Диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и особенности проявления болезни в современных условиях ведения (стр. 4 )

В крупных молочных комплексах без импорта скота (вторая категория) уровень инфицированности животных вирусом ВД-БС КРС был также высоким (78,02%). Превалентность ПИ животных в них была ниже и составила 1,51%, а по половозрастным группам: 6,56%, 1,13 % и 0,94 %, соответственно. В этих хозяйствах также регистрировали респираторные болезни телят.

Инфицированность животных РСВ КРС в этих хозяйствах находилась в пределах 25,5% у телят 1-6-месячного возраста, 50% у телят от 6 месяцев и старше, телок – 66,6%, а у коров 76,3% (в среднем 56,1%). Частота выявления РСВ была также высокой, однако его чаще обнаруживали у телят.

В мелких товарных хозяйствах серопозитивность скота к вирусу ВД-БС КРС составила 38,63%, а превалентность ПИ животных -1,03 %. Болезнь протекала в субклинической, реже в острой форме у телят и нетелей в респираторной форме ассоциативно с другими инфекциями.

Респираторно-синцитиальная инфекция имела распространение и в этих хозяйствах, однако уровень инфицированности животных был ниже, чем в хозяйствах первой и второй категории и составлял 47,7%. Клинические признаки болезни у животных регистрировались значительно реже и только у телят до 6-месячного возраста в виде слабого респираторного синдрома.

Таким образом, в крупных молочных стадах установлено ассоциативное течение вирусной диареи-болезни слизистых и респираторно-синцитальной инфекции крупного рогатого скота. Установлена взаимосвязь между уровнем инфицированности животных вирусом ВД-БС КРС и наличием в них животных, персистентно инфицированных этим вирусом. Количество ПИ животных коррелировало с возникновением клинических признаков респираторных болезней у телят, протекающих с участием респираторно-синцитиального вируса. Инцидентность респираторных болезней телят в крупных молочных хозяйствах с высокой молочной продуктивностью коров была выше, чем в средних и малых за счет наличия в них ПИ телят. Частота проявления клинических признаков РСИ у телят была выше в крупных хозяйствах и также зависела от количества персистентно инфицированных вирусом ВД-БС КРС животных.

2.2.8.2. Влияние хозяйственных факторов на частоту проявления

клинических признаков респираторно-синцитиальной инфекции

и легочного пастереллеза крупного рогатого скота

Целью этого раздела являлось изучение влияния концентрации животных и уровня молочной продуктивности коров на проявление РСИ и легочного пастереллеза КРС (табл. 9).

Предварительные результаты серологических и вирусологических исследований также позволили разделить все хозяйства на три категории. К первой (низкий уровень серопозитивности) отнесли 9%, ко второй (средний) – 22, а к третьей (высокий уровень) – 60% от числа обследованных хозяйств.

Таблица 9 – Проявление РСИ КРС и легочного пастереллеза в зависимости от концентрации и продуктивности животных в хозяйстве

Поголовье (коров)	Среднегодовой надой на фур. голову, кг	Серопозитивность, (%)/наличие сероконверсии (+;±;-)	Выделение возбудителя (+;±;-)	Клинические проявления (+;-)	Частота выделения бактерий семейства Pasteurellaceae, их патогенность (+; -)
РСИ КРС
коровы	телята
До 300	До 2500	0-30/-	-	+	±	Редко (-)
До 500		31-60/±	±	±	+	Относительно редко (±)
800 и более		61 и выше/+	+	+	+	Часто (±)

Известно, что на возникновение, развитие и течение респираторных болезней большое влияние оказывают хозяйственные факторы, в том числе, концентрация животных и их продуктивность ( и соавт., 1984).

Анализируя влияние хозяйственных факторов на проявление вирусных инфекций, нами высказано предположение, что интенсивность проявления респираторных болезней молодняка КРС, а также их этиологическая структура различны и зависели от концентрации животных в хозяйствах и их продуктивности, в частности, молочной.

