Дифференциально-диагностические свойства и чувствительность к антибактериальным препаратам бактерий Pseudomonas aeruginosa (стр. 16 )

При изучении чувствительности P. aeruginosa к действию экстрактов лекарственных растений  применяли метод диффузии в агар.  На поверхности агара формировали лунки диаметром 6,0±0,1 мм, в которые вносили 0,05 мл исследуемого  раствора активного  экстракта растения. По окончании культивирования  определяли диаметр зоны задержки роста. В результате эксперимента было установлено, что для P. аeruginosa антибактериальной активностью обладали Коптис китайский (Coptis chinensis) – 11,5±0,97 мм, Шлемник байкальский (Scutellariabaicalensis Georgi) – 7,0±0,59 мм; для энтеробактерий (E. coli, C. freundii, Y. enterocolitica) – Японская жимолость (Honeysuckle aqueous) – 8,0±0,64 – 10,0±0,83 мм, Коптис китайский (Coptis chinensis) – 11,0±0,91 – 13,0±1,1, Шлемник байкальский (Scutellariabaicalensis Georgi) – 9,0±0,75 – 11,0±0,91, Чай Пуэр (Var. Assamica) – 9,5±0,79 – 10,0±0,83. При изучении чувствительности микроорганизмов к антибиотикам в сочетании с экстрактом растения Honeysuckle aqueous установлено, что при сочетанном действии антибиотиков и экстрактов Honeysuckle aqueous диаметр зоны задержки роста (мм) P. аeruginosa к ципрофлоксацину составил 25,50±2,12; цефтазидиму – 24.0±2,00; гентамицину – 18,50±1.54.

При исследовании чувствительности к дезинфицирующим препаратам микроорганизмов использовали методы диффузии в агар и  серийных разведений. Для контроля качества дезинфицирующих препаратов применяли пластины «Дип-слайд» («Oxoid», Англия). Для изучения чувствительности микроорганизмов, выделенных из сырья и пищевых продуктов, использовали препарат «Дезант», содержащий 1,6,3,8-диметано-1,3,6,8-тетраазациклодекан – четвертичное аммониевое соединение (ЧАС) по активному действующему веществу. Установлено, что бактерицидное действие ЧАС связано с дезактивацией ферментов, денатурацией клеточных белков и разрушением оболочки бактериальных клеток. На основании результатов исследований установлено, что зоны задержки роста микроорганизмов P. аeruginosa составляли  7,20±1,34 – 9,90±2,33 мм; P. putida  – 8,80±1,36 мм; C. freundii– 17,90±2,11мм; E. аerogenes – 18,20±1,55 мм. При оценке чувствительности микроорганизмов к дезинфицирующему препарату «Дезант», наряду с общепринятым методом диффузии в агар, нами были апробированы тест-пластины «Дип-слайд», предназначенные для бактериологического исследования поверхностей. «Дип-слайды» содержали следующие питательные среды: Цетримидный агар («Cetrimide agar») – селективный агар с цетримидом для выделения P. aeruginosa в различных образцах;  Цистин-лактозный агар («CLED») – среда для выделения и дифференциации возбудителей (E. coli, Klebsiellaspp., Proteuss pp., Salmonella spp., Ps. aeruginosa, E. fuecalis, S. aureus, Carynebaсteria, Lactobacillus); Мак Конки («Mac Conkey») – среда для выделения и дифференциации колиформных бактерий и возбудителей кишечных инфекций в пищевых продуктах. Метод индикации и идентификации псевдомонад с использованием пластин  «Дип-слайдов» позволял сократить время проведения эксперимента (поскольку посев на несколько сред происходит одновременно), расход питательных среды и расходные материалы на этапе первичного посева, облегчал транспортировку проб в лабораторию. Метод прост в исполнении, информативен, за счет комбинаций дифференциально-диагностических питательных сред, которые позволяли одновременно определить количество мезофильных аэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов (КМАФАнМ), псевдомонады и энтеробактерии. «Дип-слайды» возможно использовать для проведения контроля дезинфекции.

На основании результатов собственных исследований установлено, что для дифференциации P. aeruginosa эффективной является среда «Cetrimide agar», которая обладает  ростообеспечивающими  свойствами, ингибирует рост грамположительной бактерий, позволяет дифференцировать P. aeruginosa от бактерий, чувствительных к  четвертичным аммониевым  соединениям, специфичность среды – 94,8 %. Из числа культур микроорганизмов Pseudomonas  aeruginosa, выделенных из пищевого сырья и продуктов, 79,8%  чувствительны к антибиотикам группы в-лактам (цефоперазон, цефотаксим, цефепим, азтреонам, имипенем, меропенем); 51,8% – аминогликозидам (гентамицин, тобрамицин, нетилмицин), 88,4% – хинолонам (норфлоксацин, пефлоксацин, ципрофлоксацин, левофлоксацин, ломефлоксацин); в то время как 58,1 % устойчивы к хлорамфениколу, тетрациклину, доксициклину. Установлена антиадгезивная активность 1,0 – 4,0 % растворов желчи и антибактериальная активность лекарственных растений: Коптис китайский, Шлемник байкальский, Японская, Чай Пуэр. Исследование контаминированных бактериями P. aeruginosa  жидкостей и поверхностей эффективно при применении пластин «Дип-слайд», т. к. позволяет  сократить на этапе первичного посева  время проведения эксперимента, расход питательных сред и расходные материалы на этапе первичного посева, за счет комбинаций дифференциально-диагностических питательных сред для количественного учета и дифференциации псевдомонад от сходных видов грамотрицательных бактерий.

ВЫВОДЫ

1. Установлена изменчивость  морфологии колоний  P. aeruginosa, проявляющаяся  диссоциацией на S-, R-, М-формы колоний: S-формы  имели типичную для вида палочковидную форму и гладкие края колоний; у R-форм наряду с типичными для данного вида  бактериями по морфологическим критериям выявлен гетероморфизм; М-формы представлены сливными слизистыми колониями под массивными покровами (биопленками).

2. На основе сравнительной оценки и подборе эффективных дифференциально-диагностических селективных сред и тест-систем при идентификации бактерий, выделенных из пищевого сырья и продуктов, выделено и идентифицировано 43 культуры микроорганизмов, в том числе 19 (44, 3 %) P. aeruginosa; 5 (11,6 %) P. fluorescens; 3 (7,0 %) P. putida;4 (9,3%) C. freundii; 4 (9,3 %) E. aerogenes, 5 (11,6 %) P. mirabilis,  3 (7,0 %) E. tarda. 

3. Цитопатическое действие бактерий Pseudomonas aeruginosa  на ткани и органы птиц характеризовалось преобладанием процессов, развивающихся по типу реакции гиперчувствительности замедленного типа, сочетанием общей сосудистой реакции с дистрофическими и некротическими изменениями паренхиматозных органов, признаками макрофагальных реакций  с последующим заполнением мозгового вещества лимфоидных фолликулов псевдоэозинофильными лейкоцитами, экссудативно-инфильтративными процессами тканей и органов иммунной системы.

4. С применением модифицированного метода изучения антагонистической активности бактерий установлено, что биологически активные вещества, продуцируемые бактериями P. aeruginosa, угнетали рост бактерий: S. enteritidis– 11,3±0,1; K. pneumonia– 11,0±0,3; C. freundii– 10,3±0,2;  Y. enterocolitica – 10,0±0,2.

5. При изучении чувствительности к антибактериальным препаратам установлено, что 79,8 % культур микроорганизмов Pseudomonas aeruginosa, выделенные из пищевого сырья и продуктов, были чувствительными к антибиотикам группы в-лактам (цефоперазон, цефотаксим, цефепим, азтреонам, имипенем, меропенем); 51,8 % – аминогликозидам (гентамицин, тобрамицин, нетилмицин), 88,4 % – хинолонам (норфлоксацин, пефлоксацин, ципрофлоксацин, левофлоксацин, ломефлоксацин); 58,1 % были устойчивы к хлорамфениколу, тетрациклину, доксициклину.

6. При изучении антибактериальной  активности установлена антиадгезивная активность лекарственных растений (Коптис китайский; Шлемник байкальский; Японская жимолость; Чай Пуэр) и 1,0–4,0 % растворов желчи.

