«Комариные» паразитозы: эпидемиология, клиника, диагностика (стр. 20 )

Отобранную кровь мы помещали в центрифужные пробирки, в которые добавляли различные химические реагенты: раствор уксусной кислоты, дистиллированную воду, раствор формалина, цитрат натрия, физиологический раствор и ацетилсалициловую кислоту.

При подборе химических реагентов для взаимодействия свежеотобранной порции крови и различных химических реагентов, мы решили исследовать саму кровь без добавления в нее каких-либо химических реагентов. Мы наблюдали, что в 100% происходил полный гемолиз эритроцитов, и мы не могли исследовать кровь после центрифугирования. Но нам удавалось приготовить препарат «висячая капля», когда кровь от собаки с подозрением на дирофиляриоз исследовалась сразу после ее отбора. В данном случае мы могли только определить присутствие возбудителя в крови животного, не говоря при этом о видовой принадлежности паразита и степени инвазированности животного.

При смешивании крови и химических реагентов, мы обращали внимание на гемолиз эритроцитов, изменение их формы и размеров, на разрушение гемоглобина, изменения форменных элементов крови и структуры самого возбудителя.

В наших наблюдениях мы отмечали, что при взаимодействии дистиллированной воды и свежеотобранной крови в 100% случаев происходил гемолиз эритроцитов, и кровь выпадала в осадок. Размешать и отцентрифугировать полученный осадок нам не удавалось – сгусток крови в виде осадка на дне пробирки не изменял своего состояния до и после центрифугирования. Следующим химическим компонентом, который мы решили использовать в наших исследованиях, стал водный раствор формалина, при взаимодействии которого с кровью животного только в 61 ± 3,98% (92 собаки) наблюдалось ее полное растворение. При отстаивании на дно пробирки выпадал осадок, который легко растворялся при размешивании. У 31,3 ± 3,79% (47 собак) наблюдалось не полное растворение, и кровь, оседая на дно, выпадала в осадок. При размешивании перед центрифугированием осадок не растворялся, и соответственно приготовить микропрепарат нам не удавалось. В 7,3 ± 2,12% (11 собак) кровь не растворялась и опадала на дно в виде осадка.

В 94,7 ± 1,87% (142 собаки) при взаимодействии водного раствора формалина и свежеотобранной крови со стороны элементов крови (эритроциты) мы наблюдали изменения в виде деформации последних. В 5,3 ± 1,87% (8 собак) не отмечалось изменений со стороны форменных элементов крови. При взаимодействии раствора цитрата натрия и свежеотобранной крови, в
91 ± 2,34% (137 собак) мы наблюдали полное растворение последней в изучаемом растворе. При взаимодействии физиологического раствора и крови животного, в 95 ± 1,78% (143 собаки) мы наблюдали полное растворение последней в используемом реагенте. Мы также отстаивали полученную смесь в течение нескольких часов. На дно пробирки выпадал осадок, который легко растворялся при размешивании. Используя ацетилсалициловую кислоту в качестве химического реагента при исследовании крови животных на кровепаразиты, мы наблюдали, что в 96,7 ± 4,61% (145 собак) отмечалось полное растворение крови в данном реагенте. Полученную смесь мы также отстаивали в течение нескольких часов (на дно пробирки выпадал осадок), размешивали, центрифугировали и готовили препарат. При использовании водного раствора уксусной кислоты у нас были получены следующие результаты. Так при взаимодействии водного раствора уксусной кислоты и свежеотобранной венозной крови в 98,7 ± 0,92% (148 собак) наблюдалось полное растворение последней. В 1,3 ± 0,92% (2 собаки) кровь растворялась частично. При отстаивании в течение нескольких часов, на дно пробирок во всех случаях выпадал осадок, который при размешивании легко растворялся. После мы центрифугировали полученную смесь, из которой готовили микропрепараты для дальнейшего исследования.

Что касается изменения элементов крови при взаимодействии раствора уксусной кислоты и крови инвазированного животного, то никаких изменений мы не наблюдали. При изготовлении тонкого мазка, нам удавалось определить возбудителя заболевания, контуры которого были в неизмененном состоянии. Идентификацию мы проводили по монографии «Дирофиляриозы».

Выводы: наиболее благоприятным химическим реагентом является 5% водный раствор уксусной кислоты, при взаимодействии с кровью которого, в анализе крови не происходит патологических изменений в отношении элементов крови: не наступает гемолиза эритроцитов, гемоглобин не разрушается, эритроциты не изменяют свои форму и размеры, а также остаются в неизмененном виде другие форменные элементы крови; не происходит изменения и деформации структуры паразита.

Список используемой литературы

1.  Алиева особенности метаболической активности нейтрофилов крови у больных хроническим вирусным гепатитом С [Текст] / , , // Астраханский медицинский журнал. - 2013. Т. 8. № 4. С. 44-49.

2.  Аракельян и диагностика дирофиляриоза в современных условиях [Текст] / , , // Вестник Дагестанской государственной медицинской академии. 2013. № 3. С. 29.