В мелких хозяйствах серопозитивность животных к вирусам ИРТ и ВД-БС КРС составляла 20-30%, отмечалась, как правило, циркуляция одного-двух возбудителей бактериальной природы, вызывающих респираторные болезни молодняка КРС до 1,5-месячного возраста. В хозяйствах, насчитывающих более 500 коров, серопозитивность животных к этим вирусам достигала 60%. В такой ситуации происходила активизация вирусных агентов и их участие в возникновении и развитии респираторных болезней молодняка. От больных телят выделялись вирусы, и отмечалась сероконверсия к ним. Спектр бактериальных агентов возрастал и насчитывал 4-5 и более, патогенность их варьировала от низкой до высокой. Возраст восприимчивых животных достигал 6 месяцев.

В хозяйствах, насчитывающих 800 и более коров с высокой молочной продуктивностью, инфицированность животных достигала 90-100%, выделение вирусов происходило чаще, процент сероконверсии также значительно возрастал. Спектр возбудителей бактериальной природы, вовлекаемых в инфекционный процесс, значительно расширялся, патогенность их также варьировала от низкой до высокой.

Важным аспектом патогенеза РСИ КРС является подавление неспецифических механизмов иммунной защиты респираторного тракта, а также инициация и усиление бактериальной колонизации легких после первичного размножения возбудителя. Вирус может вызывать бронхиты, пневмонии и эмфиземы легких самостоятельно, но главным его свойством является иммуносупрессия и формирование предрасположенности к возникновению бактериальных пневмоний, в частности, легочного пастереллеза. Исследованиями установлено, что культуры пастерелл, выступающие в качестве основного агента, осложняющего течение вирусных болезней, изолировали в 33,3% случаев, при этом они относились к родам multocida и haemolytica, вирулентность их варьировала от низкой до высокой.

Анализ данных ветеринарной отчетности за гг. показал, что пастереллез крупного рогатого скота регистрировался в нескольких областях Сибири и чаще протекал в виде эндогенной инфекции на фоне предшествующих вирусных инфекций. С середины 90-х годов была отмечена тенденция к снижению случаев выделения этих бактерий (рис.).

 

Рисунок – Частота выделения бактерий сем. Pasteurellaceae при респираторных болезнях крупного рогатого скота в молочных хозяйствах, % от числа исследованных проб.

В 1992-97 гг. культуры пастерелл выделяли чаще от телят в крупных животноводческих хозяйствах по откорму молодняка. В период гг. они присутствовали в пробах биоматериала от телят из хозяйств различного направления значительно реже. Начиная с 2007 г. количество проб, содержащих этот возбудитель, также стало возрастать.

В настоящее время заболевание телят пастереллезом, подтвержденное лабораторными исследованиями, регистрируется в хозяйствах с высокой концентрацией животных, специализирующихся на производстве молока, где серопозитивность животных к вирусам ВД-БС, ИРТ, РСИ КРС достигает 60-70% и выше.

2.2.8.3. Частота выделения возбудителей смешанных вирусных

инфекций и бактерий семейства Pasteurellaceae от больных телят в молочных хозяйствах, неблагополучных по респираторным болезням

Целью настоящего раздела было изучение частоты выявления респираторно-синцитиального вируса в ассоциациях с вирусами ИРТ, ВД-БС и бактериями семейства Pasteurellaceae в крупных молочных хозяйствах, стационарно неблагополучных по респираторным болезням КРС.

Из данных таблицы 10 видно, что количество проб, содержащих вирус ИРТ в моноварианте, составляло 30%, ВД-БС КРС – 18%; ассоциации этих вирусов - 71,7%. Высокий процент выявления положительных проб свидетельствует о широком распространении этих инфекций среди восприимчивого поголовья и, возможно, ведущей роли вирусов в инфекционном процессе. Культуры пастерелл изолировали в 33,3% случаев; при этом они относились к видам P. multocida (20%) и M. haemolytica (13,3%).