7. Исследование контаминированных бактериями P. aeruginosa  жидкостей и поверхностей эффективно при применении пластин «Дип-слайд», т. к. позволяет  сократить на этапе первичного посева  время проведения эксперимента, расход питательных сред и расходные материалы на этапе первичного посева, за счет комбинаций дифференциально-диагностических питательных сред для количественного учета и дифференциации псевдомонад от сходных видов бактерий.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

На основе изучения морфологии  Pseudomonasaeruginosaмодифицирована методика подготовки препаратов для  исследования популяционной изменчивости бактерий без нарушения естественной архитектоники колоний. Для дифференциации бактерий P. aeruginosa от сходных видов бактерий рекомендуется использовать среду «HiChromMedium» (специфичность идентификации – 80,0 %), для количественного учета и видовой идентификации бактерийP. aeruginosa – схему бактериологического исследования с применением среды «Сetrimideagar», специфичность идентификации – 94,8 %.

Список литературы

Атлас анатомии бактерий, патогенных для человека и животных /  , , . –  М.: Медицина, 1972. – 181c. Итоги бактериологических исследований рыб в рыбоводных хозяйствах различного типа и естественных водоемах Калининградской области / , // Успехи современного естествознания. – 2006. – № 1 – С. 29-29. рименение препаратов на основе цефалоспоринов при лечении клинического мастита у коров / В. Авдеенко // Молочное и мясное скотоводство. – 2013. – № 7. – С. 33-36. Чувствительность грамотрицательных бактерий, продуцентов карбапенемаз, к антибиотикам различных групп /, , // Антибиотики и химиотерапия. – 2013. – том 58. – № 3-4. – С.10 – 13. Модификация антибиотикорезистентности в условиях микробного симбиоза / , , // Антибиотики и химиотерапия. – 2010. – том 55. – № 5-6. – С.14-17. Характеристика культур Pseudomonas aeruginosa, выделенных от быков–производителей и объектов внешней среды : автореф. дис. ... канд. ветеринар, наук / ; Ленингр. ветеринар, ин–т.– Л., 1988.–17 с. Некоторые данные о вирулентности Pseudomonas aeruginosa / , // Журнал микробиологии. – 1975. – № 1. – С. 101-104. B. Выживаемость и адаптация некоторых штаммов рода Pseudomonas в морской и речной воде / Л. B.  Алтон // Микробиология– 1983. – Т.45. –№ 6. – С. 16-20. Изучение бактериальных инфекций на птицефабриках / , , // Ветеринария. – 2004. – № 5. – С. 14-16. Разработка бактериологического метода выделения и идентификации Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Ульяновск, 1999.  – 18 с. Псевдомоноз птиц / , B. C. Ладыгин, , // Ветеринария. – 1985. –  № 10. – С. 40-41. Роль полиаминов в адаптации Escherichia coli к сублетальному действию антибиотиков: Автореф. дис...канд. биол. наук. –Пермь., 2011. – 144 с. Статистические методы в микробиологических исследованиях / , . – М., 1962. – 225с. Микробиологические основы антимикробной терапии инфекционных заболеваний. Руководство для врачей. – Санкт-Петербург. – 2005. – 183 с. Чувствительность Pseudomonas aeruginosa, выделенных от сельскохозяйственных животных, пушных зверей и птиц, к антибиотикам / Е. А.  Баженова // Ветеринария Кубани. – 2012. –  №6. – С.8-10. Инфекционные болезни диких птиц в лесостепной области Алтайского края / , , //  Ветеринария. –  2012. – № 6.  – С. 30-32. Бедоева  З. М.         Тест-системы для иммунологического мониторинга и прогнозирования острых кишечных инфекций животных и усовершенствование средств специфической профилактики: дис. ... д-ра биол. наук / . – М., 2006.  – 156с. Клиническая фармакология и фармакотерапия /  , , // М.: Медицина, 1997. – 400 с. Псевдомонады и псевдомонозы / , JI. A. Ряпис, //  М.: Медицина, 1990. – 224 с. , Антибактериальные средства: стратегия клинического применения. – Харьков: Константа, 1997. – 200 с. Антиинфекционное, антитоксическое и антипаразитарное действие экзогенной ДНК / , // Антибиотики и химиотерапия. – 2010. – том 55. – № 7 – 8. – С.46.  Инфекционные болезни животных / , , [и др.]; под ред. . – М.: КолосС, 2007. – 671 с. Справочник по микробиологическим и вирусологическим методам исследования  / . – М.: «Медицина», 1973. – 456 с. Экономические факторы развития отрасли птицеводства в рамках вступления в ВТО / // Материалы Международного ветеринарного конгресса: актуальные ветеринарные проблемы в промышленном птицеводстве». – М., 2013. – С. 26-39. Псевдомонозы животных и их профилактика / , , // Владивосток: «Дальневосточное кн. изд-во», 1987.  – С.37-43. Борисова O. K. Идентификация Pseudomonas aeruginosa в клиническом материале / O. K. Борисова, // Лабораторное дело. – 1983. – № 2. – С. 32-35. Оценка токсигенности клинических штаммов Pseudomonas aeruginosa иммуноферментным методом с использованием нитроцеллюлозных фильтров / , , // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. –  1990. –  № 11. –  С. 19-21. Действие антибиотиков как сигнальных молекул / , ,  , // Антибиотики и химиотерапия. – 2014. – том 59. –  №1-2. –  С. 6-9. Устойчивость актиномицетов–продуцентов к собственным антибиотикам / , , // Антибиотики и химиотерапия. – 2010. – том 55. – № 1-2. – С.1-2. Биоиндикация экологического состояния равнинных рек / , . – М.: «Наука». – 2007. – 403 с. Установление полной структуры липополисахаридов бактерии Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. хим. наук / . – М., 2004.  – 25 с.   Псевдомоноз свиней в Краснодарском крае: автореф. дис... канд. вет. наук / .  – Краснодар, 2003. – 25 с. Результаты выделения Ps. aeruginosa из различных объектов внешней среды / , A. C. Доценко // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 1976. – № 11. – С. 143-144. Экзотоксин A Pseudomonas aeruginosa и его роль в патогенезе синегнойной инфекции / , , // Журн. микробиологии. – 1981. –№ 2. – С.13-19. Усовершенствование методов выделения, идентификации и индикации бактерий Pseudomonas putida: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Саратов, 2011. – 25 с. Анализ эпизоотической ситуации по сальмонеллезу в Российской федерации за 2010-2012 / , , // Материалы международной конф.: «Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов для АПК. – M., 2006 – С. 29-34. Об особенностях патогенности Pseudomonas aeruginosa / , // Журн. микробиологии.– 1987. – № 3. – С.3-6. Иммуноферментный анализ аминогликозидных антибиотиков: автореф. дис. канд. биол. наук / . –  М.,  2009. – 23 с. Изучение антибактериальных свойств лактоферрина из различных источников в системе in vitro / , , // Антибиотики и химиотерапия. – 2010. – том 55. – № 7-8. – С.4-9. Сравнительный анализ чувствительности к желчи энтеробактерий /  , , // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.  2002. № 3. С. 65 – 67. Антагонистическая активность бифидо - и лактобактерий в отношении энтеробактерий / , // Ветеринария. – 1991. – № 6. – С. 21-22. Профилактика инфекционных болезней – обеспечение Современные средства и методы диагностики, профилактики и лечения инфекционных, протозойных и микотических болезней сельскохозяйственных и промысловых животных, рыб и пчел: продовольственной и пищевой безопасности России /   // труды ВИЭВ. – М.: Агентство творческих технологий, 2009. – т. 75.  – С. 28-52. Безопасность пищевой продукции и лекарственных средств / // Материалы Международного ветеринарного конгресса: актуальные ветеринарные проблемы в промышленном птицеводстве». – М., 2013. – С. 40-42. Факторные инфекционные болезни животных / // Ветеринария. – 2001. – № 3. – С. 6-9. Механизм действия экзотоксина Pseudomonas aeruginosa на макроорганизм (экспериментальные исследования) / // Журн. микробиологии. – 1984. – №3. –  С.35-39. Изучение маститов у коров / , A. M. Шуммейн, , // Ветеринария. – 1974. – № 7. – С. Разработка иммуноферментного метода на основе антигенных компонентов слизи Pseudomonas aeruginosa для диагностики синегнойной инфекции: автореф. дис... канд. биол. наук / . – М., 1984. – 26 с. Разработка, получение и применение поливалетной сыворотки против псевдомоноза животных: автореф. дис... канд. вет. наук / . – Краснодар, 2007. – 25 с. Микробиологический мониторинг рыб водоемов республики Бурятия: автореф. дис... канд. вет. наук: / – Барнаул, 2014 – 21 с. Влияние факторов внешней среды на рост и изменчивость R - S-и M-вариантов Mycobacterium lacticolum / , , и соавт. // Биол. науки. – 1986. – № 8. С.87-92. Чувствительность к антибиотикам штаммов L. monocytogenes, выделенных от диких животных / , // Ветеринария. – 2014 – №2 Патогенность как функция биомолекул / . – М.: Медицина, – 1985. – 240 с. Новые бактериальные патогены в пищевых продуктах: экспериментальное обоснование и разработка системы контроля с применением методов микробиологического и молекулярно-генетического анализа: дис. д-ра биол. наук. – Москва, 2010. –  53 с.   Влияние уровня антиинфекционной защиты организма и условий внешней среды на структуру популяций Pseudomonas aeruginosa по биологическим признакам: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Санкт-Петербург, – 2000. – 25 с. Механизмы биосинтеза антибиотиков и их действие на клетки микроорганизмов: Учеб.-метод. комплекс для студентов специальности 1 – 31 01 01 «Биология» / . – Мн.: БГУ, 2004. – 111 с. Повышение эффективности и надёжности метода серологического группирования при псевдомонас-инфекции / // Актуальные вопросы клинической микробиологии в неинфекционной клинике. – М., 1988. – С.82. Качество и безопасность сырья и пищевых продуктов в современных условиях // Вестник Омского государственного аграрного университета. – 2014. – № 3 (15). – С.29-32. Устойчивость к антимикрбным препаратам сальмонелл, выделенных от животных и из продуктов в Ленинградской области в 2004 – 2010гг./ , , // Международный вестник ветеринарии. – №3. – 2011. – с.15 – 18. Чувствительность к антимикробным препаратам микроорганизмов, выделенных от сельскохозяйственных животных и из продукции животноводства/ // Vetpharma. – 2012. – №5. – С. 20-24. Эпизоотологические, клинико-патоморфологические особенности псевдомоноза свиней и крупного рогатого скота: автореф. дис... канд. вет. наук / . – Омск, 2011.– 23 с. Строение липополисахаридов как основа классификации фитопатогенных бактерий Pseudomonas syringne: дис... канд. хим. наук / . – М., 2002. – 138 с. Инструкция по санитарно-микробиологическому контролю тушек, мяса птицы, птицепродуктов, яиц и яйцепродуктов на птицеводческих и птицеперерабатывающих предприятиях. – М., 1990. Получение рекомбинантных атоксичных форм экзотоксина А Pseudomonas aeruginosa и изучение их иммунобиологических свойств: автореф. дис... канд. биол. наук: 03.02.03 / . – М., 2010. – 25 с. Биологические свойства штаммов Ps. aeruginosa, выделенных от крупного рогатого скота в хозяйствах Краснодарского края / , , // Тр./ Куб. ГАУ.– 1989. – Вып. № 000. – С. 29-34. Род Pseudomonas: новые аспекты старой проблемы / // Журн. Микробиологии. – 1985.– № 5. – С.91-98. Ветеринарно–санитарный контроль остаточных количеств антибиотиков в сырье и продуктах животного происхождения: Автореф. дис...канд. вет. наук. – М., 2008. – 319 с. Методы определения антибиотиков / // Молочная промышленность. – 2008. – № 6. – С.82-83. Кам Ань Ха. Сравнительная оценка антибактериальной активности полигексаметиленгуанидина гидрохлорида и полигексаметиленгуанидина сукцината в опытах in vitro / Кам Ань Ха, , // Антибиотики и химиотерапия. – 2013. – том 58. – № 1-2. – С.3-7. Морфологическая характеристика шаровидных элементов Л-форм бактерий по данным сканирующей электронной микрофоскопии / , , // Микроб, эпидемиол., – 1977. –  № 7. – С.67-70. Ветеринарно–санитарная оценка мяса птиц с остаточным количеством антибиотиков группы макролидов: Автореф. дис...канд. био. наук.  – Казань., 2004. – 137с Сравнение российского и американского  официальных методов выявления сальмонелл в мясе птицы / ,  Д. Диксон, Б. Шелдон, , // Материалы III Ветеринарного конгресса по птицеводству. – М., 2007. – С. 145-149. Строение печени, селезенки и лимфатических узлов при введении специфического бактериофага для коррекции пневмонии, вызванной Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Новосибирск,  2014. – 25 с. Технологии обеспечения безопасности и качества продуктов / , , // Пищевая промышленность.– 2010.– № 5. – С. 16-18. Роль синегнойной палочки в патологии новорождённых телят / , , // Ветеринария. 1990.– Вып. 65. – С. 37-41. Микробиологические основы химиотерапии инфекционных заболеваний / , // СПб: «Специальная литература». –  Медицинская микробиология, иммунология и вирусология. –  1998. – С. 135 -138.   Медицинская микробиология, иммунология и вирусология / , // СпецЛит: Часть седьмая. – 2008. – С. 348 -350. Кочергина- Изучение некоторых аспектов возникновения мастита псевдомонозной природы у коров / -Никитская // Вопр. зоогигиены и ветеринар, санитарии при различных технологиях содержания животных. – 1987. –С. 79-81. Бактериальные аборты у коров / // Ветеринария. – 1974. – № 1. – С. 79. Совершенствование пробоподготовки образцов различной продукции для индикации микробиологических контаминантов (сальмонелл, листерий и др.) / , , // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. – 2009. – № 2. – С. 6-8. Птицеводство / , , . – М.: - КолосС, 2003. – 77 с. Сравнительное исследование иммуномодулирующей активности пептидов – тинростима и тималина / , , // Антибиотики и химиотерапия. – 2013. – том 58. – № 11-12. – С.8-12. Экспрессное определение цефалексина в биосредах / ,  // Антибиотики и химиотерапия. – 2014. – том 59.  – №1-2. – С.6-9. Изменение адгезивной способности микроорганизмов / , // Ветеринария.  – 1993. № 12. – С.12-15. Профилактика пищевых токсикоинфекций человека и концепция ХАССП / // Ветеринария. – 2011. – № 1. – С. 19-21. Влияние 5% водно-спиртовой эмульсии почек сосны на  показатели иммунного статуса кроликов / , // Вестник РГАТУ– 2014. - № 2(22). – С. 9-12. Изучение влияния препарата сосновых почек на организм животных / , //Актуальные вопросы развития науки: сборник статей Международной научно-практической конференции 14 февраля 2014 г.: в 6 ч. Ч.5 / отв. ред. . - Уфа: РИЦ БашГУ, 2014. – С. 285-287. Современные аспекты возникновения и предупреждения пищевого сальмонеллеза  / , , // Ветеринария. –2012. – № 4. – С. 9-12. , , Изучение фармакокинетики препарата на основе доксициклина и линкомицина в организме птиц // Ветеринарная практика. Санкт–Петербург,  2005.  – №3. –  С. 9-13. Биология и экология иерсиний – возбудителей пищевых токсикоинфекций: дис. … д-ра вет. наук / . – М.: МГУПБ, 2000. –  446 с. Характеристика токсигенности энтеробактерий, выделенных при желудочно-кишечных болезнях сельскохозяйственных животных / , , // Сельскохозяйственная биология. – 2014. –  № 2. – С. 94-104. Антигенная структура и патогенные свойства штаммов  E. coli, выделенных при желудочно–кишечных болезнях животных /  , ,  // Ветеринария. – 2013. –  № 2. – С. 21 – 25. Роль факторов среды обитания в формировании рисков здоровья населения при контаминации продуктов питания: автореф. дис. канд. мед. наук / . – Оренбург, 2004. –  23 с. Эпизоотологические аспекты и иммуно-биологические особенности возбудителя синегнойной инфекции у песцов и лисиц: автореф. дис... д-ра вет. наук / – М., 2000.  – 25 с. Некоторые структурные элементы Pseudomonas aeruginosa по данным электронной микроскопии / , // Журн. Микробиологии. – 1981. – № 7 –  С. 49-53. Морфологические, культуральные и биохимические свойства культур синегнойных бактерий, выделенных от больных людей, животных и объектов внешней среды / , // Журн. Микробиологии. – 1981, – № 5. – С. 78-83. Эпизоотологический метод исследования / , , . – СПб.: Лань, 2009. – 221 с. Повышение эффективности процедуры контроля антибиотиков в молоке и молочных продуктах: Автореф. дис...канд. тех. наук.  – М., 2013. – 144 с. Адгезивные особенности различных штаммов Ps. aeruginosa в системе колонизационной резистентности / , // Актуальные вопросы микробиологии в неинфекционной клинике. – М., 1988. –  188 с. Особенности промежуточного метаболизма Pseudomonas aeruginosa, деградирующих чужеродные соединения: автореф. дис. ... канд. биол. Наук / О. В.  Мальцева. – Пущино, 1983. – 16 с. Биологические свойства Pseudomonas aeruginosa выделенной от животных, из кормов и объектов внешней среды в Краснодарском крае: автореф. дис... канд. вет. наук / . – Краснодар, 2006. – 25 с. Методические рекомендации по диагностике, профилактике и лечению псевдомоноза сельскохозяйственных животных – М.: РАСХН,  – 2003. – 32 с. Методические указания по определению чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам. Методические указания МУК 4.12.1890 – 04. – Минздрав России. – Москва, 2004.  – 65 с   Роль биоплёнок Pseudomonas aeruginosa  в развити эндогенных инфекций / , , // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. – 2013. – № 3. – 29 с. К изучению псевдомоноза животных / , // Ветеринария. – 1975. – № 6. – С. 88. Фармакологоия / . – М. Агропромиздат.:1985. – С.416 Синегнойная инфекция / , , . – М.: Медицина, – 1988. – 94 с. Молекулярно-генетические особенности устойчивости к бета-лактамным антибиотикам грамотрицательных микрооргнизмов-возбудителей нозокомиальных инфекций: автореф. дис... канд. биол. наук / . – М., 2010. – 25 с. Исследование стабильности и РНК-связывающих свойств белка HFQ из Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Пущино, 2014. – 25 с. Применение рН - метрии в процессе ветеринарно - санитарной экспертизы мяса / // Мясная индустрия. – 2007. – № 6. – С. 58-60.  Патоморфологические изменения в эндометрии у свиноматок при искусственном осеменении спермой, контаминированной Pseudomonas aeruginosa / Профилактика и лечение акушерско-гинеколог. патологии с.-х. животных.– М., – 1990. –  С. 82-84. Распространенность и биологические особенности нозокомиальных штаммов Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Пермь, 2011. – 25 с. Внутрипопуляционные взаимодействия в культуре бактерий Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / . – М., 2002. – 24 с. Определитель бактерий Берджи. Т.1.- 9-е изд.- М.: Мир, 1997. Бактерии рода Pseudomonas в микробном сообществе озера Байкал: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Иркутск, 2004. – 25 с. Электронно-микроскопическое исследование развития бактерий в колонях. Морфология колоний бактерий / , , // ЖМЭИ. –1990. –№9. – С. 15-20. Атлас морфологии популяций патогенных бактерий / , , // Колос. – М., – 2007. – 178 с. Изучение псевдомоноза на племенных станциях / , , // Ветеринария. – 1976. – № 12. – С.64-67. Характеристика систем рестрикции-модификации II типа в коллекции природных штаммов семейства Enterobacteriaceae и рода Pseudomonas: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.00.04 / .  – Пущино, 1998. – 24 с. Проблема вирулентности бактерий (химические, метаболические, экологические и генетические аспекты) / . – Л.: Медицина, 1967. –247 с. Диагностика, специфическая профилактика и лечение при бактериальных болезнях животных / , , // Ветеринария. – 2011. – № 1. – С. 24-26. Сравнение антибактериальной активности ингаляционных форм препаратов тобрамицина / // Антибиотики и химиотерапия. – 2013. – том 58. – № 3 – 4. – С.19 – 21. Медицинская микробиология / , O. K. Поздеев // М.: «Гоэтар Медицина», 2002. – С. 343-348. Диоксидин: антимикробная активность и перспективы клинического применения на современном этапе / , , // Антибиотики и химиотерапия. – 2013. – том 58. – № 3-4. – С.37-42. Разработка способов деконтаминации и диагностики специфических микробных контаминантов: автореф. дис. канд. техн. наук / . –Москва.  – 2008. –  23 с. Влияние условий культивирования на термотропное поведение липидов Pseudomonas putida и Yersinia pseudotuberculosis: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Владивосток, 2009. – 25 с. Псевдомоноз продуктивных животных в регионе Северного Кавказа: автореф. дис... канд. вет. наук / . – Краснодар, 2011. – Изучение вирулентных свойств выделенных изолятов Pseudomonas aeruginosa //  , , // Ветеринария Кубани. – 2011. –  №1. – С.16-20 Генетические детерминанты устойчивости к антибактериальным средствам в нозокомиальных штаммах Escherichia coli, Klebsiella spp. и  Enterobacter spp., выделенных в России в 2003–2007 гг / , , , // Антибиотики и химиотерапия. – 2010. – том 55.  – № 9-10. – С.3-10. Прямчук  специфичных маркеров для характеристики множественно–устойчивых госпитальных штаммов Enterobacteriaceae / Автореферат канд. биол. наук. –  Оболенск, 2011. – 23 с. Радчук H. A. Характеристика культур рода Pseudomonas, выделенных из патматериала и объектов внешней среды птицефабрик / H. A. Радчук, , . A. Н. Бунаков // Проблемы профилактики и терапии заразных заболеваний с.-х. животных и птиц. –  М., –  1986. –  С. 60-64.   Создание комплексной системы профилактики бактериальных болезней птиц в хозяйствах промышленного типа: дис. … д-ра вет. наук / . – СПб., 2011. –  308 с. Биологическая активность, музейных и свежевыделенных культур Pseudomunas aeruginosa и возможные фазовые преобразования популяций возбудителя / // Микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. – 1994.  – № 6. – С. 31-32. Влияние некоторых хлорсодержащих дезинфектантов на Pseudomonas aeruginosa / , , // Журн. Микробиологии. – 1986. –  № 1. –  С.98. Отношение клинических штаммов Pseudomonas aeruginosa, выделенных из различных видов клинического материала / , , // Антибиотики.– 1981.– № 3.