Лекционный курс по частной вирусологии Вирусы вызывающие болезни жвачных и однокопытных (стр. 16 )

Заражение культур клеток. Вирус выделяют в первичных субкультурах клеток эм­бриона КРС (ПЭК, ЛЭК, СЭК) или ТБ. Изолят считается выделенным в случае, если он вы­зывает стабильное однотипное ЦПД не менее чем в 2-х последовательных пассажах. В этом случае возможна его идентификация в РН. В первичных культурах клеток почки эмбриона коров первые ЦПИ обнаруживают через 2-5 дн после инокуляции. Они выражаются в появ­лении мелкозернистой инфильтрации в клетках фибробластоидного типа. По мере развития инфекции клетки постепенно отторгаются от поверхности стекла, но некоторые долго со­храняются, образуя островки клеток эпителиоидного типа В конце концов на стекле остает­ся только сеть зернистого материала.

При использовании вторичных культур клеток цитопатические изменения появляются почти одновременно во всех клетках монослоя, причем они становятся удлиненными, угло­ватыми и кажутся переплетенными. В окрашенных препаратах клеточного монослоя при наличии цитопатических изменений обнаруживают вакуолизацию протоплазмы и измене­ние ядер, выражающиеся в сокращении мембраны, пикнозе и кариорексисе.

Серологическая идентификация

ИФ. Аналогична таковой при диагностике аденовирусной инфекции. Этим методом АГ ВД обнаруживают в клетках слизистой оболочки прямой кишки, селезенки, легких и лимфоузлов экспериментально зараженных животных. Изучено распределение АГ ВД-БС в тканях животных остром и хроническом течениях болезни. В лимфоидных тканях АГ рас полагается в клетках системы фагоцитирующих мононуклеаров. Между первоначальным обнаружением АГ в слизистой кишечника, кератинизированном эпителии верхних отделов пищеварительной системы и кожи и прогрессированием патологических признаков имеется скрытый период. ИФ биопсийного материала слизистых оболочек ротовой и носовой полостей пригодна для ранней прижизненной диагностики вируса диареи. ИФ для обнаружения АГ вируса в клетках из носоглоточных смывов - надежный и быстрый способ выявления животных, пер-систентно инфицированных вирусом. При исследовании препаратов обращают внимание на свечение АГ в цитоплазме не разрушенных клеток. Яркая зеленая флюоресценция в виде гранул или диффузного свечения цитоплазмы не менее чем в 10% клеток позволяет оценить препарат как положительный. Предварительный диагноз ставят при наличии не менее 30% положительных препаратов от общего количества исследованных проб. Удобным оказался непрямой метод ИФ с использованием конъюгированных Fab-фрагментов AT из гиперим­мунной свиной сыворотки против ВД-БС КРС Специфическая флюоресценция вирусного АГ в культуре бычьих макрофагов обнаруживалась в цитоплазме клеток Для идентифика­ции не цитопатогенных изолятов метод ИФ практически единственный. При наличии ЦПД в культурах клеток, зараженных изолятом, и положительной флюоресценции проводят окон­чательное типирование вируса в РН.

РН. Это основной метод идентификации вируса. Новые изоляты возбудителя ВБ-БС, не обладающие цитопатогенной активностью, могут быть идентифицированы при помощи ги­периммунной сыворотки к вирусу диареи по подавлению феномена экзальтации вируса НБ, который используют для индикации подобных штаммов.

РДП. Обеспечивает быструю и точную постановку диагноза, однако пока чувствитель­ность метода невелика, и его следует использовать в комплексе с другими методами лабора­торной диагностики и идентификации возбуди теля Приготовление испытуемого АГ и ме­тодика постановки РДП описаны ранее. Антисыворотку для РДП готовят на КРС Для иммунизации животных используют цитрированную кровь, взятую асептически от экс­периментально зараженных животных в период подъема температуры. Кровь вводят внут­ривенно (некоторым животным делают несколько таких инъекций). Кровь берут через 60-90 дн после инокуляции.

