Физическую выносливость животных оценивали по длительности плавания. Интервал в 1 час между введением препарата и тестированием был выбран на основании имеющихся данных о том, что максимальное действие большинства антигипоксантов наблюдается через час после перорального введения.
Исследования антиоксидантной активности
Оценку антиоксидантной активности проводили для выбора эффективных доз субстанции Эпотек. Оценивали активность основного фермента – супероксидисмутазы (СОД) и малонового альдегида (МДА).
Определение активности СОД в плазме крови
Количественное определение активности СОД в плазме крови основного фермента окислительно востановительных реакций дыхательной цепи, проводили спектрофотометрически. Метод основан на использовании реакции окисления кверцетина аскорбиновой кислотой (5). Расчет проводили по формуле:
Δ1 Д406 – Δ 2 Д406 х 100 , где
Δ1 Д406
Δ1 Д406 – оптическая плотность за 20 минут в контроле без СОД;
Δ2 Д406 – оптическая плотность за 20 минут в опыте.
Определения МДА в плазме крови
Количественное определение МДА (основного активного продукта перекисного окисления липидов) в плазме крови проводили спектрофотометрически. Метод основан на использовании реакции комплексообразования продутов пероксидации с тиобарбитуровой кислотой (ТБК).
Окрашенный в розовый цвет комплекс продуктов пероксидации – МДА с ТБК имеет максимум поглощения при l = 535 нм. Для определения содержания предшественников МДА в сыворотке в пробы добавляли сернокислое железо. Это способствует разрушению комплексов – предшественников МДА и интенсификации окраски.
В первую пробу к 0,5 мл сыворотки крови, полученной после декапитации животного, добавляли 3 мл 1% раствора ортофосфорной кислоты и 1 мл 0,6% раствора ТБК. Во вторую пробу – 0,5 мл сыворотки, 3 мл 1% раствора ортофосфорной кислоты, 1 мл 0,6% раствора ТБК и 0,1 мл раствора сернокислого железа. Пробы нагревали на кипящей бане в течение часа, охлаждали и добавляли в каждую по 4 мл n-бутанола. После тщательно перемешивания пробы центрифугировали при 3 тыс. об/мин в течение 5 мин.
Окрашенный в розовый цвет комплекс (продукты пероксидации с ТБК) образуется в слое n-бутанола (верхний слой пробы) и имеет максимум поглощения при l = 535 нм. Расчет содержания МДА проводили с учетом коэффициента его молярной экстинкции, который равен 0,156 х 106М-1/см-1, по формуле:
Содержание МДА = (Е х Р) / К,
где Е – экстинкция пробы;
К - коэффициент молярной экстинкции ;
Р – коэффициент разведения пробы.
Исследование подострой токсичности
Исследование подострой токсичности проводили для оценки степени безвредности субстанции Эпотек. Исследуемые вещества вводили крысам самцам массой –180 г перорально (зондом в желудок) в терапевтической для крыс дозе в виде раствора один раз в день ежедневно на протяжении 14 суток. Полученные результаты сравнивали с результатами, регистрируемыми у животных, получавших растворитель (воду очищенную), используемый для приготовления раствора, и у интактных животных. Каждая группа состояла из 10 крыс.
Оценивали общее состояние животных, состояние волосяного покрова, слизистых оболочек, массу тела. Исследовали функциональное состояние сердечно-сосудистой системы, нервной, мочевыделительной систем, морфологические показатели крови. По окончании эксперимента животных умервщляли для проведения патоморфологических исследований.
Общее состояние подопытных животных, состояние их волосяного покрова и слизистых на протяжении всего эксперимента не отличалось существенно от показателей у интактных животных и крыс, получавших воду очищенную.
Оценка динамики массы тела крыс представляет собой объективный показатель, часто используемый для интегральной характеристики общетоксического действия БАД и лекарственных средств. Крыс взвешивали (утром до момента кормления) ежедневно в течение всего периода введения Эпотека.
Влияние Эпотека на функции сердечно-сосудистой системы оценивали по результатом электрокардиографического исследования путем регистрации электрокардиограммы (ЭКГ) у крыс, снятой во втором стандартном отведении на электрокардиографе «Heart Mirror 3» (Венгрия). Рассчитывали следующие показатели: частоту сердечных сокращений (ЧСС), величину зубцов R и S, интервалов PQ, QRS и QRST.
Влияние Эпотека на процессы образования и выделения мочи оценивали стандартными методами. Животных на сутки высаживали в специальные собирательные клетки. Устройство клетки позволяло собирать суточную мочу. Измеряли суточный диурез, плотность мочи, кислотность, наличие уробилиногена, билирубина, кетонов, глюкозы и белка.
Влияние Эпотека на состав форменных элементов крови оценивали стандартными методами. Количество гемоглобина определяли с помощью гемометра Сали. Подсчет лейкоцитарной формулы проводили на мазках крови, взятой из хвостовой вены крысы, окрашенных азур-эозином по Романовскому-Гимза. Определяли количество эритроцитов, лейкоцитов, ретикулоцитов, время свертывания. Измерения проводили до начала эксперимента (исходные данные) и через 2 недели после начала введения Эпотека.