– С. 99-105. Воздействие антибиотиков, тепла и гамма-облучения на ультратонкое строение возбудителей некробактериоза и бруцеллеза: автореф. дис. ... канд. биол. наук / . – Казань, 2013. – 23 с. Идентификация и свойства бета-лактамаз полирезистентных штаммов грамотрицательных бактерий: автореф. дис. ... канд. биол. наук / . – М., 1985. – 23 с. Инфекционная патология животных /  , , . – М.: РАСХН, 2009. – Т.3. – С. 377-404. Чувствительность Escherichia coli O157:H7, возбудителя геморрагического колита, к антибактериальным препаратам // Э. А.  Светоч, ,  ,  , ,  , , // Антибиотики и химиотерапия. – 1998. –  №11. – С.16-20. Постнатальный органогенез иммунной системы птиц и млекопитающих: Эволюционно-морфологическое исследование: дисс. ... д-ра вет. наук / .  –  М., 2000. –  245 с. Обоснование ветеринарно-сантарной оценки мяса птицы при псевдомонозе / , , // Мясная индустрия. –  2011. № 11. – С. 48-52. Cиволодский и культуральные особенности условно-патогенных энтеробактерий и псевдомонад как основа совершенствования их идентификации: автореф. дис... док. мед. наук /  Е. П. Cиволодский. –  Санкт-Петербург, 1994. – 34 с. Поиск новых видов сырья для получения антибактериальных препаратов / , // Антибиотики и химиотерапия. – 2012. – том 57. – № 5-6. – С.7-10. Определитель зоопатогенных микроорганизмов, справочник / , , . – М.: Медицина, 1995. – 319 с. Общая эпизоотология / , , . – М.: Колос С, 2005. –  232 с. Микробиологическая диагностика бактериальных болезней животных / , , . – М.: ИзографЪ, 2005. –  656 с. Бактерии рода Pseudomonas / , E. А. Киприанова.  – Киев: Наукова думка, – 1990. – 264 с. Контроль качества и безопасности мясопродуктов / // Ветеринария. – 2006. – № 8. С. 3-5. Морфологические аспекты изучения массовых незаразных и факторных заболеваний молодняка животных / , // Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях: матер. конф. – Воронеж, 2002. – С. 44-48.  Вирулентность и антигены Pseudomonas aeruginosa / , // Журн. Микробилогии. – 1978. – №7. – С. 16-23. Стефанов, И. Распространение Pseudomonas aeruginosa в мякоти мясных продуктов / И. Стефанов // Вет. мед. –  1997. – №4. – С. 256-257. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / , , . (ред.) // Смоленск:МАКМАХ, 2007. –  464с. , H. Макролиды в современной клинической практике. Смоленск: «Русич», 1998. – 304 с. Выявление устойчивости микроорганизмов к антибиотикам методом ПЦР / , // Аналитическая надежность и диагностическая значимость лабораторной медицины: Материалы XVIII Всероссийской научно-практической конференции. – М.: «КРОКУС-Экспо». – 26-28 марта 2013 года.  Исследование комплексообразования метаболитов бактерий рода Pseudomonas: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Уфа, 2009. – 24 с. ,  , , Набор для количественного определения авермектинов методом одностадийного иммуноферментного анализа / , , О. А.  Верховский // патент 2416094, Россия. Опубл.10.04.2011. Микробные модели для поиска ингибиторов биосинтезастеролов / // Антибиотики и химиотерапия. – 2013. –  том 58.  – № 7-8. – С.3-11. Микробная тест–система для поиска ингибиторов биосинтеза стеролов / //Антибиотики и химиотерапия. – 2013. –  том 58. – № 3-4. – С. 3-9. Пути переноса электронов бактерий Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / .  – Пущино., 1984. – 16 с. Токсико–фармакологические параметры антибактериального препарата фенитил / // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. – 2013. – № 5. – С. 65 – 66. Усовершенствование методов выделения, идентификации индикации бактерий Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис... канд. биол. наук / . – Саратов, 2010. – 23 с. Изучение роли условно-патогенной микрофлоры в патологии размножения крупного рогатого скота и усовершенствование этиотропной терапии при эндометритах у коров: дис. ... канд. ветеринар, наук.-Краснодар, 1981. Шоль  скармливания куриной желчи бройлерам: дис. ... канд. с/х наук.  – М., 2008. 139 с. Сравнительная оценка патологического процесса на модели острой экспериментальной пневмонии крыс, обусловленной штаммами Pseudomonas aeruginosa различного происхождения / , // Журн. Микробиологии. – 1984. –  № 12. –  С.68-72. Хоулт Дж. Определитель бактерий Берджи / Хоулт Дж., Криг Н // 9-е издание. т.1 и т.2. М.: Мир, 1997. – 432 с. Новый метод исследования антибиотикорезистентности бактериальных биоплёнок / , , // Антибиотикорезистентность. – 2012, Том 14. – № 4. – С.303-308. Реализация патогенности бактерий Burkholderia cepacia при разных формах инфекции:  дис... док. мед. наук / . –  Москва. – 2008. – 211 с. Оценка содержания остаточных количеств антибиотиков и сульфаниламидных препаратов в биологических объектах: Автореф. дис...канд. хими. наук. – Владивосток., 2003. – 181 с. Эль-Базза. Получение и свойства эластазы Pseudomonas aeruginosa: автореф. дис. ... канд. биол. наук / Эль-Базза.–  М.,  – 1987. С. Усовершенствованные методы индикации санитарно-показательных микроорганизмов в продуктах животного происхождения и на поверхностях технологического оборудования: дис. канд. биол. наук / . –  Москва. – 2009. – 23 с. Устойчивость Pseudomonas aeruginosa к карбапенемам: уроки исследования MYSTIC / // Фарматека. – М., 2007. – № 8/9. – С.   Антитела к токсину Pseudomonas aeruginosa в препаратах нормального иммуноглобулина человека / [и др.] // Журн. микробиологии.– 1983. – № 6. – С. 100-102. Молекулярно  импринтированные полимеры для пенициллинов и тетрациклинов / , ,  , , // Антибиотики и химиотерапия.  2014. – Том 59. –  № 5 – 6. – С.34 – 40. Adrian Javier multianalyte ELISA for immunochemical screening of sulfonamide, fluoroquinolone and в – lactam antibiotics in milk samples using class–selective bioreceptors  / Adrian Javier, Pinaccho Danial G., Granier Benoit //Anal. and Bioanal. Chem. 2008. 391. № 000, 1703 – 1712. Aiello D., Williams J., Majgier–Baranowska H. Discovery and Characterization of Inhibitors of Pseudomonas aeruginosa Type III Secretion. Antimicrob Agents Chemother. –  2010. –  Vol.54. – P. 1988–1999. Ali Luzan A. Isolation of Pseudomonas aeruginosa from food / A. Ali Luzan // J. Biol. Sci. – 1982. – № 2. – P. 35 – 43. Alkawash M. A., Soothill J. S., Schiller N. L. Alginate lyase enhances antibiotic killing of mucoid Pseudomonas aeruginosa in biofilms. APMIS. – 2006. – Vol. 114. – Р. 131–138. Amorena B., Gracia E., Monzon M., et al. Antibiotic sus–ceptibility assay for Staphylococcus aureus in biofilms devel–oped in vitro. J Antimicrob Chemother 1999; 44:43 – 55. Anwar H, Strap JL, Chen K, et al. Dynamic interactions of biofilms of mucoid Pseudomonas aeruginosa with tobramycin and piperacillin. Antimicrobial Agents Chemotherapy. –  1992 – №36(6). – Р. 1208–1214 Appleton A. K. Pathohen and indicator orgaiam destriction by the dual digeation system / A. K.Appleton, C. J. Leong, A. D. Venosa // J. Water. Pollut. Contr. Fed.– 1986.– V. 10.– P. 992–999 Ashok Kuma. Isolation and Characterization of Microorganisms Responsible for Different Types of  Food Spoilages / Ashok Kuma, Varun Bhushan, Shikha Verma, Gaurav Srivastav, Sushil Kumar // International Journal of Research in Pure and Applied Microbiology. 2011; 1(2): 22-31. Baechler C. A. Elektron microscopis observations of Pseudomonas aeruginosa / C. A.Baechler. R. S.Berk // Z. allg. Microbiol. – 1974. –V. 14. – №4. – P. 267–381. Bagge N, Ciofu O, Skovgaard LT, et al. Rapid development in vitro and in vivo of resistance to ceftazidime in biofilm–growing Pseudomonas aeruginosa due to chromosomal beta–lactamase. APMIS. – 2000. – № 000(9). – Р. 589–600 Bartell P. F. The rethal events in experimentae Pseudomonas aeruginosa infection / P. F. Bartell, T. E. Orr, M. Garcia // J. infect. Dis. – 1968.