Таблица 10 – Частота выделения вирусов ВД-БС, ИРТ, РСИ КРС и бактерий семейства Pasteurellaceae от больных телят в хозяйствах, стационарно неблагополучных по респираторным болезням ( гг.)

n=998

№ п/п	Наименование возбудителя, ассоциации возбудителей	Количество положительных проб	Выявлено положительных проб от числа исследованных, %
1	Вирус ИРТ КРС	299	30
2	Вирус ВД-БС КРС	180	18
3	Бактерии семейства Pasteurellaceae: а) M. haemolytica	133	13,3
б) P. multocida (A и D)	200	20
4	Вирус ИРТ КРС и ВД-БС	716	71,7
5	Вирус ИРТ КРС и Pasteurella spp.	200	20
6	Вирус ВД-БС КРС и Pasteurella spp.	519	52,9
7	Вирус РСИ КРС	123	11,0
8	Вирус ИРТ, ВД-БС и РСИ КРС	89	10,0
9	Вирус РСИ КРС и Pasteurella spp.	123	20,0
10	Вирус ИРТ, ВД-БС и РСИ КРС и Pasteurella spp.	235	15,0

Сочетание вирусов ИРТ и ВД-БС чаще всего выявляли в легких (37,8%), трахеальном и бронхиальном экссудате (16,5%), слизистой носа (10,2%) и трахеи (9,82%). Вирусно-бактериальные ассоциации – в легких: вирус ИРТ и бактерии семейства Pasteurellaceae – в 20,0%, а вирус ВД-БС КРС и бактерии этого семейства в 52,9% исследованных проб.

Количество проб биоматериала, содержащих вирус ВД-БС КРС и Р. multocida сероваров А и D, составило 6,8% в легочных лимфоузлах, 11,2% в бронхах, 3,4% в трахеальном и бронхиальном экссудатах. Число проб, содержащих этот вирус и M. haemolytica, составило 3,6% в легочных лимфоузлах и 9,9% в легких. Ассоциацию вирусов ИРТ, ВД-БС и бактерий семейства Pasteurellaceae выявляли также в легких (43,1%).

Количество проб, содержащих РСВ КРС в моноварианте, составило 11,0%, ИРТ, ВД-БС и РСВ КРС -10,0%, РСВ КРС и бактерии семейства Pasteurellaceae – 20,0%, а вирус ИРТ, ВД-БС и РСВ КРС в сочетании с бактериями этого семейства в 15,0% случаев. При этом РСВ КРС чаще выявляли в легких и бронхах (35,0%), носовых выделениях и органах верхнего респираторного тракта (11,0%).

Результаты исследований показали, что спектр микроорганизмов, вызывающих патологию респираторной системы крупного рогатого скота достаточно широк. Бактериальные заболевания часто являются вторичными, но могут протекать как сопутствующие или самостоятельные. Это зависит от концентрации животных, наличия или отсутствия специфической профилактики вирусных и бактериальных болезней, а также хозяйственных факторов.

В таких случаях смешанного течения респираторных инфекций изолировать возбудители вирусной природы обычными вирусологическими методами сложно и часто их первичная этиологическая роль остается не установленной вследствие постановки диагноза на бактериальные инфекции.

В связи с этим при планировании противоэпизоотических мероприятий крайне необходимо проводить весь комплекс диагностических исследований (вирусологических, бактериологических) с целью расшифровки этиологической структуры конкретной вспышки респираторных заболеваний и выяснения этиологической роли каждого инфекционного агента.

