Возбудители. У осетровых рыб встречаются два вида цестод: Amphilina foliacea и Ajaponica из семейства Amphilinidae. Половозрелые цестоды листовидно-овальной формы, белого цвета, длиной 25—40 мм, шириной 8—12 мм. Тело гельминтов не расчленено. Передний конец снабжен втяжным хоботком. В яйце развивается личинка — ликофора с десятью крючками.

Биология развития. Цестоды развиваются с участием промежуточных хозяев — бокоплавов (Dikerogammarus haemobaphes, Gammams platycheir, Corophium curvispinum и Metamysis strauchi) (рис. З). В теле бокоплавов из яиц гельминта развиваются процеркоиды (хвостатые личинки), достигающие инвазионной стадии за 30—40 сут. Осетровые рыбы заражаются при поедании промежуточных хозяев, инвазированных процеркоидами. Из кишечника последние внедряются в полость тела, где развиваются до половозрелых гельминтов.

Рис.3. Биологая развития Amphilina sp.:

1 — дефинитивные хозяева

(а — осетр, 6— стерлядь, в — севрюга);

2 — яйца; 3 — (бокоплав);

4 — бокоплавы с процеркоидами;

5 — A. foliacea; 6— Ajaponica;

7— ликофора

Нематодозы

Контрацекоз

Данное заболевание вызывается нематодой Contracaecum bidentatum из семейст Anisakidae, подотряда Ascaridata.

Возбудитель. Личинки нематоды контрацекум размером 1—2 см, слегка розоватого цвета, встречаются в инцистированном и свободном виде. Свободно лежащие личинки S-образно изогнуты и лежат в полости тела.

Промежуточными хозяевами паразита обычно являются низшие ракооб­разные — бокоплавы, а также личинки мошек и комаров. В свою очередь они составляют основу питания молоди осетровых рыб.

НЕ нашли? Не то? Что вы ищете?

Окончательными хозяевами гельминта являются рыбоядные птицы или морские млекопитающие.

Болезни рыб, возбудителями которых являются представители класса Ракообразные (Crustacea), называются крустацеозами. У рыб паразитируют раки, относящиеся к 3 отрядам: Copepoda (веслоногие), Branchiura (жаброхвостые) и Isopoda (равноногие).

Аргулёз

Аргулёз — инвазионная болезнь пресноводных рыб, вызываемая паразитическими рачками из отряда Жаброхвостые (Branchiura), семейства Argulidae. Рачки паразитируют на коже.

Распространение и экономический ущерб. Аргулёз распространен довольно широко в прудах, садках, особенно в южных регионах России и многих других стран. Он наносит ущерб за счет гибели молоди рыб, снижения их роста и упитанности, а также затрат на лечебно-профилактические обработки рыб.

Возбудители. В нашей стране встречаются три основных вида аргулюсов: Argulus foliaceus — паразитирует преимущественно у карповых и других рыб; A. coregoni — паразитирует у лососевых и сиговых рыб Сибири и Дальнего Востока; A. japonicus — обнаруживается у карпов и других видов рыб в разных водоемах. A. foliaceus — до-

вольно крупный рачок, длиной 6—7 мм. Тело рачка овальное, округлой формы, состоит из слитой головогруди и маленького брюшка; спинная часть покрыта щитком. Имеются глаза, стилет, сосательный хоботок, четыре пары плавательных ножек.

Биология развития. Самки откладывают икру, содержащую яйца, на подводные камни, коряги, гидросооружения, и она плотно прикрепляется к субстрату. В кладке насчитывают до 250—300 яиц. В зависимости от температуры воды через 3—5 нед в яйцах развиваются личинки. Вылупившиеся из яиц личинки с длинными задними антеннами и неоформившимися присосками свободно плавают в воде 2—3 сут и, если за это время не попадут на рыбу, погибают. На рыбе личинки быстро растут, претерпевают сложный метаморфоз и через 2—3 нед превращаются в половозрелых рачков. За лето они могут дать до трех новых поколений аргулюсов.

Псевдотрахелиостоз

Заболевание вызывает рачок Pseudotracheliastes stellatus, обнаруженный у белуги, осетра и бестера в рыбоводных хозяйствах Азовского бассейна.

У больных рыб наблюдается устойчивая анемия, указывающая на ухудшение их физиологического состояния. Общее количество лейкоцитов увеличивается. В лейкоцитарной формуле отмечается сдвиг клеточных элементов: % нейтрофилов и эозинофилов падает, а лимфоцитов повышается. Установленный лимфоцитоз указывает на хроническое течение патологического процесса. При высокой интенсивности инвазии рачки значительно разрушают кожные покровы и портят товарный вид рыбы.

Эргазилёз

Возбудителем заболевания является Ergasilus sieboldi. Паразитируют только самки, самцы ведут свободный образ жизни.

Развитие рачков происходит прямым путём, с метаморфозом. Из яйца выходит личинка — науплиус, свободноплавающий в воде. Претерпев ряд линек рачки созревают. После оплодотворения рачки переходят к паразитированию. Органами прикрепления эргазилюса служат длинные крючковидные антенны, расположенные на переднем конце.

Заболевание отмечено у годовиков бестера и белуги в садках. В местах прикрепления

рачков наблюдается разрушение и воспаление жаберной ткани. Профилактика эргазилёза в садковых хозяйствах достигается путём установления садков с рыбой на участках водоёмов с глубиной не менее 4-6 м на расстоянии 50-100 м от прибрежных зарослей. Для совобождения рыб от рачков используются растворы хлорофоса в концентрации 100 мг/л в течение 1 часа.