– V. 118.– P. 165–172. Begley, M., Gahan, C. G. M., Hill, C. The interaction between bacteria and bile: FEMS Microbiology Reviews. – 2012. –  V. 4. –  P. 625 – 651. Bentzmann S, Roger P, Bajolet–Laudinat O, et al. Asialo GM1 is a receptor for Pseudomonas aeruginosa adherence to regenerating respiratory epithelial cells. Infection and Immunity. – 1996. – №64. – Р. 1582–1588 Bergan T. Human and animal– pathogenic members of the genus Pseudomonas / T. Bergan // Prokariotes.– 1981.– V. l.– P. 666–700. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology 9th edition. Baltimore: Williams & Wilkins. –  1994. –  P. 48 – 59. Bergmans D. C., Bonten M. J., van Tiel F. H. Cross–colonisation with Pseudomonas aeruginosa of patients in an intensive care unit. Thorax. –  1998. – Vol.53. – Р.1053–1058. Biofilms, Infection, and Antimicrobial Therapy. / J. L. Pace, M. E. Rupp, and G. Roger. Finch. CRC Press. – 2005. - № 2. – Р.155–169. Bjarnsholt T. Biofilm infections. Springer. –  2011. – 314 p. Bjarnsholt T., Jensen P. Ш., Fiandaca M. J. et al. Pseudomonas aeruginosa biofilms in the respiratory tract of cystic fibrosis patients. Pediatr Pulmonol. – 2009. –  Vol.44. – Р. 547–558. Bjarnsholt T., Kirketerp–Mшller K., Kristiansen S. et al. Silver against Pseudomonas aeruginosa biofilms. APMIS. – 2007. –  Vol. 115. – Р. 921–928. Bodey G. RP., Bolivar R., Fainstein V., Jadeja L. Infections caused by Pseudomonas aeruginosa. Reviews of infectious deseases. – 1983. – Vol.5(2). – Р. 279–313. Bower, C. K. The adhesion and detachment of bacteria and spores on food-con-tact surfaces / C. K. Bower, J. McGuire, M. A. Daeschel  //  Trends Food Sci. Tech. – 1996. – Vol.7.  –152-157. Bui KQ, Banevicius MA, Nightingale CH, et al. In vitro and in vivo influence of adjunct clarithromycin on the treatment of mucoid Pseudomonas aeruginosa. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. – 2000. – №45(1). – Р. 57–62 Carmen J. C., Roeder B. L., Nelson J. L., Ogilvie R. L. et al. Treatment of biofilm infections on implants with low–frequency ultrasound and antibiotics. Am J Infect Control. 2005. Vol.33: 78–82. Catheter–Related Infections (Infectious Disease and Therapy) / H. Seifert, J. Bernd, B. M. Farr. Marcel Dekker. 2005. 519 p. Charlton T. S., de Nys R, Netting A. et al. A novel and sensitive method for the quantifica–tion of N–3–oxoacyl homoserine lactones using gas chromatography–mass spectrometry: ap–plication to a model bacterial biofilm. Environ Microbiol. 2000. Vol.2: 530–541 Chitkara Y. K., Feierabend T. C. Endogenous and exogenous infection with Pseudomonas aeruginosa in a burns unit. Int Surg. 1981. Vol.66 (3): 237–40. Ciofu O., Fussing V., Bagge N. et al. Characterization of paired mucoid/non–mucoid Pseu–domonas aeruginosa isolates from Danish cystic fibrosis patients: antibiotic resistance, в–lactamase activity and RiboPrinting. J. Antimicrob. Chemother. 2001. Vol.48: 391–396. Clements J. rface phenomena in relation to pulmonary function Sexth Bowditch Lecture / J. A. Clements // Physiologist.– 1962.– V. 5.– P. l 1. Costerton JW, Cheng KJ, Geesey GG, et al. Bacterial biofilms in nature and disease. Annual Review Microbiology. Review. 1987;41:435–464 Costerton J. W., Montanaro L., Arciola C. R. Biofilm in implant infections: its production and regulation. Int J Artif Organs. 2005. Vol.11: 1062–1068. Control of Biofilm infections by signal manipulation / N. Balaban. Springer. 2008. 173 p. Costerton J. W., Stewart P. S., Greenberg E. P. Bacterial Biofims: A Common Cause of Per–sistent Infections. Science. 1999. Vol.284: 1318–1321. Dai Jigang. A brief of antibiotic science / Dai Jigang, Zhang Guoqiang, Hang Xiaobing, Wu Tingrui// Chin. J.Med. Hist, April 1999, Vol 29, №.2.c 88–91. Davies D. G., Marques C. N. A fatty acid messenger is responsible for inducing dispersion in microbial biofilms. J Bacteriol. 2009. Vol.191: 1393–1403. Davies DG, Parsek MR, Pearson JP, et al. The Involvement of Cell–to–Cell Signals in the Development of a Bacterial Biofilm. Science. 1998;280(10):295–298 Davies JC. Pseudomonas aeruginosa in cystic fibrosis: pathogenesis and persistence. Paediatr Respir Rev. 2002. Vol.3(2): 128–34. Del Pozo J. L., Rouse M. S., Patel R. Bioelectric effect and bacterial biofilms. A systematic review. Int J Artif Organs. 2008. Vol.31: 786–795. Dholakia P. M. Isolation, characterization, antibiotic sensitivity and aeruginocine typing of Pseudomonas aeruginosa from animals and poultry / P. M. Dholakia, N. M. Shah, J. U. Parohit, H. N. Kher // Indian.– Vet. J. –1985.– V. 62.– № 3.– P.263– 264. Dibdin GH, Assinder SJ, Nichols WW, et al. Mathematical model of beta–lactam penetration into a biofilm of Pseudomonas aeruginosa while undergoing simultaneous inactivation by relese beta–lactamases. Journal of Antimicrobial Chemotherary. 1996;38(5):757–769 Diggle S. P., Matthijs S., Wright V. The Pseudomonas aeruginosa 4–Quinolone Signal Mole–cules HHQ and PQS Play Multifunctional Roles in Quorum Sensing and Iron Entrapment. Chemistry&Biology. 2007. Vol.14: 87–96. Diggle S. P., Winzer K., Chabra S. R. et al. The Pseudomonas aeruginosa quinolone signal molecule overcomes the cell density–dependency of the quorum sensing hierarchy, regulates rhl–dependent genes at the onset of stationary phase and can be produced in the absence of LasR. Molecular Microbiology. 2003. Vol.80: 29–43. Dilek Keskin. Investigation of the incidence of  Pseudomonas aeruginosa in foods and the effect of salt and pH on P. aeruginosa / Dilek Keskin, Sanver Ekmekci // Hacettepe journal of biology an chemistry., 2008.  36(1), 41–46. Dunne W. M. Jr. Bacterial adhesion: seen any good bio–films lately? Clin Microbiol Rev 2002; 15:155 – 66. Elsheikh E. S. Adherence of Pseudomonas aeruginosa to tracheal epithe– liad cells of mink / E. S. Elsheikh // Actapathol. Microbial, et immunol. Scand.– 1985.– V. 93.– № 6.– P. 417–422. Elzbieta Boguslawska-Was. Effect of biofilm formation by Psudomonas aeruginosa on gas permeability of food wrapping foils / Elzbieta Boguslawska-Was, Stawomir Lisiecki, Anna Drozdowska, Katarzyna Ilczuk // Pol. J. Food. Nutr. Sci. 2007. – Vol.57. – №2. Рр. 167-172. Floret N., Bertrand X., Touverez M., Talon D. Infections nosocomiales а Pseudomonas aeruginosa: origine exogиne ou endogиne de la bactйrie responsable? Pathologie&Biologie. 2009. Vol.57: 9–12. Foster T. J. Plasmid–determined drug resistance / T. J. Foster // Microbiol. Rev.– 1983.– V. 47.– P. 361–409. Fu W., Forster T., Mayer O. et al. Bacteriophage Cocktail for the Prevention of Biofilm Formation by Pseudomonas aeruginosa on Catheters in an In Vitro Model System. Antimicrob. Agents Chemother. 2010. – Vol. 54: 397–404. Ganin H., Tang Xu., Meijler M. Inhibition of Pseudomonas aeruginosa quorum sensing by AI–2 analogs. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 2009. Vol.19: 3941–3944. Ghani M, Soothill JS. Ceftazidime, gentamicin, and rifampicin, in combination, kill biofilms of mucoid Pseudomonas aeruginosa, Canadian Journal of Microbiology. 