3.ВЫВОДЫ

1. Оптимальными параметрами выделения РСВ КРС являлись: отбор проб биоматериала от животных на ранних стадиях инфекции, транспортировка в охлажденном виде или в транспортной среде в течение суток в лабораторию с последующей немедленной обработкой и заражением культур клеток в день доставки. Выделение вируса эффективно в двухсуточной первично-трипсинизированной культуре клеток ТБ с адсорбцией в течение часа и добавлением 2% сыворотки плода крупного рогатого скота при 37оС с проведением не менее 8 «слепых» пассажей. Эффективность выделения повышалась при отсутствии стадии центрифугирования суспензии биоматериала или при адсорбции вируса на клетках в течение часа при +20°С с добавлением 1% димексида. Пригодной для выделения и культивирования вируса являлась также перевиваемая линия культуры клеток ТЭБ, обеспечивающая его накопление в титре не ниже 103,5 ТЦД50/мл. Контроль выделения, накопления, а также типирование вируса в зараженных культурах клеток необходимо осуществлять при помощи ОТ-ПЦР путем исследования вируссодержащей суспензии каждого пассажа.

2. При изучении чувствительности 18 культур клеток к двум штаммам вируса (РС-Б и К-18) установлено, что цитопатогенное действие вируса имело «штаммовый» характер. Наиболее чувствительной к штамму РС-Б оказались первично-трипсинизированная культура клеток ЛЭК и перевиваемая линия клеток FLK, титр вируса в которых составлял 3,74+0,12 lgТЦД50/мл и 3,36±0,17 lgТЦД50/мл, а к штамму К-18 – ТБ и ТЭБ, обеспечивавшие его накопление в титре 4,83±0,07 lg ТЦД 50/мл и 4,58±0,07 lg ТЦД 50/мл.

3. Размножение штаммов вируса в инфицированных культурах клеток не всегда сопровождалось развитием видимого ЦПД. Для контроля его репликации и определения инфекционной активности эффективными были методы бляшкообразующих единиц и окрашенных фокусов, электронная микроскопия, цитоморфологические исследования и ОТ-ПЦР. Более эффективным методом титрования вируса являлся метод БОЕ, наиболее простым – метод ФОЕ, а наиболее специфичным - метод ОТ-ПЦР.

4. Оптимальными условиями культивирования штамма РС-Б вируса с целью получения эритроцитарного антигена являлись: возраст культуры клеток 3-5 суток; множественность заражения 0,1 ТЦД50/клетка; адсорбция 1,5 часа; поддерживающие, питательные среды – Игла MEM, Игла и RPMI -1640 в соотношении 2:1 с добавлением 2% фетальной сыворотки крупного рогатого скота, сыворотки северных оленей или сыворотки цыплят; рН 7,4-7,8; инкубирование в стационарных или роллерных условиях при температуре 37°С; культивирование в течение 5-6 суток до выраженного ЦПД. Добавление 1% ДМСО и ДЭАЭ - декстрана 50 мкг на 1 мл положительно влияло на проявление ЦПД и повышало титр вируса на 0,5 и 1 lg ТЦД50/мл. Оптимальными условиями культивирования штамма К-18 были: использование 2-3 суточных культур клеток ТЭБ и ТБ с предварительным 3-х кратным отмыванием монослоя клеток от ростовой среды с 10% коммерческой сыворотки крови крупного рогатого скота или телят. При использовании сыворотки эмбриона коровы необходимость отмывания монослоя клеток отпадала.

5. Активность эритроцитарных антигенов зависела от титра вируса в чувствительной культуре клеток. Наиболее активные антигены, титры которых со специфической к вирусу сывороткой составляли от 7,92±0,22 до 10,15±0,09 lg2, были получены из вируссодержащей суспензии, накопленной в культурах клеток Л5Э и П5Э, FLK и ЛЭК, а после адаптации и в перевиваемых линиях клеток Т-1 и ПТ. Штамм РС-Б обладал слабой антигенной активностью в отношении белых мышей линии BALB/c и морских свинок. Активность гипериммунных сывороток, использованных для положительного контроля набора, полученных на кроликах и баранах в реакции нейтрализации составила 5,38±0,16 - 6,08±0,09 lg2. Производственные испытания опытных серий специфических эритроцитарных антигенов в РНГА показали их высокую специфичность и активность.

