Через один час приоткрыть пробку и извлечь из колб материал путем быстрого выдергивания проволоки с листьями. Немедленно закрыть пробку, изолировав верх трубочки фольгой. Перед титрованием добавить в каждую колбу по 2-3 капли фенолфталеина: раствор окрашивается в малиновый цвет. Оттитровать свободный барит 0,1 н НСl. При этом первыми оттитровывают контрольные колбы. Вывести среднее, а затем оттитровать опытные колбы. Титровать растворы следует осторожно до обесцвечивания.
Результаты записать в таблицу (на доске и в тетради).
Исследуемый объект
Исследуемый объект | Навеска, г | Время | Продолжительность опыта, мин | Интенсивность дыхания, мг СО2,г/ч | |
начало опыта | конец опыта | ||||
Интенсивность дыхания рассчитать по формуле:
мг СО2 /г/ч ,
где а – количество 0,1 и НСl, израсходованное на титрование контрольных колб, мл;
b – количество 0,1 и НСl, израсходованное на титрование опытной колбы, мл;
2,2 – количество СО2, соответствующее 1 мл 0,1 н НСl, мг;
р – навеска листьев, г;
t – продолжительность опыта, мин;
60 – коэффициент для перевода минут в час.
В выводах указать, какие растения из взятых дышат сильнее. Почему?
Разведение реактивов
0,1 н НCl. Используется фиксанал или берется 8,2 мл концентрированной НСl плотностью 1,19, доводится до 1 л дистиллированной водой.
0,1 н Ва(ОН)2 • 8Н2О. Берется 15,77 г щелочи, растворяется в дистиллированной воде и доводится до 1 л.
Объем растворов можно уменьшить в зависимости от цели опытов. Растворы не рекомендуется готовить заранее.
Работа № 4. Определение устойчивости растений
к высоким температурам
Температура – один из основных экологических факторов на Земле. Она меняется в широком диапазоне в зависимости от природных зон и конкретных условий (вулканическая деятельность, горячие источники, выброс тепла энергетическими установками и др.). Разные типы растений по-разному относятся к этому фактору. Так, С4 растения выдерживают более высокие температуры, чем С3 растения. В пределах последней группы также имеются большие различия.
Работа проводится с группой древесных растений различных видов, встречающихся в озеленительных посадках данной местности. Это дает возможность построить ряд древесных видов по степени устойчивости к высоким температурам, выявить наиболее устойчивые из них, что очень важно для создания озеленительных зон предприятий, уличных посадок в районах с жарким летом. В связи с этим студентам дается задание принести по 5-6 свежих листьев от различных древесных пород, обернув концы черешков в мокрую вату, фольгу, а все листья поместив в целлофан. В крайнем случае можно использовать комнатные растения.
Принцип метода предложен и основан на установлении порога повреждения живых клеток от экстремальных температур. Если подвергнуть листья действию высокой температуры, а затем погрузить в слабый раствор соляной кислоты, то поврежденные и мертвые клетки побуреют вследствие свободного проникновения в них кислоты, которая вызовет превращение хлорофилла в феофитин (бурого цвета), тогда как неповрежденные клетки останутся зелеными. У растений, имеющих кислый клеточный сок, феофитинизация может произойти и без обработки соляной кислотой, т. к. при нарушении полупроницаемости тонопласта органические кислоты проникают из клеточного сока в цитоплазму и вытесняют магний из молекулы хлорофилла.
Данную работу лучше проводить в первой половине вегетации, когда не наблюдается естественного разрушения хлорофилла у древесных пород.
Оборудование, реактивы, материалы
1) водяная баня; 2) термометр; 3) пинцет; 4) чашки Петри (5 шт.);
5) стакан с водой; 6) тонкая проволока; 7) карандаш по стеклу; 8) 0,2 н раствор соляной кислоты; 9) свежие листья древесных растений.
В период вынужденного покоя (февраль – апрель) их можно получить путем прогрева веток в теплой воде и дальнейшего распускания листьев в воде комнатной температуры. Можно также использовать набор листьев разных видов комнатных растений.
Ход работы
Перед занятием нагреть водяную баню до 40 °С, в самом начале занятия погрузить в нее пучок из 5 одинаковых листьев исследуемых растений, скрепив черешки проволочкой. Выдержать листья в воде в течение 30 мин, поддерживая температуру на уровне 40 °С. Затем взять первую пробу: оторвать по одному листу каждого вида растений и поместить в чашку Петри с холодной водой. После охлаждения взять лист пинцетом и перенести в чашку с соляной кислотой.
Поднять температуру в водяной бане до 50 °С и через 10 мин после этого извлечь из нее еще по одному листу, повторив операцию и перенеся охлажденный в воде лист в новую чашку Петри с HC1. Так постепенно довести температуру до 80 °С, беря пробы через каждые 10 мин при повышении температуры на 10 °С.