3.  Афанасьев влагалища и его патогенетическая роль при уреаплазмозе и хламидиозе [Текст] / , , В. А Алешкин, , Ю. В.Несвижский, , // Астраханский медицинский журнал. 2011. Т. 6. № 1. С. 139-144.

4.  Баранова : диагностика, лечение и профилактика [Текст] / // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. – 2014. - № 1. С. 39-44.

5.  , , Авдюхина руководство по эпидемиологическому надзору за малярией /ВОЗ, Копенгаген, 2006. 118 с.

6.  Василькова диагностика Астраханской риккетсиозной лихорадки [Текст] / , , . – Астрахань. - 2009. – 156 с.

7.  Галимзянов, риккетсиозная лихорадка [Текст] / , , – Астрахань, 1999.

8.  Галимзянов, риккетсиозная лихорадка: Автореф. дис…докт. мед. наук / ; Астраханская государственная медицинская академия. Астрахань. 1997.

9.  Карпенко аспекты клинико-иммунологических проявлений коксиеллеза [Текст] / , , // Эпидемиология и инфекционные болезни. 2012. № 6. С. 16-19.

10.  Малеев гемостаза и их роль в патогенезе Астраханской риккетсиозной лихорадки [Текст] / , , // Терапевтический архив. 2009. Т.81. № 11. С.32-35.

11.  Сергиев проблемы в сфере паразитарных болезней и их терапии [Текст] / , // Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. – 2014. - №1. С. 12-15

12.  Чалов диагностика Крымской геморрагической лихорадки [Текст] / , // М-во здравоохранения Астраханской обл., Астраханская гос. мед. акад.. Астрахань, 2007.

13.  Черенов эффективности противовирусных средств в терапии Крымской геморрагической лихорадки [Текст] / , , и др. // Клиническая медицина. – 2012. – Т. 90, №4. – С. 59-62.

14.  Черенова диагностика геморрагической лихорадки Крым-Конго на современном этапе [Текст] / , , // Казанский медицинский журнал. 2014. Т.95. № 5. С.748-751.

©, 2016 г.

1, 2, 3

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ ДИРОФИЛЯРИОЗА У ДЕТЕЙ

Врач ГБУЗ АО «Центр медицины катастроф со

скорой медицинской помощью»1

Вач-рентгенолог ГБУЗ АО «АМОКБ», г. Астрахани2

Студентка 5 курса лечебного факультета ГБОУ ВПО Астраханский

ГМУ Минздрава России3

Проблема паразитирования гельминтами у детей в настоящее время представляет собой серьезную медико-социальную проблему. Обусловлено это несколькими обстоятельствами. Во-первых, в последнее время отмечается высокая распространенность паразитарных болезней у детей [3]. Во-вторых, иммунная система ребенка и типы иммунного ответа на глистную инвазию отличаются от механизмов реагирования взрослого человека. Очень часто такие дети наблюдаются в клинической практике с проявлением аллергодерматозов различной степени выраженности, поражением слизистой оболочки дыхательных путей, желудочно-кишечного тракта, сочетанным, одновременным поражением двух и более систем [9, 10, 23]. В-третьих, симптомы глистных инвазий у детей и, в частности дирофиляриоза, так же как у взрослых не отличаются патогномоничностью, при оценке клинических симптомов нередко приходиться руководствоваться субъективными ощущениями ребенка, наиболее яркими из которых являются кожный зуд, отечность, снижение аппетита и нарушения сна. Данные симптомы, так же как и у взрослых пациентов, могут быть характерными и для других вирусных и бактериальных инфекций, в том числе природно-очаговых, трансмиссивных заболеваний, и поэтому нуждаются в проведении более длительных диагностических алгоритмов [1, 2, 4, 5, 6, 7, 8, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 24, 25, 26, 27]. В-четвертых, дети более подвижны, они чаще, чем взрослые контактируют с животными и могут подвергаться укусам переносчиков инфекционных заболеваний, таких как комары и клещи, обилие которых в Астраханском регионе отмечается ежегодно с апреля по октябрь. В-пятых, у детей отмечается физиологическая незрелость систем, участвующих в метаболизме эндогенных и экзогенных ксенобиотиков, что может имитировать клинику интоксикационного синдрома, направляя зачастую специалистов по ложному следу [11, 12, 13, 23].

Среди паразитарных заболеваний у детей интерес представляет дирофиляриоз, как малоизученное заболевание, переносчиком которого являются комары. Проблема дирофиляриоза, вызываемого нематодами Dirofilaria repens и Dirofilaria immitis остается сложной в эпидемиологическом плане и в плане ранней диагностики. Отсутствие клинических признаков заболевания у животных, различный инкубационный период заболевания у человека, плохое знание данной проблемы медицинскими работниками – все это способствует поздней и некачественной постановке диагноза «Дирофиляриоз». Выявление новых случаев дирофиляриоза требует обязательного и своевременного эпидемиологического расследования.