6. С помощью РНГА выявлено наличие антител к вирусу респираторно-синцитиальной инфекции у 71,9% молодняка в возрасте 4-6 месяцев; 69,2% – в возрасте 2-4 месяца; 55,9% – в возрасте 6-9 месяцев и у 50,8% крупного рогатого скота в 16 регионах Российской Федерации, в том числе у 33,01% овец и 87,76% коз. Сероконверсию к вирусу устанавливали у телят в возрасте: 4-6 месяцев в 52,6% случаев; 7-9 месяцев – 50,0%; 3-4 месяца – 37,5%, что свидетельствовало о переболевании животных в эти возрастные периоды. Диагностический прирост титров антител к вирусу у телят в возрасте 1-3 месяца устанавливали редко: в 4,0 и 6,7% случаев, соответственно 1 месяц (4,0%). Уровень инфицированности и частота проявления клинических признаков болезни зависели от концентрации животных на единицу площади, уровня молочной продуктивности коров и частоты ввода новых животных. Средние показатели инфицированности крупного рогатого скота различались по регионам и варьировали от 30,8% в регионах с низкой плотностью скота до 66,6% в регионах с высокой плотностью и наличием завозного скота. В крупных хозяйствах циркуляция вируса могла быть непрерывной за счет транзитной инфекции у коров и телят, что обеспечивало постоянный риск возникновения повторных вспышек болезни.

7. По данным метода ОТ-ПЦР к инфицированию вирусом восприимчивы все половозрастные группы животных. В среднем вирус присутствовал в 15,4% исследованных проб биоматериала, полученных от крупного рогатого скота при вспышках болезни. Частота выявления генома вируса от телят до 6-месячного возраста составила 19,7%, а от коров – 16,1% при наличии признаков острых респираторных заболеваний. Выявление вируса в 4,5% проб биоматериала от телят до 10-дневного возраста свидетельствовало о вовлечении их в инфекционный процесс.

8. В крупных молочных комплексах частота проявления РСИ КРС зависела от уровня инфицированности животных вирусом ВД-БС КРС, а также наличия в стадах животных, персистентно инфицированных этим вирусом. При уровне инфицированности животных вирусом ВД-БС КРС от 78,02 до 90,3% и наличии в стадах крупного рогатого скота не менее 3,13% ПИ вирусоносителей инцидентность РСИ КРС повышалась и сопровождалась выявлением возбудителя и сероконверсией к нему у животных различных половозрастных групп, включая коров и телят до 6-месячного возраста.

9. Этиологическая структура респираторных болезней на молочных комплексах носила полиэтиологический характер. Количество проб, содержащих вирус ИРТ в моноварианте в среднем, составляло 30%, ВД-БС КРС – 18%; ассоциации этих вирусов – 71,7%. Сочетание этих вирусов выявляли в легких (37,8%), трахеальном и бронхиальном экссудате (16,5%), слизистой носа (10,2%) и трахеи (9,82%). Количество проб, содержащих РСВ в моноварианте, составило 11,0%, его выявляли в 35,0% проб легких и бронхов, 11,0% проб носовых выделений и органов верхнего респираторного тракта. В 10,0% проб выявляли три вируса одновременно.

10. Вирусно-бактериальные ассоциации выявляли в легких: вирус ИРТ и бактерии семейства Pasteurellaceae – в 20,0%, а вирус ВД-БС КРС и бактерии этого семейства в 52,9% исследованных проб. РСВ КРС и бактерии семейства Pasteurellaceae – 20,0%, а сочетание трех вирусов и пастерелл – 15,0% случаев. Культуры пастерелл в моноварианте изолировали в 33,3% от общего числа исследованных проб, при этом они относились к видам P. multocida (20,0%) и M. haemolytica (13,3%). Патогенность их варьировала от низкой до высокой. M. haemolytica выделяли от животных всех половозрастных групп с острой формой легочного пастереллеза при завозе импортированного скота, а P. multocida от молодняка до 6-месяцев при энзоотическом проявлении болезни.