1997;43(11):999 –1004 Gram, L. Food spoilage−interactions between food spoilage bacteria / L. Gram, L. Ravn,  M. Rasch, J. B. Bruhn, A. B. Christensen, M. Givskov // Int. J. Food Microbiol. 2002. –  78. – 79-97. Gray KM.. Intercellular communication and group behaviour in bacteria. Thends. Microbiology. 1997;5:184–188 Guo Q., Kong W., Jin S. PqsR–dependent and PqsR–independent regulation of motility and biofilm formation by PQS in Pseudomonas aeruginosa PAO1. JBM. 2013. Vol.53: 1–11. Habez H. M. Pseudomonas aeruginosa infektionen bli Putenkuken und Behandlungaversuche mit apramycin / H. M. Habez, H. Woernle, C. Heil // Berlin. Und Much. Tierarztl. Wochenschr. – 1987. –  Bd. 100. – № 2. – P. 48–51. Hassan K. S., Al–Riyami D. Infective Endocarditis of the Aortic Valve caused by Pseudo–monas aeruginosa and Treated Medically in a Patient on Haemodialysis. SQU Med J. 2012. Vol.12: 120–123. He Xianyuan. Cluster Analysis of 53 Chinese Antipyretic Herbs on Bacteriostatic Effects Against Pseudomonas aeruginosa / He Xianyuan, Li Kun, Yu Lurong, Liu Junkang, Liao Sixiang, Liu Yanxia // Chinese Journal of Experimental Traditional Medical Formulae. – 2014. – № 20. P. 82–85. Hentzer M, Riedel K, Rasmussen TB, et al. Inhibition of quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa biofilm bacteria by a halogenated furanone compound. Microbiology. 2002;148(1):87–102 Hingst V. Investigations on the enzymatic degradation of formaede dy is lated of species Pseudomonas aeruginosa / V. Hingst, M. Maiwald, H.– G. Sonntad // Zbl. Dacteriol.– 1987.– B. 184.– № 2.–H. 167–181. Hoiby N. Prospects for the prevention and control of pseudomonal infection in children with cystic fibrosis. Paediatrica Drugs. 2000;2(6):451–463 Holloway D. W. Bacteriophages and bacteriocines. In Geneties and Biochemistry of Pseudomonas ( Eds P. H., Clarce and Richmond M. N. / D. W. Holloway, V. Krishnapillai // John Wiley.– London, 1975. Homma J. Y. A nev antigenic shema and livecell stide agglutination procedure for the in infrasubspecific, serologic classification of Pseudomonas aeruginosa / J. Y. Homma // Areview Jap. J. exp. Med.– 1976.– V.46.– № 6.– P. 329–336. Hoyle BD, Jass J. The biofilm glycocalyx as a resistance factor. Journal of Antimicrobial Chemotherary. 1990;26(1):1–5 Iglewski B. N. NAD– dependent inhibition of protein syn thems by Pseudomonas aeruginosa toxin / B. N. Iglewski, D. Kabat // Proc. Nate Fcad. Soi. USA.– 1975.– V. 72.– P. 2284–2288. Iroha I. R. Bacteria contamination of raw meat sold in Abakaliki, Ebonyi State Nigeria / I. R.  Iroha, E. C. Ugbo, D. C. Ilang, A. E. Oji, T. E. Ayogu // Journal of Public Health and Epidemiology. – 2011. – Vol. 3(2), pp. 49-53. Ischida T., Ikeda T., Takiguchi N. et al. Inhibition of Quorum Sensing in Pseudomonas aeruginosa by N–Acyl Cyclopentylamides. Appl Environ Microbiol. 2007. Vol.73: 3183–3188. Jackson T. L., Reykyn S. J., Graham E. M. Endogenous Bacterial Endophthalmitis: A 17–year Prospective Series and Review of 267 Reported rvey of Ophtalmology. 2008. Vol.48: 403–423. Japoni A., Farshad S., Alborzi A. Pseudomonas aeruginosa: Burn Infection, Treatment and Antibacterial Resistance. Iranian Red Crescent Medical Journal. 2009. Vol.11: 244–253. Jinsoo Song. Characterization of the pathogenesis Mechanism after Pseudomona aeruginosa infection through food consumption using chick embryo model / Jinsoo Song, Eun-Jung Jin, Kyoung - Hee Choi // Korean J. Food Sci. Ani. Resour. 2010. –Vol. 30. №4. Pp. 568-574. Johes L. F. Pyocine typing Ps. aeruginosa: a simplified Method / L. F. Johes, I. P. Zacanicz, E. T. Thomas, I. I. Farmer // Appl. Microbiol.– 1974.– V.27.– № 2.– P. 400–406. Jones L. F. Simplified method of producting pyocins from Ps. aeruginosa / L. F. Jones, B. V. Pinto, E. T. Thomas, I. I. Farmer // Appl. Microbiol.– 1973.– V. 26.– № l. P. 120–121. Kleerebezem M, Quadri LE, Kuipers OP, et al. Quorum sensing by peptide pheromones and two–component signal–transduction systems in gram–positive bacteria. Molecular Microbiology. 1997;24:895–904 Kobayashi H. Basic and clinical study of bacterial biofilm. Nippon Naika Gakkai Zasshi. Abstract. 1994;83(9):1692–1696 Kobayashi H. Biofilm disease: its clinical manifestation and therapeutic possibilities of macrolides. American Journal of Medicine. 1995;99(6A):26S–30S Kondoh K, Hashiba M. Inhibitory effect of macrolide antibiotics on biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa. Nippon Jibiinkoka Gakkai Kaiho. Abstract. 1998;101(1):25–36 Kumon H, Ono N, Iida M, et bination effect of fosfomycin and ofloxacin against Pseudomonas aeruginosa growing in a biofilm. Antimicrobial Agents Chemotherapy. 1995;39(5):1038–1044 Laffer R. R., Graber P., Ochsner P. E., Zimmerli W. Outcome of prosthetic knee–associated infection: evaluation of 40 consecutive episodes at a single centre. Clin Microbiol Infect. 2006. Vol.12: 433–439. Lambert R. J., Hanlon G. W., Denyer S. P. The synergistic effect of EDTA/antimicrobial combinations on Pseudomonas aeruginosa. J Appl Microbiol. 2004. Vol.96: 244–253. Liu P. V. The roles of various fractions of Ps. aeruginosa in ist pathogenesis / P. V. Liu // J. Infect. Dis.– 1961.– V. 108.– P.218–228. Mah T. F., Pitts B., Pellock B. A genetic basis for Pseudomonas aeruginosa biofilm antibi–otic resistance. Nature. 2003. Vol. 426: 306–310. Mandsberg L. F,Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa strains with increased muta–tion frequency due to inactivation of the DNA oxida–tive repair system / Mandsberg L. F, Ciofu O., Kirkby N., Christian­ sen L. E, Poulsen H. E., Hшiby N. Antimicrob Agents Chemother 2009; 53:2483 – 91. Mathee K, Ciofu O, Sternberg C, et al. Mucoid conversion of Pseudomonas aeruginosa by hydrogen peroxide: a mechanism for virulence activation in the cystic fibrosis lung. Microbiology. 1999;145(6):1349–1357 McLaughlin–Borlace L., Stapleton F., Matheson M., Dart J. K. Bacterial biofilm on contact lenses and lens storage cases in wearers with microbial keratitis. JAP. 1998. Vol,84: 827–838. Meluleni G. J., Grout M., Evans D. J., Pier G. B. Mucoid Pseudomonas aeruginosa growing in a biofilm in vitro are killed by opsonic antibodies to the mucoid exopolysaccharide capsule but not by antibodies produced during chronic lung infection in cystic fibrosis patients. J Immunol. 1995. Vol.155(4): 2029–2038. Miller M. B., Bassler B. L. Quorum sensing in bacteria. Annu Rev Microbiol. 2001. Vol.55: 165–199. Muh U., Schuster M., Heim R. et al. Novel Pseudomonas aeruginosa Quorum–Sensing In–hibitors Identified in an Ultra–High–Throughput Screen. Antimicrob. Agents Chemother. 2006. Vol.50: 3674–3679. Mulcahy L. R., Isabella V. M., Lewis K. Pseudomonas aeruginosa biofilms in disease. Microb. Ecol. 2013. Vol.6: 76–79. O'Toole G, Kaplan HB, Kolter R. Biofilm formation as microbial development. Annu Rev Microbiol. 