Через 20 мин после погружения листа в HC1 учесть степень повреждения по количеству бурых пятен. Результаты записать в таблицу, обозначив отсутствие побурения знаком «-», слабое побурение «+», побурение более 50 % площади листа «++» и сплошное побурение << + + + ». Записать результаты по разным древесным растениям в общую таблицу на доске.
Объект | Степень повреждения листьев | ||||
40 °С | 50 °С | 60 °С | 70 °С | 80 °С | |
Построить ряд термостойкости древесных пород или комнатных растений по степени убывания. Сделать соответствующие выводы.
Работа № 5. Определение температурного порога
коагуляции белков цитоплазмы клеток
разных растений
Клетки разных растений имеют неодинаковую устойчивость к повышенным температурам. Цель работы: показать эту разницу на ряде древесных растений. При этом предлагаются два метода определения коагуляции белка цитоплазмы (по Вигорову, 1961 и Генкелю, 1971).
Определение по
Температура, при которой в течение 10 мин полностью коагулируют белки цитоплазмы, считается условной границей жаростойкости растений. Гибель клеток устанавливается по потере ими способности плазмолизировать.
Оборудование, реактивы, материалы
1) микроскоп; 2) стаканы химические большие (6 шт.); 3) пробирки (5 шт.); 4) большая колба; 5) электроплитка; 6) термометр; 7) острая бритва; 8) препаровальная игла; 9) кисточка; 10) предметные и покровные стекла; 11) кусочки фильтровальной бумаги; 12) карандаш по стеклу; 13) 1 М раствор сахарозы;
14) 0,02 %-ый раствор «нейтрального красного»; 15) свежие листья разных древесных растений, растущих во дворах (без влияния газов автотранспорта).
Ход работы
Острой бритвой приготовить по 12 срезов эпидермиса листьев разных древесных растений, поместить по два среза в пробирки, в которые налито небольшое количество водопроводной воды.
Нагреть в большой колбе воду. Смешивая горячую воду с холодной, приготовить в шести химических стаканах водяные бани с температурой 48, 50, 52, 54, 56 и 58°С. Одеть на пробирку поясок из бумаги, где записать температуру. Погрузить одновременно в водяные бани пробирки со срезами, поддерживая установленную температуру путем осторожного подливания в стаканы горячей воды. Через 10 мин извлечь срезы кисточкой из пробирок, перенести на предметные стекла, снабженные надписями. Если клетки не содержат пигмента, следует их окрасить, выдержав в растворе «нейтрального красного» в течение 10-15 мин, затем отсосать раствор краски фильтровальной бумагой, нанести на срезы по капле 1М раствора сахарозы, закрыть покровными стеклами и через 15- 20 мин рассмотреть в микроскоп. Обозначить знаком « + » плазмолиз у клеток и знаком «-» его отсутствие. Наличие плазмолиза показывает, что клетки живые, отсутствие – мертвые.
Запись результатов
Название растения | Температура, 0 С | |||||
48 | 50 | 52 | 54 | 56 | 58 | |
Построить ряд устойчивости разных растений по температурному порогу коагуляции цитоплазмы.
Определение по
Оборудование, реактивы, материалы
1) ступки с пестиками; 2) воронки; 3) вата; 4) центрифуга; 5) термо-
стойкий стакан; 6) термометр; 7) битое стекло (мелкое); 8) листья разных древесных растений.
Ход работы
Взвесить 3-5 г листьев разных древесных растений. Растереть в ступке с 4 мл воды (в случае трудностей при растирании добавить битое стекло). При смыве ступки добавляют еще 6 мл воды. Отделить более крупные частицы разрушенной ткани фильтрованием через вату или центрифугированием. Можно применить стеклянный фильтр и насос. Поместить зеленый раствор в пробирку и, медленно нагревая жидкость в стакане с водой или бане, отметить температуру, при которой произойдет коагуляция белков, извлеченных из разрушенных клеток. Установить ряд устойчивости разных видов древесных растений к высоким температурам.
Работа № 6. Определение устойчивости клеток
различных растений к обезвоживанию
В условиях жаркого сухого климата, а также городских экосистем явление обезвоживания органов (и, соответственно, клеток) у древесных растений встречается очень часто. Особенно это выражено на освещенных сторонах улиц, когда водообмен затруднен из-за малого проникновения в почву осадков, а полив не производится. Это явление выражается в потере тургора, колоколообразности листьев, пожелтении, появлении некрозов.
Предлагаемая работа основана на свойствах серной кислоты обезвоживать клетки листа, что часто встречается в условиях антропогенного загрязнения, когда попавший через устьица в растение сернистый газ превращается в протоплазме клетки в серную кислоту (весьма гигроскопичное вещество), вызывая потерю листом тургора, повреждение и гибель клеток.
|
Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8 |