По окончании эксперимента крыс из контрольной группы и животных, получавших Эпотек декапитировали. Состояние внутренних органов оценивали визуально при аутопсии, измеряли массу органов и рассчитывали удельные значения этих показателей, выполняли гистологическое исследование случайным образом отобранных образцов тканей крыс. Для гистологических исследований вырезали небольшие участки тканей (толщина не более 5-10 мм), так чтобы вся структура органа попала в срез. Взятый материал этикетировали и помещали в 15 % водный раствор формалина. Далее объекты промывали, проводили через спирты возрастающей концентрации и заливали в парафин. Готовили гистологические срезы тканей с помощью микротома. Препараты окрашивали гематоксилином-эозином и исследовали с помощью светового микроскопа «Биолам».
Оценка кумулятивной активности (подострой токсичности по тесту Лима)
Кумулятивную активность определяли по тесту Лима (4, 6). Эта методика позволяет оценить кумулятивные свойства веществ. В опыте длительностью 24 ± 4 дня учитывали гибель животных при ежедневном энтеральном введении вещества в начальной дозе, равной 1/10 ЛД50, нарастающей в каждые последующие 4 дня в полтора раза по сравнению с предыдущей дозой. Полученные результаты позволяют рассчитать индекс кумуляции как отношение ЛД50 при однократном введении вещества к ЛД50 при кратном введении. Для этой цели используют методы, основанные на учете гибели животных при повторном введении фармакологического вещества (1). Если расчетный коэффициент меньше или близок к единице, то тестируемое вещество обладает кумулятивными свойствами. Чем больше полученный коэффициент, тем выше вероятность его кумуляции.
2. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ СПЕЦИФИЧЕСКОЙ АКТИВНОСТИ И ТОКСИЧНОСТИ Субстанции ЭПОТЕК
2.1. Результаты оценки острой токсичности
Острую токсичность субстанции Эпотек оценивали на белых беспородных мышах самцах массой г. Использовали 10 групп тест-объектов, по 10 животных в каждой. Субстанции вводили в диапазоне доз от 100 мг/кг до 3000 мг/кг. Наблюдение за животными осуществляли в течение 14 дней. ЛД50 рассчитывали по методу Миллера-Тейнтера. Результаты представлены в таблице 1.
Таблица 1.
Результаты определения средних смертельных доз субстанции Эпотек
Препарат | Путь введния | ЛД 16 М±м, мг/кг | ЛД50 М±м, мг/кг | ЛД84 М±м, мг/кг | |
Гипоксен | П/о | 215,0 | 630,0±41,0 | 986,7 | Р>0,05 |
Эпотек | В/бр | 425,0 | 461,1+26,0 | 500,0 | Р<0,05 |
Эпотек | П/о | 2150,0 | 2360±37,1 | 2750,0 | Р<0,05 |
В результате исследований установлено, что пищевой антиоксидант Эпотек, прелагаемый для использования в БАД является не токсичным соединением, относится к IV классу токсичности.
2.2. Результаты исследования антигипоксической субстанции Эпотек
Антигипоксическую активность исследовали на основных моделях гипоксических состояний: острой гипоксической гипобарической гипоксии (ОГБГ), острой гистотоксической гипоксии (ОГТГ), острой гемической гипоксии (ОГГ).
Острая гипобарическая гипоксия
На модели ОГБГ субстанцию Эпотек вводили перорально за 1 час до эксперимента в диапазоне доз: 1,6 мг/кг(1/1000 ЛД50); 3,2 мг/кг(1/500 ЛД50); 16 мг/кг(1/100 ЛД50); 32 мг/кг(1/50 ЛД50); 80 мг/кг(1/20 ЛД50); 160 мг/кг(1/10 ЛД50)). Препарат сравнения Гипоксен вводили в дозе 31,5 мг/кг (1/20 ЛД50). Контрольная группа животных получала перорально воду очищенную (5 мл/кг). Результаты опытов представлены в таблице 2.
Таблица 2.
Влияние субстанции Эпотек на переносимость мышами самцами ОГБГ (n= 20 в группе, пероральное введение)
№ | Препарат | Доза, мг/кг | Длительность жизни | Прирост длительности жизни, % | Выживаемость % |
1. | Контроль | 5 мл/кг | 3,88±0,27 | ___ | 0 |
2. | Гипоксен | 31,5 | 10,80±0,76 | 178,3 | 40 |
3. | Эпотек | 1,6 | 19,50±1,34 | 402,7 | 40 |
4. | Эпотек | 3,2 | 15,89±1,11 | 309,5 | 20 |
5. | Эпотек | 16 | 10,95±0,67 | 182,1 | 0 |
6. | Эпотек | 32 | 15,59±1,09 | 301,8 | 60 |
7. | Эпотек | 80 | 14,66±1,03 | 277,8 | 60 |
8. | Эпотек | 160 | 9,50±0,67 | 144,8 | 40 |
Установлено, что препарат сравнения Гипоксен обеспечивает выживаемость 40% экспериментальных животных, при этом прирост длительности их жизни по сравнению с контролем составляет 178,3%.
|
Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8 |


