Такую морфологию имеют кокковые формы бактерий в частности стафилококки. Характерное расположение шаровидных бактерий связано с их делением в разных плоскостях. К шаровидным микроорганизмам относятся также сарцины, микрококки, стрептококки, тетракокки, диплококки.

  Задача №18.

1.Бобовидную форму имеют такие диплококки, как гонококки и менингококки.  2.Обнаруженные диплококки относятся к грамотрицательным коккам – Neisseria meningitidis

3. Для окраски бактерий был использован сложный метод окраски по Граму:

    карболово-спиртовой раствор генцианового-фиолетового; раствор Люголя; 95% этиловый спирт; водный раствор фуксина (фуксин Пфейффера).

Задача №19.

При микроскопии были определены морфологические и тинкториальные свойства микроорганизмов. Был использован метод Грама, основе которого лежит способность бактерий удерживать образовавшийся комплекс генцианового-фиолетового с йодом.  Это зависит от различий химическом составе и проницаемости клеточной стенки Гр+  и Гр - бактерий. У грамположительных бактерий она содержит многослойный пептидогликан, со связанными с ним тейхоевыми кислотами, у грамотрицательных - однослойный пептидогликан, наружная мембрана, пронизанная белками-поринами, обеспечивающие диффузию различных соединений. Дифференциация бактерий на Гр+  и Гр - происходит на этапе обесцвечивания этиловым спиртом.

Задача №20.

Для бактериоскопического метода могли быть использованы дифференциальный метод окраски Грама и простой, с 1% феноловым раствором генцианового фиолетового. Микроскопический метод исследования позволяет определить у микробов морфологические и тинкториальные свойства, а  в случае изучения нативных препаратов – подвижность и ультраструктуру. По характеру расположения изученные бактерии относятся: парные кокки к диплококкам, цепочки палочек – стрептобациллам.

Задача №21.

НЕ нашли? Не то? Что вы ищете?
Шаровидные бактерии, располагающиеся в виде цепочек – это стрептококки. Для бактериоскопии была использована иммерсионная система светового микроскопа, которая предназначена для усиления яркости изображения и увеличения разрешающей способности световой микроскопии. Мазок мог быть окрашен либо дифференциальным методом Грама, либо простым способом с использованием 1% фенолового раствора генцианового-фиолетового.

Задача №22.

Морфологические и тинкториальные свойства изучаются с целью установления их принадлежности  к одной из четырех форм, а также, наряду с другими признаками, при определении вида выделенных чистых культур. Такая морфологическая картина характерна для стрептококков. Они способны вызывать ангину, абсцессы, гнойно-септические заболевания, скарлатину, ревматизм и др. Расположение кокков в виде цепочек обусловлено их делением в одной плоскости.

Задача №23.

Розовато-красный цвет при окраске по Граму имеют грамотрицательные бактерии. Изучение тинкториальных свойств проводится для определения чистоты культуры и видовой принадлежности микроорганизмов. Палочковидные бактерии могут различаться по форме концов, размеру, цвету и расположению в препарате.

Задача №24.

Грамположительные стрептобациллы – Bacillus anthracis - сибиреязвенная палочка. Метод дает возможность деления бактерий на Гр+ и Гр - и используется в целях определения видовой принадлежности микробов, что очень важно при микробиологической диагностике некоторых инфекционных заболеваний. Основная ошибка, допускаемая при окраске по методу Грама, происходит на этапе обесцвечивания мазка этиловым спиртом: при «переобесцвечивании»  грамположительные могут утратить первоначальную окраску генциановым-фиолетовым и приобрести красный цвет в результате последующей докраски мазка фуксином; при «недообесцвечивании» грамотрицательные бактерии могут сохранить сине-фиолетовый цвет генцианового-фиолетового (характерного для грамположительных бактерий). Необходимо строго соблюдать технику обесцвечивания.

Задача №25.

Микрофлора суспензии представлена ассоциацией микроорганизмов – кокками (стафилококками) и палочками (бактериями). Окраска мазка из суспензии была произведена дифференциальным методам окраски по Граму. Для окраски по классическому методу Грама необходимы следующие растворы:
    карболово-спиртовой генциановый-фиолетовый; раствор Люголя; спирт этиловый 95%; водный раствор фуксина (фуксин Пфейффера).

  На фиксированный мазок кладут полоску фильтровальной бумаги. На бумагу наливают раствор генцианового-фиолетового на1-2 мин. Сливают краску с бумагой и, не промывая водой, наливают раствор Люголя, до почернения мазка. Затем раствор Люголя сливают и на 1-2 мин., наливают  спирт на мазок или окунают в спирт (обесцвечивают до отхождения фиолетовых струек). Промывают водой, высушивают, микроскопируют.

Задача №26.