11. Результаты разработки и апробации комплекса диагностических исследований открывают возможность проведения мониторинга РСИ КРС в молочных хозяйствах различного профиля с наличием или отсутствием импортированных животных, а также послужат основой стратегии диагностических исследований для объективной оценки эпизоотической ситуации и установления роли вируса в этиологии массовых респираторных болезней, протекающих с участием этого патогена и других вирусов и бактерий, создавая перспективы оптимизации противоэпизоотических мероприятий, в том числе схем специфической профилактики болезни.

4. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

1. В хозяйствах молочного направления, неблагополучных по вирусно-бактериальным болезням крупного рогатого скота, необходимо проводить комплекс серологических и молекулярных исследований с целью расшифровки этиологической структуры инфекционной патологии и установления роли респираторно-синцитиального вируса;

2. Комплекс диагностических исследований проводить с использованием

- «Набора для серодиагностики респираторно-синцитиальной инфекции (РС-инфекции) крупного рогатого скота овец и коз в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА)» ТУ - 1.

- «Тест-системы для выявления вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции» (Свидетельство о Госрегистрации № ПВР-1-8.9/02499).

Материалы диссертационной работы используются в учебном процессе в программе подготовки студентов по курсам «Вирусология», «Эпизоотология» по специальности «Ветеринария» в ФГОУ ВПО «Новосибирский Государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Уральская государственная академия ветеринарной медицины», ФГОУ ВПО «Красноярский Государственный аграрный университет», ФГОУ ВПО «Алтайский Государственный аграрный университет», ГОУ ВПО «Хакасский Государственный университет им. ».

5. СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ

ДИССЕРТАЦИИ

Статьи в ведущих научных журналах, рекомендованных

ВАК Минобразования и науки РФ

1. Васильев, А. В. РНГА в серодиагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / , , // Ветеринария. – 1988. – № 10. – С. 33-34.

2. Строганова, гипериммунные сыворотки к вирусу респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / // Вестник КрасГАУ. – 2009. – Вып. 11. – С.161-163.

3. Строганова, факторы и особенности эпизоотологии вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота в условиях Красноярского края / // Вестник КрасГАУ. – 2009. – Вып. 7 – С.116-119.

4. Строганова, непрямой гемагглютинации в серодиагностике респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / // Вестник КрасГАУ. – 2009. – Вып. 9. - С. 134-136.

5. Строганова, респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / , // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. – 2009. – № 12. – С. 87-91.

6. Строганова, активности эритроцитарных антигенов респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота для реакции непрямой гемагглютинации / // Вестник КрасГАУ. – 2009. – Вып. 11. – С. 158-161.

7. Строганова, активность респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в процессе хранения / // Вестник КрасГАУ. – 2009. – Вып. 12. – С.155-157.

8. Строганова, антигенный диагностикум респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота / // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. – 2010. - №6. – С.79-82.

9. Строганова, эпизоотической ситуации по вирусным респираторным болезням крупного рогатого скота в Средней Сибири / // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. – 2010. – № 8. – С.73-76.

10. Глотова, и типирование респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота при помощи ОТ-ПЦР / , , // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. – 2010. – № 10. – С.59-64.

11. Строганова, эпизоотической ситуации по вирусным респираторным болезням крупного рогатого скота в Восточной Сибири / // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 1. – С.125-128.

12. Строганова, и определение инфекционной активности респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в культуре клеток / // Достижения науки и техники АПК. – 2011. – № 2. – С. 59 – 60.

13. Строганова, клеточных культур к различным штаммам респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота / , , // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 2. – С.127-130.

14. Строганова, обнаружения и идентификации респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в культуре клеток / , // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 3. – С. 128-133.

15. Строганова, метод исследования для контроля размножения респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в культуре клеток / // Аграрный вестник Урала. – 2011. – № 3(82). – С. 29-31.

