Таблица 2
Условия формирования и характеристики субмикронных частиц П(Ст-ВФА)
Опыт № | T, оC | ВФА/Ст, мас.% | АИП/ВФА+Ст мас.% | ВФА+Ст/Н2О мас.% | РРЦ*/Ст, мас.% | pH0 | Конвер-сия, % | D, нм | δ, % |
3ск | 65 | 5.9 | 3.0 | 9.2 | ДАДФДС – 0.28 | 6.80 | 73 | 300 | 10.1 |
4ск | 70 | 3.0 | 3.5 | 15.0 | - | 6.08 | 73 | 280 | 3.3 |
5ск | 70 | 1.0 | 2.7 | 15.0 | - | 6.11 | 62 | 270 | 6.1 |
6ск | 70 | 1.3 | 3.7 | 10.0 | - | 6.15 | 51 | 250 | 2.9 |
7ск | 70 | 3.0 | 3.0 | 10.0 | МЭ – 0.20 | 6.61 | 91 | 220 | 2.8 |
8ск** | 70 | 3.0 | 3.0 | 10.0 | МЭ – 0.20 | 6.60 | 99 | 305 | 5.6 |
* РРЦ (регулятор роста цепи): ДАДФДС – диаминодифенилдисульфид, МЭ – меркаптоэтанол.
** 1.5 мас.% ДМЭГ по отношению к стиролу и 1.5×10-2 моль/л KH2PO4 в водной фазе.
Гидролиз их поверхности проводился в водном растворе НСl c рН 2 при 40оС. Данные о суммарной поверхностной концентрации слабоосновных и слабокислых групп до и после гидролиза, полученные кондуктометрическим титрованием, приведены в табл. 3. О соотношении карбоксильных и аминогрупп на поверхности частиц после гидролиза судили по зависимостям их ζ-потенциала от рН. Так, до гидролиза частицы П(Ст-ВФА) 3ск в широком диапазоне рН имеют положительный ζ-потенциал. Однако после гидролиза происходит инверсия знака ζ-потенциала частиц в нейтральной области рН (рис. 6), что указывает на присутствие в их поверхностном слое соизмеримых количеств карбоксильных и аминогрупп. Напротив, частицы латексов 5ск, 6ск и 8ск после гидролиза сохраняли положительный заряд, причем значения их ζ-потенциала даже возрастали (рис. 6). Синтез этих частиц проходил при меньшем содержании ВФА в смеси мономеров (табл. 2), чем в опыте 3ск, поэтому они имели менее гидрофильную поверхность. Очевидно, что в результате гидролиза поверхности таких частиц поверхностная концентрация аминогрупп заметно выше, чем карбоксильных групп.
Таблица 3
Концентрация поверхностных функциональных групп частиц П(Ст-ВФА), [моль/м2]
№ опыта | 3ск | 5ск | 6ск | 8ск | |
Поверхностная концентрация слабоосновных и слабокислых групп [NH2+КГИ+COOH]* | до гидролиза | 1.6·10-6 | 0.3 10-6 | 0.2·10-6 | 0.8·10-6 |
после гидролиза | 6.0·10-6 | 3.2·10-6 | 1.1·10-6 | 1.2·10-6 |
* КГИ - концевые группы остатков инициатора АИП.
Таблица 4
Условия синтеза и диаметр наночастиц П(Ст-ВФА) и П(ММА-ВФА)
Опыт № | Мономеры, мас. ч. | Инициатор/ мономеры мас.% | Мономеры/ вода, мас.% | Эмульгатор, ККМ# | Т, ºC | D, нм |
9cк | Ст:ВФА:АМСтГХ 80:3:20 | АИП 3.0 | 5.0 | 1.7 ЦТАБ | 90 | 55 |
10ск | Ст:ВФА 100:3 | АИП 3.5 | 2.0 | 1.7 ЦТАБ | 90 | 70 |
11ск | Ст:ВФА 100:3 | АИП 3.5 | 5.0 | 1.4 ЦТАБ | 90 | 90 |
12ск | Ст:ВФА 100:3 | АИП 3.5 | 5.0 | 1.0 ЦТАБ | 90 | 110 |
14мк | ММА:ВФА 100:3 | АИП 3.5 | 5.0 | 1.0 ЦТАБ | 90 | 100 |
15мк | АИП 3.5 | 1.0 ЦТАБ | 67 | 75 | ||
16мк | ЦВК 3.5 | 1.0 Disponil | 75 | 80 |
С целью получения монодисперсных наночастиц П(ММА-ВФА) и П(Ст-ВФА) применялся метод эмульсионной сополимеризации ММА или стирола с ВФА в присутствии ПАВ около критической концентрации мицеллообразования (ККМ). Варьирование природы инициатора с катионными (АИП) или анионными (ЦВК) группами, эмульгатора: катионного - цетилтриметиламмоний бромида (ЦТАБ) с ККМ(25оС) = 9.2∙10-4 моль/л, или анионного - натриевой соли сульфата алкиларилполигликолевого эфира, (Disponil AES 60 IS) с ККМ(25оС) = 0.07 мас.%, а также введение в реакционную смесь в оп. 15мк поверхностного модификатора (0.1 мас.% декстрана к водной фазе) позволило получить монодисперсные наночастицы диаметром 70-110 нм при его среднеквадратичном отклонении менее 2% (табл. 4). Использование в оп. 9ск гидрохлорида аминостирола (АМСтГХ) для повышения положительного заряда первичных ядер на стадии нуклеации снизило диаметр образующихся частиц до 55 нм. В области ККМ ЦТАБ формируются наночастицы, для которых не происходит инверсии знака поверхностного заряда при повышении рН среды (рис. 7). Это является результатом конкуренции имидазолиновых групп на концах полимерных цепей и катионов ЦТАБ за место в поверхностном слое. Уменьшение концентрации остатков АИП на поверхности частиц приводит к снижению доли карбоксильных групп, образующихся при их гидролизе. Напротив, отрицательный ζ-потенциал частиц 16мк снижался до 0 при рН<4, что указывает на присутствие в поверхностном слое только карбоксильных групп.