При бактериоскопии определяются морфологические и тинкториальные свойства. Для определения тинкториальных свойств бактерий использование простого метода окраски недостаточно, т. к. это не позволяет дифференцировать Гр+ и Гр - микроорганизмы. Фуксин Пфейффера или водный раствор фуксина готовят путем разведения его в соответствии 1:10 (т. е. 1 капля красителя + 9 капель дистиллированной воды).

Задача №27.

Микрофлора исследуемого материала представлена двумя видами бактерий – кокками (стафилококки) и палочками. Определение микрофлоры перитонеального экссудата было проведено сложным методом окраски по Граму, для которого необходимы следующие реактивы:
    карболовый спиртовой раствор генцианового-фиолетового; раствор Люголя; спирт этиловый 95%; фуксин Пфейффера (водный раствор фуксина).
По отношению к методу окраски по Граму все бактерии делятся на грамположительные (фиолетовые) и грамотрицательные (розово-красные)

Задача №28.

Другое название палочек – бактерии, от греческого “bakterion”. Палочковидные формы микробов по взаимному расположению имеют несколько разновидностей:
    диплобактерии и диплобацилллы – располагаются попарно; стрептобактерии и стрептобациллы – располагаются цепочками; бактерии и бациллы – не имеют определенной системы расположения.
Окраска мазка могла быть осуществлена как сложным методом по Граму, так  и простым – фуксином Пфейффера.

Задача №29.

Для определения подвижности бактерий используется столбик полужидкого агара. Посев производят уколом на глубину 1-1,5 см.  полужидкой среды. Подвижные виды дают диффузное помутнение среды (разрастание в среду), неподвижные - растут по ходу посева (укола). Исследование препаратов «раздавленная» и «висячая» капли с использованием темнопольной или фазово-контрастной микроскопии.

Задача №30.

При микроскопии окрашенных препаратов можно определить морфологические и тинкториальные свойства микроорганизмов. Метод диагностики – бактериоскопический. Грамотрицательные кокки:
    представители рода нейссерии – менингококки (Neisseria meningitidis) и гонококки (Neisseria gonorrhoeae); представители рода вейлонелла (Veilonella)

Задача №31.

Обнаруженные структурные компоненты – включения. В данном случае применен простой метод окраски по Леффлеру; краситель-щелочной метиленовый синий. Зерна волютина у бактерий выполняют функцию запаса питательных веществ. Их содержат спириллы (Spirillum volutans) и коринебактерии (Corynebacterium diphtheria – возбудитель дифтерии, Corynebacterium psedodiphtheriae  -  ложнодифтерийная палочка, Corynebacterium acnes et  xerosis – дифтероиды).

Задача №32.

Можно предположить, что выделенный микроорганизм – дифтерийная палочка (Corynebacterium diphtheriae). Для выявления зерен волютина использован сложный метод окраски по Нейссеру. На фиксированный мазок наносят ацетат синьки Нейссера на 2-3 мин., краску сливают и добавляют раствор Люголя на 10-30 сек., смывают Люголь водой и докрашивают водным раствором везувина или хризоидина в течение 30-60 сек., промывают препарат водой, высушивают и микроскопируют.

  Зерна волютина, имеющие щелочную реакцию, избирательно воспринимают ацетат синьки Нейссера, окрашиваясь в темно-синий цвет.  Цитоплазма клетки, обладающая кислой реакцией, воспринимает щелочной краситель (везувин или хризоидин) и окрашиваются в желтый цвет.

Задача №33.

В микробиологической практике применяют насколько методов окраски для выявления спор: Ожешко, Пешкова, Шеффера-Фултона. Чаще всего используют метод Ожешко. При наличие в материале клостридий ботулизма и их спор в мазке можно обнаружить деформированные крупные синие  палочки и красные круглые споры. Техника окраски следующая: на нефиксированный мазок наносят 0,5% раствор хлористоводородной кислоты и подогревают в течение 2-3 мин. Кислоту сливают, препарат промывают водой, просушивают и фиксируют над пламенем. На фиксированный мазок наносят карболовый раствор фуксина через полоску фильтровальной бумаги и подогревают до появления паров (повторяют 2-3 раза). Снимают бумагу, промывают мазок водой. Наносят 5% раствор серной кислоты на 1-2  мин  для обесцвечивания. Промывают водой и докрашивают водным раствором метиленового синего в течение 3-5 мин. Промывают водой, высушивают и микроскопируют.

Задача №34.

В микробиологической практике применяют насколько методов окраски для выявления спор: Ожешко, Пешкова, Шеффера-Фултона. Спорообразующие бактерии в основном бациллы (Bacillus anthracis – сибиреязвенная палочка, Bacillus cereus – картофельная палочка, Bacillus subtilis – сенная палочка) и клостридии (Clostridium perfringens – возбудитель газовой гангрены, Clostridium tetani – возбудитель столбняка,  Clostridium botulinum – возбудитель ботулизма) Споры в бактериальной клетке могут располагаться субтерминально, терминально и центрально.