16. Строганова, аденовирусной инфекции крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Восточной Сибири / // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 4. – С. 108-111.

17. Строганова, активность респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в клеточных культурах / , // Сельскохозяйственная биология. – 2011. - №2. – С. 99-102.

18. Строганова, распространения вирусной диареи-болезни слизистых оболочек крупного рогатого скота в двух регионах Восточной Сибири / // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 5. – С. 124-127.

19. Строганова, парагриппа-3 крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Восточной Сибири / // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 6. – С. 115-118.

20. Строганова, распространения инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Восточной Сибири / // Вестник КрасГАУ. – 2011. – Вып. 7. – С. 118-120.

Монография

21. Глотов, болезни крупного рогатого скота при интенсивном ведении молочного животноводства: монография / , , ; КрасГАУ. – Красноярск, 2010. – 188 с.

Учебное пособие

22. Строганова, болезни крупного рогатого скота: учебное пособие, рекомендованное Сибирским региональным методическим центром высшего профессионального образования для межвузовского использования/ , , ; КрасГАУ и ИЭВСиДВ Россельхозакадемии. – Красноярск. – 2011. – 192 с.

Работы, опубликованные в сборниках научных трудов, материалах

конференций и других изданиях

23. Строганова, диплоидных культур клеток к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота / , // Интенсификация сельскохозяйственного производства в условиях радикальной экономической реформы: тез. докл. Всесоюзной науч.-практ. конф. (Сумы, 1989). – Сумы, 1989. – С. 175-176.

24. Строганова, перевиваемых клеточных линий к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота / // Наука – сельскохозяйственному производству: Тез. науч. конф. (КрасГАУ). – Красноярск, 1993. – С. 4-5.

25. Строганова, оптимальных условий культивирования штамма «РС-Б» респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в чувствительных культурах клеток / // Наука – сельскохозяйственному производству: Тез. науч. конф. (КрасГАУ). – Красноярск, 1995. – С. 36-37.

26. Строганова, контроля размножения и определения инфекционной активности респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в культурах клеток / // Реконструкция гомеостаза: материалы IX Международного симпозиума (Красноярск, 16-20 марта 1998). – Красноярск, 1998. – Т. 4. – С. 97-99.

27. Глотов, эпизоотической ситуации по вирусным респираторным болезням крупного рогатого скота в Сибири / , , // Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения животноводства Сибири: сб. науч. тр. (РАСХН. Сиб. отделен. ИЭВСиДВ). – Новосибирск, 2006. – С. 52-56.

28. Строганова, респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота к перевиваемым линиям клеток / // Социально-экологические проблемы природопользования в Центральной Сибири: материалы междунар. школы – конф. (Красноярск, 7-9 октября 2008). – Красноярск, 2008. – С. 307-308.

29. Строганова, специфических гипериммунных сывороток к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота / // Аграрно-экономическая наука республики Тыва: основные результаты и перспективы: Сб. материалов межрегион. науч.–практ. конф. ( Кызыл, 8-10 августа 2009). – Кызыл, 2009. – С. 137-140.

30. Строганова, эритроцитарных антигенов респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота / , // Там же. – С. 141-144.

31. Строганова, диагностика респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота и коз в реакции непрямой гемагглютинации / , // Там же. – С. 144-148.

32. Строганова, вирусных пневмоэнтеритов крупного рогатого скота в хозяйствах Красноярского края / // Инновации в науке и образовании: опыт, проблемы, перспективы развития: материалы Всероссийской науч.–практ. конф. (ФГОУ ВПО КрасГАУ, 20 апреля 2009). – Красноярск, 2009. – С. 308-309.

33. Строганова, вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота в хозяйствах Средней Сибири / // Проблемы современной аграрной науки: материалы междунар. заочн. науч. конф. (Красноярск,15 октября 2009). – Красноярск, 2009. – С. 99-101.