Выявление вируса ПЦР. Данный метод рекомендован для быстрой диагностики ВД-БС. После цикла обратной транскрипции образцы ткани инфицированной культуры клеток подвергают амплификации с использованием праймеров, обеспечивающих репликацию оп­ределенного сегмента гена белка gp48 ВД. Для обнаружения амплифицированных последо­вательностей используют электрофорез в ПААГ и гибридизацию с биотинилированным ДНК-зондом на последовательности г енома вируса лейкоза. При идентификации молочных стад, инфицированных вирусом ВД-БС КРС, также предложен метод ПЦР для работы с пробами молока.

ИФА. ИФА позволяет легко идентифицировать культуры клеток, инфицированные ВД. Идентификация с помощью монАТ в практическом диагностическом применении не разра­ботана. Однако получено 5 монАТ против вируса ВД-БС КРС с ВН-активностью, которые позволили разделить изоляты ВД на 4 группы По­лучена и изучена панель монАТ против Singer-изолята, с помощью которой были обнару­жены полипептиды мол м 56-58 кД и доказано, что гликопротеин, локализуется на поверх­ности вирионов и является носителем нейтрализующих эпитопов. Анализ с панелью монАТ показал АГ гетерогенность среди изолятов этого вируса.

Серодиагностика и ретроспективная диагностика

Серодиагностика заболевания затруднительна, так как при хроническом течении инфек­ции AT обнаруживаются непостоянно и бывают в невысоких титрах. Диагноз на про­шедшую инфекцию, а также латентное вирусоносительство обычно ставят при помощи РН в культуре клеток, определяя титры AT в сыворотках реконвалесцентов. Для этого лучше ис­следовать парные сыворотки, взятые с интервалом 3-4 нед. При диагностике скрытого тече­ния инфекции чаще используют сыворотки крови убойного скота, поступающего с клиникой не диагностированной инфекции кишечного и респираторного трактов. Обычно в таких слу­чаях процент положительных сывороток (титры от 1:16 до 1 : 128) варьирует в широких пре­делах и может достигать 30-50 (иногда до 80) У клинически здоровых животных процент положительных проб может колебаться от 6-8 до 20-30. Динамика появления и угасания титров ВНА недостаточно изучена. Перед исследованием сыворотки прогревают в водяной бане при температуре 57-58°С 30 мин.

В США разработан быстрый количественный метод титрования ВД КРС. Он состоит в микротитровании с использованием цитопатогенных и не цитопатогенных изолятов вируса и перевиваемой линии клеток бычьей почки - МДВК. Для этого серийные разведения вируссодержащей жидкости и суспензию клеток в концентрации 1-Ю5 в среде с 2% сыворотки крови лошади заливают в лунки пластин Terasaki и проводят микротитрование в НИФ, ко­торую учитывают на дне лунок пластин, используя водно-иммерсионный объектив микро­скопа. Вирус также титруют и по бляшкообразованию. Специфическую флюоресценцию в клетках наблюдали уже через 12 ч после заражения, окончательные результаты считали че­рез 72 ч инкубирования. Результаты титрования вируса по бляшкам и в микротитровании совпадали. Микротитрование вируса по ИФ имеет преимущества над стандартным методом титрования по бляшкам, меньше времени и материалов и особенно незаменимо при титровании не цитопатогенных изолятов ВД.

