 50 до 100 колоний; «#» – сплошной рост колоний микобактерий; «-» - рост на питательной среде не выявлен

Что касается подстилки, автоклавированной перед контаминацией, то интенсивность роста на питательной среде не изменяется, однако сроки появления первых колоний у М. scrofulaceum увеличиваются в два раза, что видно из таблицы.

Выводы.

avium, M. Scrofulaceum, M. Intracellularae и M. fortuitum в подстилке, силосе и моче составляет более 120 дней (срок исследования).

В силосе и моче жизнеспособность микобактерий постепенно уменьшается и изменяются их морфологические и культуральные свойства.

Стерильная подстилка является благоприятной средой для выживания микобактерий.

Использованные источники

1. Вейсфейлер и изменчивость микобактерий туберкулёза и атипичных микобактерий. – Будапешт: Издательство Академии наук Венгрии, 1975. – 335 с.

2. Драбкина туберкулёза. – М.: Медгиз, 1963. – 254 с.

3. Козлов свойства микобактерий различных видов, выделенных из почвы // Проблемы туберкулёза. – 1982. – № 3. – С. 65-68.

4. Прокофьева микобактерий туберкулёза в почве и методы её обеззараживания в условиях Якутии // Туберкулёз крупного рогатого скота и меры борьбы с ним / Сб. науч. тр. – Новосибирск, 1986. – С. 124-128.

5. Туберкулёз животных и меры борьбы с ним / , , и др. – К.: Урожай, 1990. – 304 с.

УДК 619:616.33-08:615.243

ЛЕЧЕНИЕ АЦЕТАТАМИ НАТРИЯ И КАЛЬЦИЯ АЦИДОЗА РУБЦА

, А. Ч. Ли

БелГСХА им. , г. Белгород, Россия

ФГУП «Белгородское» РАСХН, г. Белгород, Россия

ГК «Агро-Белогорье», г. Белгород, Россия

Ацидоз рубца характеризуется накоплением в рубце молочной кислоты, снижением рН рубцового содержимого до 4 – 6 и ниже, различными нарушениями функций преджелудков и ухудшением общего состояния здоровья (1).

Практически животные всех хозяйств в зимне-весенний период в той или иной степени страдают ацидозом рубца. Степень выраженности болезни зависит в основном от удельного веса в рационе силоса, жома, а также зерносмесей (2).

В настоящее время в связи с повсеместным переводом молочного животноводства на индустриальную технологию заболевание коров ацидозом рубца наблюдается в течение круглого года.

Для лечения ацидоза рубца наиболее часто используют натрия гидрокарбонат по 150 г с 500-1000 мл воды 2 раза в день в течение 2-3 дней и более (1). Однако данный способ недостаточно эффективен и имеет побочное действие в виде тимпании рубца.

В связи с этим имеется необходимость в поиске новых лечебных средств, обладающих более выраженным лечебным действием и не вызывающих побочные явления. Для этого мы изучили лечебную эффективность перорального применения естественных рубцовых метаболитов натрия ацетата и кальция ацетата. Исследования проведены соответственно на 60 и 55 коровах с ацидозом рубца. При этом все животные были разделены на 5 групп (контрольная и 4 опытных) соответственно по 12 и 11 голов в каждой.

Коровам контрольных групп перорально применяли натрия гидрокарбонат по 150 г на голову два раза в день, коровам 1-ой, 2-ой, 3-ей и 4-ой опытных групп – натрия ацетата соответственно по 275 г, 330 г, 385 г и 440 г, а кальция ацетата соответственно по 150 г, 200 г, 250 г и 300 г, на голову 2 раза в день. Каждые разовые дозы натрия гидрокарбоната (для коров контрольных групп), натрия ацетата и кальция ацетата (для коров опытных групп) непосредственно перед применением растворяли в 2 л теплой воды.