3.1.2. Самосборка частиц П(Ст-ВФА) и П(ММА-ВФА).
При высушивании полимерной дисперсии (1 мас.%) субмикронные частицы образовывали пленочные структуры (рис. 8), о трехмерной упорядоченности которых свидетельствует пик отражения на зависимости оптической плотности пленки от длины волны (рис. 9).
Полученные наночастицы в диализованных водных дисперсиях формировали периодические коллоидные структуры, что проявлялось как свечение в видимом спектральном диапазоне всего объема дисперсии либо отдельных «блесток» – ламеллярных структур площадью до 5 мм2. В спектрах пропускания дисперсий обнаружены резонансные пики, обусловленные дифракцией света на образовавшихся структурах (рис. 10). Эти структуры разрушались при перемешивании, но обратимо восстанавливались уже через 2 мин после его прекращения. Можно полагать, что кооперативные взаимодействия наночастиц с амфотерной поверхностью способствуют упрочнению формируемых структур.
3.2. Модификация монодисперсных полимерных частиц
3.2.1. Модификации частиц П(ММА-ВФА) белком..
Карбоксильные группы на поверхности субмикронных частиц П(ММА-ВФА) были использованы для иммобилизации бычьего сывороточного альбумина (БСА) методом активированнных эфиров с применением водорастворимого гидрохлорида 1-(3-диметиламинопропил)-3-этилкарбодиимида и N-гидроксибензотриазола. Амфотерная поверхность частиц обеспечивала их электростатическую стабилизацию в слабокислой среде в процессе активации карбоксильных групп. Связывание белка увеличивалось с повышением содержания звеньев ВФА в сополимере (рис. 11).

3.2.2. Ковалентное присоединение флуоресцеин изотиоцианата (ФИТЦ) по аминогруппам частиц и оптические свойства матриц на их основе.
Для модификации частиц П(Ст-ВФА) люминофором было проведено ковалентное связывание ФИТЦ с их поверхностными аминогруппами. Получена изотерма хемосорбции с выходом на плато (рис. 12). Предельная хемосорбция составляет 0.26×10-6 моль/м2, то есть, из 10 титруемых аминогрупп (2.9×10-6 моль/м2) примерно одна участвует в присоединении люминофора. Такой результат подтверждается уменьшением положительного ζ-потенциала частиц после связывания ФИТЦ всего на 5-10 мВ. Частицы П(Ст-ВФА), успешно апробированы в ФГБУ «НИИЭМ» СЗО РАМН при исследовании функциональной активности лейкоцитов периферической крови методом проточной цитофлуориметрии. Кроме того, из частиц, модифицированных ФИТЦ, были получены трехмерно-упорядоченные структуры, которые были использованы в ЦФ РАН как сенсорные слои, изменяющие интенсивность флуоресценции в присутствии аммиака.
3.2.3. Модификация поверхности частиц за счет ионного обмена катионов люминофоров и оптические свойства матриц на их основе.
В качестве другого способа модификации люминофорами полимерных частиц после окончания синтеза исследовали ионный обмен катионов люминофоров на поверхности частиц П(Ст-МАК). В результате были получены частицы, содержащие в поверхностном слое катионы Родамина 6Ж или двухзарядные катионы СКС-16 (схема 2). Для Родамина 6Ж в водно-спиртовой среде (20 об.% этанола) емкость обмена составляла 0.3 10-6 моль/м2 при рН 7 и возрастала до 0.9 10-6 моль/м2 при рН 9. Для двухзарядного катиона СКС-16 емкость обмена достигала 3.3 10-6 моль/м2 при рН 9. Результаты сканирующей электронной микроскопии и спектры брэгговского отражения (рис. 13), измеренные в ФТИ РАН, показывают, что такие частицы образуют трехмерно -
|
|
Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 |



Родамин 6Ж
СКС-16