РН. Её ставят методом разведения испытуемых сывороток с постоянной дозой стан­дартного вируса в культуре клеток ПЭК или ТБ. Положительными считают сыворотки с титром AT 1:16 и выше, в парных сыворотках - повышение титра AT во второй пробе в 4 раза и более. При экспериментальном заражении у всех телят через 15-61 день обнаружива­ли ВНА в титре 1:64 - 1.1024 Реакция, суть которой заключается в подавлении образования бляшек AT исследуемой сыворотки, оказалась пригодной для серологических исследований при ВД-БС. После получения гомогенного слоя клеток культуру промывают 1 раз фосфат­ным буферным р-ром и заражают 15 мл суспензии вируса в таком разведении, чтобы в 1 мл ее содержалось около 20 БОЕ. После адсорбции вируса при 37°С в течение 30 мин суспен­зию отсасывают и наносят на культуру 15 мл агара После застывания агара на его поверх­ности раскладывают кружки фильтровальной бумаги, насыщенной неразведенной иссле­дуемой сывороткой. После 4 дн инкубации при 37°С учитывают результаты. Доказательст­вом того, что исследуемая сыворотка содержит AT, служит отсутствие повреждения слоя клеток вокруг насыщенного ею кружка фильтровальной бумаги, что обнаруживается в виде венка клеток.

РСК. Ставят микрометодом с использованием микротитратора Такачи или Титертека При их отсутствии возможна постановка РСК в пробирках в общем объеме 0,5 мл.

РДП. Не нашла широкого применения в ветеринарной диагностической практике при обнаружении AT в сыворотках животных. ПА появляются в сравнительно поздние сроки (3-4 нед) после инфицирования и могут сохраняться 4 мес (титры AT до 1.16).

ELISA. В 500 раз чувствительнее РН, менее трудоемок и быстрее выполним. В качестве АГ использовали вирус, концентрированный ПЭГ и очищенный градиентным равновесным ультрацентрифугированием.

Дифференциальная диагностика

При постановке диагноза на ВД-БС необходимо исключить ИРГ, аденовирусную ин­фекцию, ПГ-3, злокачественную катаральную лихорадку, ящур, паратуберкулезный энтерит и др. Ввиду того, что ВД-БС может проявляться в различных формах (от острой до латент­ной), часто ассоциируется с такими инфекциями, как ПГ-3, аденоинфекция, хламидиозы и др., для окончательного диагноза необходимы лабораторные исследования. Лишь в качестве подозрения на ВД-БС следует учитывать быстрое распространение в стаде болезни, сопро­вождающейся лихорадкой, диареей, эрозиями в ротовой полости и ранней лейкопенией.

ИММУНИТЕТ И СПЕЦИФИЧЕСКАЯ ПРОФИЛАКТИКА.

Переболевание ВД-БС сопровождается развитием иммунитета. Однако у некоторых жи­вотных возможны рецидивы, которые связывают с недостаточностью иммунитета Образо­вание иммунитета сопровождается повышением уровня ВНА и других AT, что используют для оценки напряженности иммунитета после вакцинации. ВНА образуются также у плодов при заражении матерей во 2-й половине беременности. У телят установлен выражен­ный колостральный иммунитет. Титр материнских AT в сыворотке крови телят снижается и исчезает в течение 3-7 мес после приема молозива. Реконвалесценты сохраняют невоспри­имчивость к повторному заражению в течение 2-3 лет Однако у них образуется нестериль­ный иммунитет и такие животные длительное время являются вирусоносителями. При хро­ническом течении инфекции на фоне иммунодепрессивного действия ВД возникает истоще­ние иммунной системы, поэтому у животных обнаруживают низкий титр ВНА. Новорожденные телята приобретают пассивный иммунитет к ВД через молозиво матери, так как Ig не проникают через плаценту стельных коров. Продолжи­тельность колострального иммунитета у телят составляет 4-6 нед. В слизистой оболочке ЖКТ под воздействием ВД появляются Ig класса А, причем, образование их в значительном количестве происходит только в том случае, если вирусный АГ непосредственно воздейст­вует на слизистую оболочку. Секреторные AT образуются в слизистых носовой полос­ти при аэрозольном применении аттенуированного вируса. Развитие ВД-БС происходит в результате специ­фической иммунологической толерантности при инфицировании плода.