34. Войтова, респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в молочно – товарных хозяйствах / , , // Научные основы производства ветеринарных биологических препаратов: междунар. конф., посвящ. 40-летию ВНИТИБП, отдел вет. мед. Россельхозакадемии (Щелково, 9-10 декабря 2009). – ВНИТИБП, 2009. – С. 242-245.

35. Строганова, болезни крупного рогатого скота в Средней Сибири / // Ветеринарная медицина. Современные проблемы и перспективы развития: междунар. науч.–практ. конф. (Саратов, 16 марта 2010). – Саратов, 2010. – С. 408-410.

36. Глотов, эффективность диагностических мероприятий при вирусных болезнях крупного рогатого скота /, , // Проблемы экономического развития и обеспечения безопасности в области ветеринарии: Всероссийская науч.-практ. конф. (Троицк,18 марта 2010). – Троицк, 2010 – С. 53-56.

37. Строганова, вирусных респираторных болезней крупного рогатого скота в Восточной Сибири / // Современные научно–практические достижения в ветеринарии: междунар. науч.–практ. конф. (Киров, 15-16 апреля 2010). – Киров, 2010. – С. 210-212.

38. Луков, болезни крупного рогатого скота в Восточной Сибири / , // Новейшие направления развития аграрной науки в работах молодых ученых: тр. IV межд. науч. конф. молодых ученых 22-23 апреля 2010 г. (п. Краснообск, 22-23 апреля 2010). – Новосибирск, 2010. – С. 91-94.

39. Строганова, респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота в хозяйствах Красноярского края / , // Инновация в науке и образовании: опыт, проблемы перспективы развития: материалы Всероссийской очно-заочной науч.-практ. конф. (Красноярск, 22 апреля 2010). – Красноярск, 2010. – С. 256-258.

40. Строганова, эпизоотической ситуации по вирусным респираторным болезням крупного рогатого скота в Иркутской области / , // Научные основы улучшения ветеринарного благополучия и продуктивности животных: сб. материалов междунар. науч.-практ. конф. (Кызыл, 14-16 июня 2010). – Кызыл, 2010. – С. 139-142.

41. Акбаева, специфических гипериммунных сывороток к респираторно-синцитиальному вирусу крупного рогатого скота на баранах и кроликах / , // Там же. – С.19-21.

42. Акбаева, антигена респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота при получении тест-системы для серологической диагностики РСИ в реакции непрямой гемагглютинации / , // Там же. – С. 15-18.

43. Глотов, ПЦР для индикации респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота / , , // Аграрная наука – сельскохозяйственному производству Монголии, Сибири и Казахстана: сб. науч. докл. XII междунар. науч.-практ. конф. (Улаанбаатор, 6-7 июня 2010). – Новосибирск, 2010. – С. 78-81.

44. Строганова, эпизоотической ситуации по вирусным болезням крупного рогатого скота в Республике Хакасия / , // Проблемы современной аграрной науки: материалы междунар. заочной науч. конф. (Красноярск, 15 октября 2010). – Красноярск, 2010. – С. 68-70.

45. Глотов, механизмы синергизма вирусов и бактерий Mannheimia haemolytica A1, способствующие возникновению бронхопневмонии у телят / , , // Актуальные вопросы ветеринарной медицины Сибири: материалы междунар. науч.-практ. конф., посвящ. 70-летию со дня основания ИЭВСиДВ (п. Краснообск, 28-29 октября 2010). Россельхозакадемия. Сиб. регион. отд-ние. ГНУ ИЭВСиДВ. – Краснообск, 2010. – С. 27-32.

46. Глотов, диагностики респираторных болезней крупного рогатого скота, вызываемых РНК-содержащими вирусами / , , // Там же. – С. 33-40.

47. Войтова, методов ПЦР для изучения распространения респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Сибири / , , // Молекулярная диагностика – 2010: сб. науч. тр. VII Всероссийской науч.-практ. конф. с междунар. участием 24-26 ноября. Т.2. – Москва, 2010. – С. 79-80.