Задача №35.

Допущены следующие ошибки: после накрытия покровным стеклом образовались пузырьки воздуха и материал исследуемый вышел за его края, что является недопустимым. Для изучения подвижности микроорганизмов можно использовать как сухую, так и иммерсионную системы микроскопа. Активной подвижностью считается, когда  бактерии движутся в разных направлениях, иногда совершают вращательные движения.

Задача №36.

К морфологическим признакам относят: форму, расположение в препарате, наличие определенных структурных компонентов, размеры микробной клетки. Цель изучения морфологии бактерий – установление принадлежности их к одной из форм: кокковым, палочковидным, извитым микробам, а также для идентификации выделенных чистых культур. В микробиологической практике изучение морфологических свойств микроорганизмов в окрашенных мазках проводят с использованием иммерсионной (погружной)  системы светового микроскопа, которая позволяет ярче осветить поле зрения и расширить пределы изображения.

Задача №37.

Подвижность бактерий можно определить методом «раздавленная» и «висячая» капли, а также посевом в столбик полужидкого агара. Наличие у бактерий жгутиков обусловливает их подвижность. По расположению жгутиков  подвижные бактерии делят на несколько групп:
    монотрихи – бактерии с одним жгутиком на конце, амфитрихи – бактерии со жгутиками на обеих концах, лофотрихи – бактерии с пучком жгутиков на одном конце, перитрихи – бактерии со жгутиками по всей поверхности.

Задача №38.

Такая морфология характерна в основном для стафилококков. Расположение стафилококков в препарате сравнивают с «гроздьями винограда». Такие неправильные скопления кокков формируется из-за деления в различных плоскостях.
    на фиксированный мазок накладывают полоску фильтровальной бумаги, заранее пропитанной раствором генцианового-фиолетового,
    наносят на бумагу 2-3 капли воды и оставляют на 1-2 мин, снимают бумагу пинцетом и наливают раствор Люголя на 1-2 мин., обесцвечивают 0,5% этиловым спиртом, покачивая стекло до отхождения сине-фиолетовых струек, промывают препарат водой и дополнительно докрашивают фуксином Пфейффера (1-2 мин.), сливают краску, промывают водой, высушивают, микроскопируют.

Задача №39.

Оптимальный метод для выявления риккетсий – метод Здродовского. На фиксированный мазок наносят разведенный фуксин Циля (10-15 капель на 10 мл дистиллированной воды) на 5 мин. Промывают водой. Обрабатывают мазок 0,5% раствором лимонной кислоты или 0,01% раствором соляной кислоты в течение 2-3 сек. Промывают водой и докрашивают метиленовым синим 30-60 сек. Промывают водой, высушивают, микроскопируют. При микроскопии в поле зрения обнаруживаются внутриклеточно расположенные красные риккетсии на сине-голубом фоне эукариотической клетки. 

Задача №40.

На фиксированный мазок наносят рабочий раствор красикапли красителя на 1мл  дистиллированной воды) на 20-30 мин. Промывают препарат водой, высушивают на воздухе, микроскопируют. Боррелии окрашиваются в фиолетовый цвет, лептоспиры – в розово-сереневый цвет, трепонемы -  в бледно-розовый цвет. Отличаются спирохеты по характеру и количеству завитков. Лептоспиры имеют первичные и вторичные завитки, боррелии – неравномерные 5-8 завитков, трепонемы – равномерные 8-14 завитков. 

Задача №41.

Ползучий рост выделенной бактериальной культуры обусловлен ее подвижностью. Подвижность бактерий связана с наличием у них жгутиков. Для определения наличия жгутиков бактерий используют прямые и косвенные методы. Прямые определения жгутиков проводят с использованием специальных методов окраски, а косвенные – методы «висячая» и «раздавленная» капли и посев в полужидкий агар.

Литература:


Медицинская микробиология, вирусология и иммунология /. -  М., МИА, 2002. – 736 с. Руководство к лабораторным знаниям по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии / , -Соколов, .- М.,Медицина, 1993. – 240 с. Медицинская и санитарная микробиология /, , . -  М., АКАДЕМИЯ, 2003. – 460 с. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. / под ред. акад. РАМН , проф. Бойченко.- М.,ГЭОТАР-Медиа, 2011.- т.1.- 448 с. Медицинская микробиология, вирусология и иммунология / под ред. акад. РАМН и ,- М.: МИА, 2008. – 702 с. Руководство к практическим занятиям по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии / под ред. , М.: Медицина, 2002. – 350 с. Микробиология с основами эпидемиологии и методами микробиологических исследований / . - СПб.: СпецЛит, 2010. – 598 с. Основы систематики микроорганизмов. Морфология, ультраструктура микробов и методы изучения / .- Ростов-на-Дону, КМЦ «КОПИЦЕНТР», 2014. – 78 с.

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4