Техника паразитологического вскрытия рыбы

Для исследования жаберного аппарата удаляют жаберные крышки, вырезают жаберные дуги с жаберными лепестками и помещают на препаровальные стекла, смачивают водой и рассматривают первоначально под лупой. На жабрах можно обнаружить моногеней, яйца сангвиникол, рачков и др.

Глаза извлекают из глазных впадин, помещают на предметное стекло и вскрывают острыми ножницами белочную оболочку. Стекловидное тело и хрусталик компрессируют между двумя предметными стеклами и просматривают под микроскопом. При этом часто обнаруживают личинок диплостом.

Вскрывают брюшную полость дугообразным разрезом от анального отверстия к основанию левого грудного плавника. Боковую стенку отворачивают пинцетом и осматривают брюшную полость, обращая внимание на наличие ремнецов, нематод, а под серозными покровами и в брыжейке — на цисты и капсулы, содержащие личи­ночные стадии ленточных и круглых червей и др.

Сердце извлекают из сердечной полости, помещают на стекло, вскрывают, добавляют немного физиологического раствора и раздавливают другим стеклом. В нем обнаруживают сангвиникол и др.

Печень, поджелудочную железу, селезенку, почки исследуют по одинаковой методике. Сначала проводят наружный осмотр этих органов, а затем их разрезают на кусочки, компрессируют и микроскопируют. Для исследования желчного и мочевого пузырей их помещают на стекло, вскрывают и собирают содержимое, после чего микроскопируют. В отдельных случаях делают соскобы со слизистых оболочек пузырей и также микроскопируют. Указанные органы являются местом обитания личинок гельминтов и других паразитов.

В плавательном пузыре исследуют стенки и полость, в которых могут быть обнаружены миксоспоридии, личинки филометроидосов. Половые органы исследуют компрессорным методом. В них могут локализоваться плероцеркоиды лентецов.

Фиксация и хранение паразитов

Гельминтов собирают с органов в солонки или чашки Петри, промывают от слизи водой или физиологическим раствором и выдерживают в них до гибели паразита. Моногенетических сосальщиков сразу заключают в глицерин-желатин на предметных стеклах или фиксируют в 4%-ном растворе формалина. Трематод, ленточных червей и скребней фиксируют 70°-ным спиртом между стеклами так, чтобы они расправились, а у скребней вышел хоботок; нематод и личинок цестод консервируют в жидкости Барбагалло. Метацеркарий трематод необходимо по возможности изучать живыми. Параллельно с живыми необходимо фиксировать метацеркарий для дальнейшего изготовления препаратов. Для фиксации используется уксуснокислый кармин.

Паразитических рачков фиксируют в 70°-ном спирте или 4%-ном формалине, пиявок— в 4%-ном формалине, не раздавливая, и глохидий в 70% спирте.

Паразиты, собранные из разных органов или относящиеся к разным систематическим группам, фиксируются в разных пробирках. Каждая пробирка снабжается этикеткой, где записывается дата сбора, место сбора, вид рыбы, орган и количество паразитов. Пробирки закрываются ватной пробкой и сохраняются в материальной банке с фиксатором. В дальнейшем материал направляется в лабораторную обработку, где проводится его точное определение, окраска и изготовление препаратов.

Лабораторная работа №6

Тема: «Методика полного паразитологического исследования».

ЦЕЛЬ: Ознакомиться с общими принципами и порядком методики полного паразитологического анализа рыб.

ЗАДАНИЕ:

1. Провести внешнее обследование рыбы и взятие крови.

2. Ознакомиться с ходом полного паразитологического вскрытия.

3. Научиться собирать, фиксировать паразитов.

4.Провести паразитологическое вскрытие рыб и подготовить паразитологическое заключение.

Объекты:

1. Живая рыба - карп, толстолобики, амур.

2. Определитель паразитов рыб (т. 1,2,3.).

3. Лабораторный практикум по болезням рыб.

МАТЕРИАЛЫ И ОБОРУДОВАНИЕ:

1. Дистиллированная вода

2. Уксусно-кислый кармин.

3. Физраствор.

4. Спирты (70-75°, 80-85°, 90°. 100°),

5. Ксилол.

6. Железный гематоксилин.

7. Жидкость Шаудина.

8. Жидкость Барбагалло.

9. Диметилфталат.

10. Подкисленный 70° спирт.

11. Нашатырный спирт.

12. Кодированный спирт.

13. Глицерин.

14. Бальзам.

15. Глицерин-желатин.

16. 4% формалин.

17. 2% р-р азотнокислого серебра.

18. Канифольная замазка.

19. Предметные стекла. 20.Покровные стекла.

21. Микроскоп.

22. Бинокуляр.

23. Часовое стекло.

24. Лупы ручные.

25. Препаровальные иглы.

26. Специальные иглы для извлечения трематод из цист.

27. Пинцеты.

28. Мягкая кисточка.

29. Стекла препаровальные (5x6 см).

30. Чашки Петри.

31. Солонки.

32. Глазные пипетки.

33. Банки с притертой пробкой.

34. Ножницы (глазные, кишечные, прямые, кривые и т. п.).

35. Скальпели.

36. Спиртовка.

37. Объект-микрометр

38. Окуляр-микрометр.

39. Рисовальный аппарат.

40. Тушь и ручка.

41. Белая бумага.

42. Карандаши.

43. Настольная лампа.

ХОД РАБОТЫ:

Пользуясь методом полного паразитологического вскрытия, можно наиболее

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12