2000. Vol.54: 49–79. Pankey G. A., Sabath L. D. Clinical Relevance of Bacteriostatic versus Bactericidal Mecha–nisms of Action in the Treatment of Gram–Positive Bacterial Infections. Clin Infect Dis. 2004. Vol.38: 864–870. Pasmans F. Modulation of interactions of Salmonella typhimurium with pigs bystress and T–2 toxin / F. Pasmans, S. Croubels, F. Haesebrouck // Faculty of Veterinary Medicine, Ghent University, Ghent. – 2012. – P. 11–169. Pavlova I. B. Atlas: Pathogenic bacteria populations, in two parts / I. B. Pavlova // Pro Publishing House.  – M.,  – 2014.  – 352 p. Pavlovskis O. R. Pseudomonas aeruginosa exotoxin in mice histopa– tholigy and Serum enzume changes /O. R. Pavlovskis, T. A. Voelken, A. N. Shacklford // J. Infect. Dis.– 1976.– V. 133.– P. 235–259. Pavlovskis O. R. Pseudomonas aeruginosa exotoxin in mice: Localizationand effect on protein synthesis / O. R. Pavlovskis, A. N. Shackelford // Infect. Immun. – 1974.– V. 9.– № 3.– P. 540–546. 162. Pearson JP, Van Delden C, Iglewski BH. Active efflux and difffusion are involved in transport of Pseudomonas aeruginosa cell–to–cell signals. The Journal of Bacteriology. 1999;181(4):1203–1210 Persek MR, Greenberg EP. Acy–homoserine Lactone quorum sensing in Gram–negative bacteria: A signaling mechanism involved in assciations with higher organisms. Proceedingd of the National Academy of Sciences of the United State of America. 2000;97(16):8789–8793 Petignat C., Francioli P., Nahimana I. et al. Exogenous Sources of Pseudomonas aeruginosa in Intensive Care Unit Patients: Implementation of Infection Control Measures and Follow–Up With Molecular Typing. infection control and hospital epidemiology. 2006. Vol.27 (9): 953–957. Piddock L. J.V. N ewer mechanisms of resistance tolactam antibiotica of ® gram–negative bacteria / L. J.V. Piddock, R. Wise // J. Antimicrobiol. Chemoter.–1985.– V. 16.– № 3.. p. 273–284. Pritt B., O`Brien L., Winn W. Mucoid Pseudomonas in Cystic Fibrosis. Am J Clin Pathol. 2007. Vol.128: 32–34. Rashid HM, Rumbaugh K, Passador L, et al. Polyphosphate Kinase is essential for biofilm development, quorum sensing, and virulence of Pseudomonas aeruginosa. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United State of America. 2000;97(17):9636–9641 Rashid MH, Rao NN, Kornberg A. Inorganic polyphosphate is required for motility of bactetial pathogens. The Journal of Bacteriology. 2000;182(1):225–227 Rashil MH, Rao NN, Kornberg A. Inorganic polyphosphate isneeded for swimming, swarming, and twitching motilities of Pseudomonas aeruginosa. Proceedings of the National Academy of Sciences of United State of America. 2000;97(9):4885–4890 Rhame F. S. Pseudomonas aeruginosa / F. S. Rhame // Ed. L. D. Sabath.– « Bern, 1980.–P. 31.–54. Rocha C. L., Coburn J., Rucks E., Olson J. Characterization of Pseudomonas aeruginosa Exoenzyme S as a Bifunctional Enzyme in J774A.1 Macrophages. Infection and immunity. 2003. Vol.7: 5296–5305. Rossolini G., Mantegoni E. Treatment and control of severe infections caused by multiresistant Pseudomonas aeruginosa. Clin Microbiol Infect. 2005. Vol.11: 17–32. Saadia M. The microbial quality of fast food and traditional fast food / M. Saadia, Hassanein Easa // Nature and Science. –  2010. – № 8 (10). – Р. 117 - 133. Sepandj F., Ceri H., Gibb A. уt ai. Minimum inhibitory concentration (MIC) versus mini–mum biofilm eliminating concentration (MBEC) in evaluation of antibiotic sensitivity of gram–negative bacilli causing peritonitis. Perit Dial Int. 2004. 24: 65–67Schmidmaier G., Lucke M., Wildemann B. et al. Prophylaxis and treatment of implant–related infections by antibiotic–coated implants: a review. Injury. 2006 . Vol.37: 105–112. Shen Ying. Pseudomonas aeruginosa была обнаружена в образцах пищевых отравлений /  Shen Ying, Yang Zhenglin, Yue Feng // Zhejiang Prev Med. 2010. – vol. 22.  –№.3. Р. 45-46. Song Z, Johansen HK, Moser C, et al. Effects of Chinese medicinal herbs on a rat model of chronic Pseudomonas aeruginosa Lung infection. Antimicrbial Agents and Chemotherapy. 1996;104:350–354 Stover C. K., Pham X. Q., Erwin A. L. et plete genome sequence of Pseudomonas aeruginosa PAO1, an opportunistic pathogen. Nature. 2000. Vol. 406: 959–964. Tanaka G, Shigeta M, Shigeta M, Komatsuzawa H, et al. Effect of clarithromycin on Pseudomonad aeruginosa biofilms. Chemotherapy. 2000;46(1):36–42 Teitzel G., Parsek M. Heavy Metal Resistance of Biofilm and Planktonic Pseudomonas aeruginosa. Appl Environ Microbiol. 2003. Vol.69: 2313–2320. Tetz G., Artemenko N., Tetz V. Effect of DNase and Antibiotics on Biofilm Characteristics. Antimicrob. Agents Chemother. 2009. Vol.53: 1204–1209. Trampuz A., Widmer A. F. Infections associated with orthopedic implants. Current Opinion in Infectious Diseases. 2006. Vol.19: 349–356. Trampuz A., Zimmerli W. Diagnosis and treatment of infections associated with fracture–fixation devices. Injury. 2006. Vol.37: 59–66. Tomlin K. L., Coll O. P., Ceri H. Interspecies biofilms of Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cepacia. Can J Microbiol. 2001. Vol.47: 949–954. Tre–Hardy M., Vanderbist F., Traore H. et al. In vitro activity of antibiotic combinations against Pseudomonas aeruginosa biofilm and planktonic cultures. Int. J of Antimicrobial Agents. 2008. Vol.31: 329–336. Van Delden C. Cell-to-cell sig-naling and Pseudomonas aeruginosa infections / C. Van Delden, B. H. Iglewski  // Emerg. Infect. Dis.  – 1998. – 4. – 551-560.  Van Loosdrecht MC, Lyklema J, Norde W, et al. Influence of interface on microbial activity. Microbiology Review. Review. 1990;54(1):75–87 Venturi V. Regulation of quorum sensing in Pseudomonas. FEMS Microbiol Rev. 2006. Vol. 30: 274–291. Watters C., DeLeon K., Trivedi U. et al. Pseudomonas aeruginosa biofilms perturb wound resolution and antibiotic tolerance in diabetic mice. Med Microbiol Immunol. 2013. Vol.202: 131–141. Walters M. C. 3rd, Roe F., Bugnicourt A. et al. Contributions of antibiotic penetration, oxy–gen limitation, and low metabolic activity to tolerance of Pseudomonas aeruginosa biofilms to ciprofloxacin and tobramycin. Antimicrob Agents Chemother. 2003. Vol.47: 317–333. Whiteley M., Bangera M. G., Bumgarner R. E. et al. Gene expression in Pseudomonas aeruginosa biofilms. Nature. 2001. Vol.413: 860–862. Widmer A. F. Infection control and prevention in the ICU. Intensive care medicine. 1994. Vol.20: 7–11. Willcox M. D. Pseudomonas aeruginosa infection and inflammation during contact lens wear: a review. Optom Vis Sci. 2007. Vol.84: 273–278. Wu H., Song Z., Hentzer M. et al. Synthetic furanones inhibit quorum–sensing and enhance bacterial clearance in Pseudomonas aeruginosa lung infection in mice. J. Antimicrob. Chemother. 2004. Vol.53: 1054–1061. Yanagihara K, Tomono K, Sawai T, et al. Efficacy of erythromycin inhalation in chronic respiratory infection caused by Pseudomonas aeruginosa. Kansenshogaku Zasshi. Abstract. 1997;71(4):337–341. Zhang Xiaopan, Chen Ligang, Xu Yang etc. Determination of в–lactam antibiotics in milk based on magnetic molecularly imprinted polymer extraction coupled withliquid chromatography–tandem mass spectrometry // J. Chromatogr. B. 2010.878.№32,3421–3426. He Lanxiang. The investigation reports of food poisoning caused by Pseudomonas aeruginosa / He Lanxiang, Huang Xinhua, Chen Caihong, Mao Zhiqu, Huang Yanting // China Rural Health. 2012